Fucales Bölüm 4'teki Florotannin Bileşenlerine Genel Bakış

6. Sonuç Açıklamaları

Özetle, Fucales, florotannin bileşikleri açısından önemli değişkenliğe sahip geniş bir deniz yosunu türü grubunu içerir. Spektrofotometrik deneyler, florotannin içeriklerinin yüksek verimli, kolay ve uygun maliyetli taranması için yararlı bir araç olabilir. Bununla birlikte, bu bileşikleri ayırmak, ölçmek ve karakterize etmek için güçlü analitik teknikler esastır. Şu anda, HPLC ile birleştirilmiş MS, oligomerik florotanninlerin ayrılması ve karakterizasyonu için tatmin edici bir yaklaşım sunmaktadır. UHPLC ve HRMS gibi daha özel ekipmanların geliştirilmesiyle de önemli gelişmeler sağlandı. Bununla birlikte, bağlantı konumları ve izomerik formlarla ilgili tüm ayrıntılar gerekli olduğunda, yalnızca NMR bu kapasiteyi sunabilir.

Cistanche glikozidi ayrıca kalp ve karaciğer dokularında SOD aktivitesini artırabilir ve her dokudaki lipofuscin ve MDA içeriğini önemli ölçüde azaltabilir, çeşitli reaktif oksijen radikallerini (OH-, H₂O₂, vb.) etkili bir şekilde temizleyerek ve neden olduğu DNA hasarına karşı koruma sağlayabilir. OH radikalleri tarafından. Cistanche feniletanoid glikozitler, serbest radikalleri güçlü bir şekilde süpürme yeteneğine, C vitamininden daha yüksek bir indirgeme kabiliyetine sahiptir, sperm süspansiyonunda SOD aktivitesini geliştirir, MDA içeriğini azaltır ve sperm zarı işlevi üzerinde belirli bir koruyucu etkiye sahiptir. Cistanche polisakkaritleri, D-galaktozun neden olduğu deneysel olarak yaşlanmış farelerin eritrositlerinde ve akciğer dokularında SOD ve GSH-Px aktivitesini artırabilir, ayrıca akciğer ve plazmadaki MDA ve kollajen içeriğini azaltabilir ve elastin içeriğini artırabilir. DPPH üzerinde iyi bir temizleme etkisi, yaşlanmış farelerde hipoksi süresini uzatır, serumdaki SOD aktivitesini geliştirir ve deneysel olarak yaşlanmış farelerde akciğerin fizyolojik dejenerasyonunu geciktirir. Hücresel morfolojik dejenerasyonla, deneyler Cistanche'nin iyi antioksidan yeteneğe sahip olduğunu göstermiştir ve cilt yaşlanması hastalıklarını önleyen ve tedavi eden bir ilaç olma potansiyeline sahiptir. Aynı zamanda, Cistanche'deki ekinacoside, DPPH serbest radikallerini temizleme konusunda önemli bir yeteneğe sahiptir ve reaktif oksijen türlerini temizleme ve serbest radikal kaynaklı kollajen bozulmasını önleme yeteneğine sahiptir ve ayrıca timin serbest radikal anyon hasarı üzerinde iyi bir onarım etkisine sahiptir.

Bununla birlikte, bu ekipman laboratuvarlar için en uygun fiyatlı/erişilebilir ekipman değildir. Daha standart bileşiklerin mevcudiyeti, karşılaştırma için güvenilir kitaplıklar oluşturacağından HPLC'nin daha iyi kullanımına katkıda bulunabilir. Alternatif olarak, NMR spektroskopisi ile ortak PT bileşiklerini incelemek ve tanımlamak, bunları HPLC tutma sürelerine ve UV spektral verilerine bağlamak, araştırma topluluğu için ileriye dönük bir başka adımı temsil edebilir.

Yazar Katkıları:Kavramsallaştırma—MDC ve SMC; literatür taraması ve orijinal taslağın yazılması—MDC, SMGP, SS, FC, SSB, DCGAP, AMSS, SMC Tüm yazarlar, inceleme ve düzenleme gibi yazım işlemlerine katkıda bulunmuştur. Tüm yazarlar makalenin yayınlanan versiyonunu okudu ve kabul etti.

Finansman: Bu çalışma, UIDB/50006/2020 ve UIDP/50006/2020 projeleri aracılığıyla PT ulusal fonlarından (FCT/MCTES, Fundação para a Ciência e Tecnologia ve Ministério da Ciência, Tecnologia e Ensino Superior) mali destek aldı. PTDC/BAA-AGR/31015/2017 sayesinde, "Algaphlor—Kahverengi alg florotanninler: Biyoyararlanımdan yeni fonksiyonel gıdaların geliştirilmesine", Avrupa Bölgesel Kalkınma Fonu bünyesindeki Rekabetçilik ve Uluslararasılaşma Operasyonel Programı—POCI tarafından ortaklaşa finanse edilmektedir. (FEDER) ve Bilim ve Teknoloji Vakfı (FCT), ulusal fonlar aracılığıyla. Silva S., DL 57/2016–Norma transitória (Ref. SFRH/BPD/74299/2010) programı aracılığıyla sağladığı finansman için FCT'ye teşekkür eder.

Çıkar çatışmaları:Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Referanslar

1. Cho, GY; Rousseau, F.; de Reviers, B.; Bu, SM; Gözden geçirenler, BDE; Cho, GY; Rousseau, F.; Reviers, Fotosistem I Kodlama PsaA Dizileriyle Değerlendirilen Fukales (Phaeophyceae) içindeki BDE Filogenetik İlişkiler. Phycologia 2006, 45, 512–519. [ÇaprazRef]

2. Baweja, P.; Kumar, S.; Sahoo, D.; Levine, I. Deniz Yosunlarının Biyolojisi. Sağlık ve Hastalık Önlemede Yosunlarda; Elsevier: Amsterdam, Hollanda, 2016; 41–106.

3. Bermejo, R.; Chefaoui, RM; Engelen, AH; Buonomo, R.; Neiva, J.; Ferreira-Costa, J.; Pearson, GA; Marba, N.; Duarte, CM; Airoldi, L.; et al. Akdeniz-Atlantik Cystoseira tamariscifolia Kompleksinin Deniz Ormanları, Güney İber Genetik Sıcak Noktası Gösteriyor ve Parapatry'de Üreme İzolasyonu Yok. bilim Rep. 2018, 8, 10427. [CrossRef] [PubMed]

4. Montero, L.; Herrero, M.; Ibáñez, E.; İbâ, İ.; Ibáñez, I.; Cifuentes, A. Kapsamlı İki Boyutlu Sıvı Kromatografisi ile Kahverengi Yosun Cystoseira abies-marina'dan Phlorotanninlerin Ayrılması ve Karakterizasyonu. Elektroforez 2014, 35, 1644–1651. [CrossRef] [PubMed]

5. Jegou, C.; Connan, S.; Bihanniç, İ.; Cerantola, S.; Guerard, F.; Stiger-Pouvreau, V. Brittany'de (Fransa) Intertidal Rockpools'ta Yaşayan Yerli Kanopi Oluşturan Sargassaceae Türlerinin Phlorotannin ve Pigment İçeriği: Dikey Dağılımları ve Fenolojileri ile Herhangi Bir İlişkisi Var mı? Mart Uyuşturucu 2021, 19, 504. [CrossRef]

6. Doktor Guiry; Guiry, GM; Sargassum, C. Agardh, 1820—AlgaeBase. Dünya Çapında Elektronik Yayın, İrlanda Ulusal Üniversitesi, Galway.

7. Amador-Castro, F.; Garcia-Cayuela, T.; Alper, H.S; Rodriguez-Martinez, V.; Carrillo-Nieves, D. Pelagic Sargassum Biyokütlesinin Sürdürülebilir Uygulamalara Değerlendirilmesi: Mevcut Eğilimler ve Zorluklar. J. Çevre. Yönetim 2021, 283, 112013. [CrossRef]

8. Daniel, SL; Kiril, B.; Leonel, P. Ascophyllum nodosum ve Sargassum muticum'dan (Phaeophyceae) Biyo-Gübre Üretimi. J. Oceanol. Limnol. 2019, 37, 918–927. [ÇaprazRef]

9. Ghaffar Shahriari, A.; Mohkami, A.; Niazi, A.; Hamed Ghodoum Parizipour, M.; Habibi-Pirkoohi, M. Kanola'da (Brassica napus L.) Kuraklık Toleransının İyileştirilmesi İçin Kahverengi Yosun (Sargassum angustifolium) Ekstraktının Uygulanması. İran. J. Biyoteknoloji. 2021, 19, e2775. [ÇaprazRef]

10. Oliveira, Ortak Girişim; Alves, AA; Costa, JC Sargassum Sp.'den Biyogaz Üretiminin Optimizasyonu. Gliserol ve Atık Kızartma Yağı ile Birlikte Sindirimi Değerlendirmek İçin Deney Tasarımını Kullanma. biyolojik kaynak. Teknoloji 2015, 175, 480–485. [ÇaprazRef]

11. Giovanna Lopresto, C.; Paletta, R.; Filippelli, P.; Galluccio, L.; de la Rosa, C.; Amaro, E.; Jáuregui-Haza, U.; Atilio de Frias, Karayipler'de J. Sargassum İstilası: Kıyı Toplulukları İçin Biyorafineri Temelli Biyoenerji Üretme Fırsatı — Genel Bir Bakış. Atık Biyokütle Değerlendirmesi 2022, 13, 2769–2793. [ÇaprazRef]

12. Luis Godínez-Ortega, J.; Cuatlán-Cortés, Ortak Girişim; López-Bautista, JM; van Tussenbroek, BI Meksika'dan Yüzen Sargassum Türlerinin (Sargasso) Doğal Tarihi. Meksika ve Orta Amerika'nın Doğa Tarihi ve Ekolojisi'nde; IntechOpen: Londra, Birleşik Krallık, 2021.

13. Süleymani, S.; Yusufzadi, M.; Nezhad, SBM; Pozharitskaya, ON; Shikov, AN Polycladia Myrica'dan Ekstrakte Edilen Fraksiyonların Değerlendirilmesi: Biyolojik Aktiviteler, UVR Koruyucu Etki ve Buna Dayalı Krem Formülasyonunun Kararlılığı. J. Uygulama Phycol. 2022, 34, 1763–1777. [ÇaprazRef]

14. Serrão, EA; Alice, Los Angeles; Brawley, SH Evolution of the Fucaceae (Phaeophyceae) NrDNA-ITS'den Infrred. J. Physiol. 1999, 35, 382–394. [ÇaprazRef]

15. Patarra, RF; Paiva, L.; Neto, AI; Lima, E.; Baptista, J. Seçilmiş Makroalglerin Besin Değeri. J. Uygulama Phycol. 2011, 23, 205–208. [ÇaprazRef]

16. Lopes, G.; Barbosa, M.; Vallejo, F.; Gil-Izquierdo, Á.; Andrade, PB; Valentão, P.; Pereira, DM; Ferreres, F. Fucus spp. Kuzey Portekiz Sahil Şeridinin İncelenmesi: HPLC-DAD-ESI/MSn ve UPLC-ESI-QTOF/MS ile Kimyasal Yaklaşım. Alg Çöz. 2018, 29, 113–120. [ÇaprazRef]

17. Stansbury, J.; Saunders, P.; Winston, D. İyot, Mesane Sargısı, Guggul ve İris ile Sağlıklı Tiroid Fonksiyonunu Teşvik Etmek. J. Restorasyon. Med. 2013, 1, 83–90. [ÇaprazRef]

18. Guiry, MD; Guiry, GM Fucus Linnaeus, 1753—AlgaeBase. Dünya Çapında Elektronik Yayın, İrlanda Ulusal Üniversitesi, Galway.

19. Resul, F.; Gupta, S.; Olas, JJ; Geçev, T.; Sujeeth, N.; Mueller-Roeber, B. Deniz Yosunu Özü ile Astarlama, Arabidopsis'te Kuraklık Toleransını Güçlü Bir Şekilde Artırır. Int. J. Mol. bilim 2021, 22, 1469. [CrossRef] [PubMed]

20. Şukla, PS; Mantin, EG; Adil, M.; Bajpai, S.; Critchley, AT; Prithiviraj, B. Ascophyllum nodosum Bazlı Biyostimülanlar: Bitki Büyümesinin Uyarılması, Stres Toleransı ve Hastalık Yönetimi için Tarımda Sürdürülebilir Uygulamalar. Ön. Bitki Bilimi 2019, 10, 655. [CrossRef] [PubMed]

21. Vodouhe, M.; Marois, J.; Guay, V.; Leblanc, N.; Weisnagel, SJ; Bilodeau, J.-F.; Jacques, H. Kahverengi Yosun Ascophyllum nodosum ve Fucus vesiculosus Ekstraktının Aşırı Kilolu ve Obez Prediyabetik Deneklerde Metabolik ve Enflamatuvar Yanıt Üzerindeki Marjinal Etkisi. Mart Uyuşturucu 2022, 20, 174. [CrossRef] [PubMed]

22. Fraser, CI; Vel, M.; Nelson, WA; Macaya, AK; Hay, CH; McCarthy, C.; Velásquez, M.; Nelson, WA; Macaya, AK; Hay, CH Makroalglerde Yüzerliğin Biyocoğrafik Önemi: İki Yeni Türün Tanımlarını İçeren Güney Boğa-Kelp Cinsi Durvillaea (Phaeophyceae) Üzerine Bir Vaka Çalışması. J. Physiol. 2007, 56, 23–36. [ÇaprazRef]

23. Kapon, RJ; Barrow, RA; Rochfort, S.; Jobliig, M.; Skene, C.; Lacey, E.; Gill, JH; Friedel, T.; Wadsworth, D.; Jobling, M.; et al. Deniz Nematositleri: Güney Avustralya Kahverengi Alga, Notheia Anomaliz'den Tetrahidrofuranlar. Tetrahedron 1998, 54, 2227–2242. [ÇaprazRef]

24. Mueller, R.; Wright, JT; Bolch, CJSS Güneydoğu Avustralya'daki Yaygın Gelgit Arası Yosun Hormosira banksii'nin (Phaeophyceae) Tarihsel Demografisi ve Kolonizasyon Yolları. J. Physiol. 2018, 54, 56–65. [ÇaprazRef]

25. Clayton, MN Güney Yarımküre Ailesi Seirococcaceae'nin (Phaeophyceae) Sınırlandırılması ve Filogenetik İlişkileri. Bot. Mart 1994, 37, 213–220. [ÇaprazRef]

26. Kumar, LRG; Paul, PT; Enes, KK; Tejpal, CS; Chatterjee, ABD; Anupama, TK; Mathew, S.; Ravishankar, CN Phlorotannins– Biyoaktivite ve Ekstraksiyon Perspektifleri. J. Uygulama Phycol. 2022, 34, 2173–2185. [CrossRef] [PubMed]

27. Hermund, DB; Torsteinsen, H.; Vega, J.; Figueroa, FL; Jacobsen, C. Kahverengi Yosun Fucus vesiculosus'tan Antioksidan ve Foto-Koruyucu Özelliklere Sahip Yeni Kozmesötiklerin Taranması. Deniz Uyuşturucuları 2022, 20, 687. [CrossRef]

28. Lashika Mavi Filtreli Güneş Kremi SPF 45 PA plus plus plus with Brown Seaweed—30 mL.

29. Hello Sunny Essence Güneş Çubuğu Glow SPF50 plus Pa plus plus plus .

30. Koivikko, R.; Loponen, J.; Honkanen, T.; Jormalainen, V. Kahverengi Alga Fucus vesiculosus'ta Çözünür, Hücre Duvarına Bağlı ve Sızan Florotanninlerin Ekolojik İşlevleri Üzerindeki Etkileri ile İçeriği. J. Chem. ekol. 2005, 31, 195–212. [ÇaprazRef]

31. Machu, L.; Misurçova, L.; Vavra Ambrozova, J.; Orsavova, J.; Melek, J.; Sochor, J.; Jurikova, T. Algal Gıda Ürünlerinde Fenolik İçerik ve Antioksidan Kapasite. Moleküller 2015, 20, 1118–1133. [ÇaprazRef]

32. Sabeena Farvin, KH; Jacobsen, C. Danimarka Sahilinden Seçilmiş Deniz Yosunu Türlerinin Fenolik Bileşikleri ve Antioksidan Aktiviteleri. Gıda Kimyası 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]

33. Kim SM; Kang, GB; Jeon, J.-S.; Jung, Y.-J.; Kim, W.-R.; Kim, CY; Um, B.-H. Eisenia bisikletlerinde Başlıca Florotanninlerin Hidrofilik Etkileşim Kromatografisi Kullanılarak Belirlenmesi: Mevsimsel Değişim ve Ekstraksiyon Özellikleri. Gıda Kimyası 2013, 138, 2399–2406. [ÇaprazRef]

34. Connan, S.; Goulard, F.; Stiger, V.; Deslandes, E.; Bir Kahverengi Alg Topluluğunda Phlorotannin Düzeylerinde Safra, EA Türler Arası ve Zamansal Değişim. Bot. Mart 2004, 47, 410–416. [ÇaprazRef]

35. Lopes, G.; Sousa, C.; Silva, LR; Pinto, E.; Andrade, PB; Bernardo, J.; Mouga, T.; Valentão, P. Phlorotannins Saflaştırılmış Ekstreler, İlişkili Enflamatuar Durumlarla Birlikte Mikrobiyal Enfeksiyonlar İçin Yeni Bir Farmakolojik Alternatif Oluşturabilir mi? PLoS BİR 2012, 7, e31145. [ÇaprazRef]

36. Obluchinskaya, ED; Pozharitskaya, ON; Zakharov, DV; Flisyuk, EV; Terminko II; Generalova, YE; Smekhova, IE; Shikov, AN Arktik Bölgeden Fucus vesiculosus'un Biyokimyasal Bileşimi ve Antioksidan Özellikleri. Mart Uyuşturucu 2022, 20, 193. [CrossRef]

37. Pedersen, A. Fukoidlerde Fenol İçeriği ve Ağır Metal Alımı Üzerine Çalışmalar. Onbirinci Uluslararası Deniz Yosunu Sempozyumunda. Hidrobiyolojideki Gelişmeler; Bird, CJ, Ragan, MA, Ed.; Springer: Dordrecht, Hollanda, 1984; Cilt 22, s. 498–504.

38. Connan, S.; Stengel, DB Ortam Tuzluluğunun ve Bakırın Kahverengi Algler Üzerindeki Etkileri: 2. Fenolik Havuz Üzerinde Etkileşimli Etkiler ve Florotanninin Metal Bağlama Kapasitesinin Değerlendirilmesi. Su. Toksikol. 2011, 104, 1–13. [CrossRef] [PubMed]

39. Kamiya, M.; Nishio, T.; Yokoyama, A.; Yatsuya, K.; Nishigaki, T.; Yoshikawa, S.; Ohki, K. Japonya Denizi Kıyısındaki Sargassacean Türlerinde Phlorotannin'in Mevsimsel Değişimi. Phycol. Res. 2010, 58, 53–61. [ÇaprazRef]

40. Ragan, MA; Jensen, A. Kahverengi Alg Fenolleri Üzerine Kantitatif Çalışmalar. II. Ascophyllum Nodosum'un (L.) Polifenol İçeriğindeki Mevsimsel Değişim Le Jol. ve Fucus vesiculosus (L.). J. Uzm. Mart Biol. ekol. 1978, 34, 245–258. [ÇaprazRef]

41. Pavia, H.; Toth, GB Kahverengi Yosun Ascophyllum nodosum ve Fucus vesiculosus'un Phlorotannin İçeriği Üzerinde Işık ve Azotun Etkisi. Hydrobiologia 2000, 440, 299–305. [ÇaprazRef]

42. Pavia, H.; Brock, E. Kahverengi Alga Ascophyllum nodosum'da Phlorotannin Üretimini Etkileyen Dış Faktörler. Mart Ekol. Prog. Sör. 2000, 193, 285–294. [ÇaprazRef]

43. Tala, F.; Velásquez, M.; Mansilla, A.; Macaya, AK; Thiel, M. Güneydoğu Pasifik'ten Yüzen Kelp Türlerinin Kısa Vadeli Alışmaları Üzerinde Enlemsel ve Mevsimsel Etkiler. J. Uzm. Mart Biol. ekol. 2016, 483, 31–41. [ÇaprazRef]

44. Sardari, RRRR; Prothmann, J.; Gregersen, O.; Turner, C.; Karlsson, EN Kahverengi Algler, Saccharina Latissima ve Ascophyllum nodosum'daki Phlorotannins'in Yüksek Çözünürlüklü Tandem Kütle Spektrometresine Eşleştirilmiş Ultra Yüksek Performanslı Sıvı Kromatografisi ile Tanımlanması. Moleküller 2021, 26, 43. [CrossRef]

45. Tierney, MS; Soler-Vila, A.; Rai, DK; Croft, AK; Brunton, ABD; Smyth, Ascophyllum nodosum, Pelvetia canaliculata ve Fucus spiralis'teki Düşük Moleküler Ağırlıklı Florotannin Polimerlerinin TJ UPLC-MS Profili. Metabolomik 2014, 10, 524–535. [ÇaprazRef]

46. ​​Catarino, MD; Silva, AAMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Silva, AAMS; Cardoso, Fucus vesiculosus'tan SM Phlorotannins: NF-KB Sinyal Yolunu Engelleyerek Enflamatuar Tepkinin Modülasyonu. Int. J. Mol. bilim 2020, 21, 6897. [CrossRef]

47. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Sousa, C.; Mouga, T.; Valentão, HPLC-DAD-ESI-MSn ile Karakterize Edilen Fukallerden P. Phlorotannin Ekstraktları: Hiyalüronidaz Önleme Kapasitesine ve Antioksidan Özelliklerine Yaklaşımlar. Mart Uyuşturucu 2012, 10, 2766–2781. [ÇaprazRef]

48. Catarino, MD; Silva, AMS; Mateus, N.; Cardoso, Fucus vesiculosus'tan Phlorotannins Ekstraksiyonunun SM Optimizasyonu ve Metabolik Bozuklukları Önleme Potansiyellerinin Değerlendirilmesi. Mart Uyuşturucu 2019, 17, 162. [CrossRef] [PubMed]

49. Li, Y.; Fu, X.; Duan, D.; Liu, X.; Xu, JJJ; Gao, X. Kahverengi Alga, Sargassum fusiform (Harvey) Setchell'den Florotanninlerin Çıkarılması ve Tanımlanması. Mart Uyuşturucu 2017, 15, 49. [CrossRef] [PubMed]

50. Wang, T.; Jónsdottir, R.; Liu, H.; Gü, L.; Kristinsson, HG; Raghavan, S.; Ólafsdóttir, G. Kahverengi Yosun Fucus vesiculosus'tan Ekstrakte Edilen Florotanninlerin Antioksidan Kapasiteleri. J. Agric. Gıda Kimyası 2012, 60, 5874–5883. [CrossRef] [PubMed]

51. Obluchinskaya, ED; Daurtseva, AV; Pozharitskaya, ON; Flisyuk, EV; Shikov, AN Doğal Derin Ötektik Çözücüler, Kahverengi Yosunlardan Florotanninleri Çıkarmak İçin Alternatifler Olarak. eczane kimya J.2019, 53, 243–247. [ÇaprazRef]

52. Kadam, SU; Tiwari, BK; O'Donnell, mevkidaş; O'Donnell, Deniz Yosunlarından Biyoaktif Maddeler İçin Yeni Ekstraksiyon Teknolojilerinin CP Uygulaması. J. Agric. Gıda Kimyası 2013, 61, 4667–4675. [CrossRef] [PubMed]

53. Michalak, I.; Chojnacka, K. Alg Ekstraktları: Teknoloji ve Gelişmeler. Müh. Hayat Bilimi 2014, 14, 581–591. [ÇaprazRef]

54. Grosso, C.; Valentão, P.; Ferreres, F.; Andrade, PB; Mayer, AM Deniz Kaynaklı Bileşikler için Alternatif ve Verimli Ekstraksiyon Yöntemleri. Mart Uyuşturucu 2015, 13, 3182–3230. [ÇaprazRef]

55. Meng, W.; Mü, T.; Güneş, H.; Garcia-Vaquero, M. Phlorotannins: Ekstraksiyon Yöntemleri, Yapısal Özellikler, Biyoaktiviteler, Biyoyararlanım ve Gelecek Eğilimler Üzerine Bir İnceleme. Alg Çöz. 2021, 60, 102484. [CrossRef]

56. Lopes, G.; Barbosa, M.; Andrade, PB; Valentão, P. Fucales'ten Phlorotannins: Hiperglisemi ve Diyabetle İlişkili Vasküler Komplikasyonları Kontrol Etme Potansiyeli. J. Uygulama Phycol. 2019, 31, 3143–3152. [ÇaprazRef]

57. Obluchinskaya, ED; Pozharitskaya, ON; Zakharova, LV; Daurtseva, AV; Flisyuk, EV; Shikov, AN Doğal Derin Ötektik Çözücülerin Fucus vesiculosus'tan Hidrofilik ve Lipofilik Bileşiklerin Ekstraksiyonu İçin Etkinliği. Moleküller 2021, 26, 4198. [CrossRef]

58. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Sattari, Z.; Al-Haddad, S.; Fakhraldeen, S.; Al-Ghunaim, A.; Al-Yamani, F. Kahverengi Yosunlardan Biyoaktif Bileşiklerin Enzim Destekli Ekstraksiyonu ve Karakterizasyonu. J. Uygulama Phycol. 2020, 32, 615–629. [ÇaprazRef]

59. Ank, G.; Antônio Perez Da Gama, B.; Pereira, RC Güneybatı Atlantik Kahverengi Yosunlarından Phlorotannin İçeriğinde Enlemsel Değişim. PeerJ 2019, 7, e7379. [CrossRef] [PubMed]

60. Tabassum, MR; Xia, A.; Murphy, JD Kahverengi Yosun Ascophyllum nodosum'dan Kimyasal Bileşim ve Biyometan Üretiminin Mevsimsel Değişimi. biyolojik kaynak. Teknoloji 2016, 216, 219–226. [ÇaprazRef]

61. Hermund, DB; Heung, SY; Thomsen, BR; Ako, CC; Jacobsen, C. Kahverengi Alga Fucus vesiculosus'tan Antioksidan Ekstraktlarla Cilt Bakımı Emülsiyonlarının Oksidatif Kararlılığının Artırılması. J. Am. Yağ Kimyası Sos. 2018, 95, 1509–1520. [ÇaprazRef]

62. Ümmet, V.; Tiwari, BK; Jaisval, AK; Condon, K.; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J.; O'Donnell, C; Rajauria, G. Kahverengi Yosunlardan Polifenoller, Florotanninler ve İlişkili Antioksidan Aktivitenin Geri Kazanımı için Ultrason Frekansının, Ekstraksiyon Süresinin ve Çözücünün Optimizasyonu. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 250. [CrossRef]

63. Sumampouw, GA; Jacobsen, C.; Getachew, AT Basınçlı Sıvı Ekstraksiyonu ile Fucus vesiculosus'tan Fenolik Antioksidan Ekstraksiyonunun Optimizasyonu. J. Uygulama Phycol. 2021, 33, 1195–1207. [ÇaprazRef]

64. Yuan, Y.; Zhang, J.; Fan, J.; Clark, J.; Shen, P.; Li, Y.; Zhang, C. Dört Ekonomik Kahverengi Makroalg Türünden Fenolik Bileşiklerin Mikrodalga Yardımlı Ekstraksiyonu ve Antioksidan Aktivitelerinin ve -Amilaz, -Glukosidaz, Pankreatik Lipaz ve Tirozinaz Üzerindeki Önleyici Etkilerinin Değerlendirilmesi. Gıda Res. Int. 2018, 113, 288–297. [ÇaprazRef]

65. ˇCagalj, M.; Skroza, D.; Tabanelli, G.; Özoğul, F.; Šimat, V. Doğru Kurutma ve Ekstraksiyon Yöntemlerini Seçerek Padina pavonica'nın Antioksidan Kapasitesini En Üst Düzeye Çıkarma. İşlemler 2021, 9, 587. [CrossRef]

66. Amarante, SJ; Catarino, MD; Marçal, C.; Silva, AMS; Ferreira, R.; Cardoso, Fucus vesiculosus'tan Phlorotannins'in SM Mikrodalga Yardımlı Ekstraksiyonu. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 559. [CrossRef]

67. Bian, C.; Gao, J.; Uzun, X.; Güneş, C.; Dai, L.; Xu, Z. Nem Tutma Sıvısı ve Bunu Hazırlama Yöntemi. Çin Patenti CN103520065A, 22 Ocak 2014.

68. da Silva, JRM; Alves, CMM; Pinteus, SFG; Martins, AMAÇ; Freitas, RPF; Pedrosa, Dermatolojide Kullanım İçin Anti-Enzimatik Etkiye Sahip, Florotanninle Zenginleştirilmiş Bir Ekstraktın Elde Edilmesine Yönelik RFP Süreci. Avrupa Patenti EP3910064, 17 Kasım 2021.

69. Prigent, A. Deniz Yosunu Ekstraktlarını Elde Etme Yöntemi. Uluslararası Patent WO2015071477A1, 21 Mayıs 2015.

70. Stiger-Poivreau, V.; Connan, S.; Gager, L.; Coiffard, L.; Couteau, C.; Dekoster, S.; Gombault, LN; Cotterei, C.; Mahe, A. Fenolik Bileşikler ve Kozmetik Kullanımları Dahil Kahverengi Alg Özleri. Fransız Patenti FR3095348A1, 30 Ekim 2020.

71. Tae, HL; Lee, JM; Park, SY Bağışıklık Artırma Aktivitesine Sahip Enzimle Muamele Edilmiş Hizikia fusiforme Ekstraktlarının ve Bunları İçeren Fonksiyonel Gıda ve Farmasötik Bileşimin Hazırlanmasına Yönelik Proses. Kore Patenti KR20140032101A, 14 Mart 2014.

72. Liu, X.; Yuan, W.; Sharma-shivappa, R.; Zanten, J. Van Kahverengi Alglerden Florotanninlerin Antioksidan Aktivitesi. Int. J. Agric. Biol. Müh. 2017, 10, 184–191. [ÇaprazRef]

73. Abdülhamid, A.; Jouini, M.; Bel Hac Amor, H.; Mzoughi, Z.; Dridi, M.; Ben Said, R.; Bouraoui, A. Üç Akdeniz Kahverengi Deniz Yosunundan Alınan Florotannin Açısından Zengin Fraksiyonların Antioksidan, Antiinflamatuar ve Antinosiseptif Potansiyelinin Fitokimyasal Analizi ve Değerlendirilmesi. Mart Biyoteknoloji. 2018, 20, 60–74. [CrossRef] [PubMed]

74. Lamuela-Raventós, Toplam Fenolik İçeriğin ve Antioksidan Kapasitenin Ölçümü için RM Folin-Ciocalteu Yöntemi. Antioksidan Aktivite ve Kapasite Ölçümünde: Son Trendler ve Uygulamalar; John Wiley & Sons, Ltd.: Hoboken, NJ, ABD, 2017; s. 107–115. ISBN 9781119135388.

75. Cotas, J.; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonç elfler, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Yosun Fenolikleri: Ekstraksiyondan Uygulamalara. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 384. [CrossRef] [PubMed]

76. Everette, JD; Bryant, QM; Yeşil, AM; Abbey, YA; Wangila, GW; Walker, RB Çeşitli Bileşik Sınıflarının Folin-Ciocalteu Reaktifine Yönelik Reaktivitesinin Kapsamlı Çalışması. J. Agric. Gıda Kimyası 2010, 58, 8139–8144. [CrossRef] [PubMed]

77. Stern, JL; Hagerman, AE; Steinberg, PD; Kış, FC; Estes, JA Kahverengi Alg Florotanninlerini Ölçmek İçin Yeni Bir Tahlil ve Önceki Yöntemlerle Karşılaştırmalar. J. Chem. ekol. 1996, 22, 1273–1293. [ÇaprazRef]

78. Steevensz, AJ; MacKinnon, SL; Hankinson, R.; Craft, C.; Connan, S.; Stengel, DB; Melanson, JE Sıvı Kromatografi-Yüksek Çözünürlüklü Kütle Spektrometresi ile Kahverengi Makroalglerde Florotanninlerin Profilini Çıkarma. fitokimya Anal. 2012, 23, 547–553. [ÇaprazRef]

79. Agregan, R.; Münekata, PES; Franco, D.; Dominguez, R.; Carballo, J.; Lorenzo, LC-DAD–ESI-MS/MS Kullanarak Üç Kahverengi Yosun Türünden JM Fenolik Bileşikler. Gıda Res. Int. 2017, 99, 979–985. [ÇaprazRef]

80. Glombitza, KW; Schmidt, Brown Alga Carpophyllum angustifolium'dan A. Trihidroksiphlorethols. Fitokimya 1999, 51, 1095–1100. [ÇaprazRef]

81. Sailer, B.; Kahverengi Alga Cystophora retroflexa'dan Glombitza, KW Phlorethols ve Fucophlorethols. Fitokimya 1999, 50, 869–881. [ÇaprazRef]

82. Glombitza, KW; Keusgen, M.; Hauperich, Kahverengi Algler Sargassum spinuligerum ve Cystophora torulosa'dan S. Fucophlorethols. Fitokimya 1997, 46, 1417–1422. [ÇaprazRef]

83. Glombitza, KW; Kahverengi Alga Sargassum spinuligerum'dan Keusgen, M. Fuhalols ve Deshidroksifuhaloller. Fitokimya 1995, 38, 987–995. [ÇaprazRef]

84. Glombitza, KW; Schmidt, A. Brown Alga Carpophyllum angustifolium'dan Halojenlenmemiş ve Halojenlenmiş Phlorotannins. J. Nat. Üretim 1999, 62, 1238–1240. [ÇaprazRef]

85. Koç, M.; Gregson, RP Kahverengi Yosun Cystophora'dan Bromlu Phlorethols ve Halojenlenmemiş Phlorotannins tıkanık. Fitokimya 1984, 23, 2633–2637. [ÇaprazRef]

86. Yelkenli, B.; Glombitza, Brown Alga Cystophora retroflexa'dan KW Halojenli Phlorethols ve Fucophlorethols. Nat. Toksinler 1999, 7, 57–62. [ÇaprazRef]

87. Koivikko, R.; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Kahverengi Alga Fucus vesiculosus'tan Florotanninlerin Yüksek Performanslı Sıvı Kromatografik Analizi. fitokimya Anal. 2007, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]

88. Corona, G.; Ji, Y.; Anegboonlap, P.; Hotchkiss, S.; Gill, C; Yaqoob, P.; Spencer, JPE; Rowland, I. Kahverengi Yosun Florotanninlerinin Gastrointestinal Modifikasyonları ve Biyoyararlanımı ve Enflamatuar Belirteçler Üzerindeki Etkileri. Br. J. Nutr. 2016, 115, 1240–1253. [CrossRef] [PubMed]

89. Sentkowska, A.; Pyrzynska, K. HILIC Kromatografi: Polifenollerin Analizinde Güçlü Teknik. Bitkilerde Bulunan Polifenollerde; Akademik Basın: Cambridge, MA, ABD, 2019; sayfa 341–351. [ÇaprazRef]

90. Marrubini, G.; Appelblad, P.; Maietta, M.; Papetti, A. Gıda Matris Analizinde Hidrofilik Etkileşim Kromatografisi: Güncellenmiş Bir İnceleme. Gıda Kimyası 2018, 257, 53–66. [ÇaprazRef]

91. Pyrzynska, K.; Sentkowska, A. Fenolik Gıda Bileşiklerinin HPLC Ayrımında Son Gelişmeler. kritik Rahip Anal. kimya 2015, 45, 41–51. [ÇaprazRef]

92. Montero, L.; Sanchez-Camargo, AP; Garcia-Cañas, V.; Tanniou, A.; Stiger-Pouvreau, V.; Russo, M.; Rastrelli, L.; Cifuentes, A.; Herrero, M.; Ibáñez, E. Kuzey Atlantik Kıyılarında Toplanan Kahverengi Macroalga Sargassum muticum'dan Florotanninlerin Kütle Spektrometresine Eşleştirilmiş Kapsamlı İki Boyutlu Sıvı Kromatografisi ile Çoğalma Önleyici Etkinlik ve Kimyasal Karakterizasyon. J. Kromatr. 2016, 1428, 115–125. [ÇaprazRef]

93. Swartz, M. HPLC Dedektörleri: Kısa Bir İnceleme. J. Liq. Kromatr. ilgili Teknoloji 2010, 33, 1130–1150. [ÇaprazRef]

94. Vissers, AM; Caligiani, A.; Sforza, S.; Vincken, JP; Gruppen, H. Phlorotannin Laminaria digitata'nın Bileşimi. fitokimya Anal. 2017, 28, 487–495. [ÇaprazRef]

95. Olate-Gallegos, C.; Barriga, A.; Vergara, C.; Fredes, C.; Garcia, P.; Giménez, B.; Robert, P. LC-DAD-ESI-MS/MS ile Şili Kahverengi Yosun Ekstrelerinden Polifenollerin Tanımlanması. J. Aquat. Gıda Ürünleri Teknoloji 2019, 28, 375–391. [ÇaprazRef]

96. Catarino, MD; Fernandes, İ.; Oliveira, H.; Carrascal, M.; Ferreira, R.; Silva, AMS; Cruz, MT; Mateus, N.; Cardoso, Mide ve Kolorektal Tümör Hücre Hatlarında Apoptotik Sinyallerin Aktivasyonu Yoluyla Fucus vesiculosus'tan Türetilmiş Florotanninlerin SM Antitümör Aktivitesi. Int. J. Mol. bilim 2021, 22, 7604. [CrossRef] [PubMed]

97. Audibert, L.; Fauchon, M.; Blanc, N.; Hauchard, D.; Ar Gall, E.; Gall, EA Kahverengi Deniz Yosunu Ascophyllum nodosum'daki Fenolik Bileşikler: Dağılım ve Radikal Temizleme Faaliyetleri. fitokimya Anal. 2010, 21, 399–405. [ÇaprazRef]

98. Heffernan, N.; Brunton, ABD; FitzGerald, RJ; Smyth, Makroalglerden Türetilmiş Florotanninlerin Molekül Ağırlığının ve Yapısal İzomer Bolluğunun TJ Profili. Mart Uyuşturucu 2015, 13, 509–528. [ÇaprazRef]

99. Kirke, DA; Smith, TJ; Rai, DK; Kenny, O.; Stengel, DB İzole Düşük Moleküler Ağırlıklı Florotanninlerin Kimyasal ve Antioksidan Kararlılığı. Gıda Kimyası 2017, 221, 1104–1112. [CrossRef] [PubMed]

100. Zhang, R.; Yuen, AKL; Magnusson, M.; Wright, JT; de Nys, R.; Ustalar, AF; Maschmeyer, T. Kahverengi Deniz Yosunu Carpophyllum flexuosum'dan Florotanninlerin Aktivitesinin ve Yapısının Karşılaştırmalı Bir Değerlendirmesi. Alg Çöz. 2018, 29, 130–141. [ÇaprazRef]

101. Allwood, JW; Evans, H.; Austin, C.; McDougall, Kahverengi Yosun, Ascophyllum nodosum'dan Florotanninlerin ve İlgili Fenoliklerin GJ Ekstraksiyonu, Zenginleştirilmesi ve LC-MSn Tabanlı Karakterizasyonu. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 448. [CrossRef]

102. Koivikko, R.; Eränen, JK; Loponen, J.; Jormalainen, V. Fucus vesiculosus'un Üç Popülasyonu Arasındaki Phlorotanninlerin HPLC ve Kolorimetrik Kantifikasyonla Ortaya Çıkan Değişimi. J. Chem. ekol. 2008, 34, 57–64. [ÇaprazRef]

103. Kirke, DA; Rai, DK; Smith, TJ; Stengel, DB Dört Gelgit Arası Kahverengi Makroalgdeki Düşük Moleküler Ağırlıklı Florotannin Profillerindeki Zamansal Değişimin Değerlendirilmesi. Alg Çöz. 2019, 41, 101550. [CrossRef]

104. Parys, S.; Kehraus, S.; Krick, A.; Glombitza, KW; Çarmeli, S.; Klimo, K.; Gerhäuser, C.; König, GM, Seçilmiş Sitokrom P450 Enzimlerinin Anti-Oksidan Aktivitesi ve İnhibisyonu ile Kahverengi Alga Fucus vesiculosus L.'den Fucophlorethols'un İn Vitro Kemopreventif Potansiyeli. Fitokimya 2010, 71, 221–229. [ÇaprazRef]

105. Hermund, DB; Plaza, M.; Turner, C.; Jónsdottir, R.; Kristinsson, HG; Jacobsen, C.; Nielsen, İzlanda Fucus vesiculosus'tan Phlorotannins'in UHPLC-DAD-ECD-QTOFMS ile KF Yapısına Bağlı Antioksidan Kapasitesi. Gıda Kimyası 2018, 240, 904–909. [CrossRef] [PubMed]

106. Ovchinnikov, DV; Bogolitsyn, KG; Druzhinina, AS; Kaplitsin, PA; Parşina, AE; Pikovskoy, II; Khoroshev, OY; Turova, PN; Stavrianidi, AN; Shpigun, OA Sıvı Kromatografi ve Kütle Spektrometresi ile Fucus vesiculosus Tipi Arktik Kahverengi Alg Ekstraktlarında Polifenol Bileşenlerinin İncelenmesi. J. Anal. kimya 2020, 75, 633–639. [ÇaprazRef]

107. Kellogg, J.; Grace, MH; Lila, MA Alaska Deniz Yosunu kaynaklı Phlorotannins, Karbolitik Enzim Aktivitesini Engeller. Mart Uyuşturucu 2014, 12, 5277–5294. [CrossRef] [PubMed]

108. Kellogg, J.; Esposito, D.; Grace, MH; Komarnitski, S.; Lila, MA Alaskan Seaweeds RAW 264.7 Makrofajlarında Enflamasyonu Azaltır ve 3T3-L1 Adipositlerinde Lipid Birikimini Azaltır. J. İşlev. Yiyecekler 2015, 15, 396–407. [ÇaprazRef]

109. Baldrick, FR; McFadden, K.; İbarlar, M.; Sung, C.; Moffatt, T.; Megari, K.; Thomas, K.; Mitchell, P.; Wallace, JMW; Pourshahidi, LK; et al. Kahverengi Alg Ascophyllum nodosum'dan (Poli)Fenol Açısından Zengin Ekstraktın Aşırı Kilolu veya Obez Bir Popülasyonda DNA Hasarı ve Antioksidan Aktivite Üzerindeki Etkisi: Randomize Kontrollü Bir Deneme. Am. J. Clin. Nutr. 2018, 108, 688–700. [ÇaprazRef]

110. Vázquez-Rodriguez, B.; Gutiérrez-Uribe, JA; Antunes-Ricardo, M.; Santos-Zea, L.; Cruz-Suárez, Silvetia sıkıştırmasından (Phaeophyceae) Florotanninlerin ve Polisakkaritlerin LE Ultrason Yardımlı Ekstraksiyonu. J. Uygulama Phycol. 2020, 32, 1441–1453. [ÇaprazRef]

111. Keusgen, M.; Glombitza, KW Phlorethols, Fuhalols ve Kahverengi Alga Sargassum spinuligerum'dan Türevleri. Fitokimya 1995, 38, 975–985. [ÇaprazRef]

112. Keusgen, M.; Glombitza, Brown Alga Sargassum spinuligerum'dan KW Pseudofuhalols. Fitokimya 1997, 46, 1403–1415. [ÇaprazRef]

113. Vijayan, R.; Chitra, L.; Penislusshiyan, S.; Palvannan, T. Sargassum wightii'nin Biyoaktif Fraksiyonunu Keşfetmek: Anjiyotensin-i-Dönüştürücü Enzim İnhibisyonunun ve Antioksidan Potansiyelinin İn Vitro Olarak Açıklanması. Int. J. Food Prop.2018, 21, 674–684. [ÇaprazRef]

114. Kord, A.; Foudil-Cherif, Y.; Amiali, M.; Boumechhour, A.; Benfares, R. Phlorotannins Bileşimi, Radikal Temizleme Kapasitesi ve Kahverengi Alga Cystoseira sauvageauana'dan Fenoliklerin Azaltma Gücü. J. Aquat. Gıda Ürünleri Teknoloji 2021, 30, 426–438. [ÇaprazRef]

115. Gheda, S.; Naby, MA; Muhammed, T.; Pereira, L.; Khamis, A. Streptozotosin Kaynaklı Diyabetik Sıçanlarda Kahverengi Deniz Yosunu Cystoseira sıkıştırmasından Ekstrakte Edilen Phlorotanninlerin Antidiyabetik ve Antioksidan Aktivitesi. çevre. bilim kirlilik. Res. 2021, 28, 22886–22901. [CrossRef] [PubMed]

116.Trifan, A.; Vasincu, A.; Luca, SV; Neophytou, C.; Wolfram, E.; Opitz, SEW; Savaş, D.; Bucur, L.; Cioroiu, BI; Miron, A.; et al. Biyoaktif Bileşik Kaynakları Olarak Romanya'nın Karadeniz Kıyısından Gelen Deniz Yosunlarının Potansiyelinin Ortaya Çıkarılması. Bölüm I: Cystoseira barbata (Stackhouse) C. Agardh. Gıda Kimyası Toksikol. 2019, 134, 110820. [CrossRef] [PubMed]

117. Gonçalves-Fernández, C.; Sineiro, J.; Moreira, R.; Gualillo, O. Atlantik Deniz Yosunu Bifurcaria bifurcata'dan Florotanninle Zenginleştirilmiş Fraksiyonların Ekstraksiyonu ve Karakterizasyonu ve Murin Hücre Hattında Sitotoksik Aktivitelerinin Değerlendirilmesi. J. Uygulama Phycol. 2019, 31, 2573–2583. [ÇaprazRef]

118. Catarino, MD; Alves-Silva, JM; Falcao, SI; Vilas-Boas, M.; Jordão, M.; Cardoso, Botanik Kökenli Bal Arısı Ürünlerinde Biyoaktif Bileşiklerin Tanımlanması İçin Bir Araç Olarak SM Kromatografisi. Bal Arısı Bitki Kaynaklı Ürünlerin Kimya, Biyoloji ve Potansiyel Uygulamalarında; Cardoso, SM, Silva, AMS, Ed.; Bentham Science Yayıncıları: Sharjah, Birleşik Arap Emirlikleri, 2016; s. 89–149. ISBN 9781681082370.

119. Ford, L.; Theodoridou, K.; Sheldrake, GN; Walsh, PJ Kahverengi Deniz Yosunlarında Phlorotannin Bileşiklerinin Kimyasal Karakterizasyonu ve Miktarının Belirlenmesi için Kullanılan Analitik Yöntemlerin Eleştirel Bir İncelemesi. fitokimya Anal. 2019, 30, 587–599. [CrossRef] [PubMed]

120. Isaza Martínez, JH; Torres Castañeda, Florotanninlerin HG Hazırlanması ve Kromatografik Analizi. J. Kromatr. bilim 2013, 51, 825–838. [ÇaprazRef]

121. Rajauria, G. Yosundaki Polifenollerin Kalitatif ve Kantitatif Değerlendirmesi için Ters Fazlı HPLC Yönteminin Optimizasyonu ve Validasyonu. J. Ecz. Biyomed. Anal. 2018, 148, 230–237. [ÇaprazRef]

122. Kumar, Y.; Singhal, S.; Tarafdar, A.; Pharande, A.; Ganesan, M.; Badgujar, Seçilmiş Yenilebilir Makroalglerin PC Ultrason Yardımlı Ekstraksiyonu: Tandem Kütle Spektrometresi (LC-MS/MS) ile Sıvı Kromatografi ile Polifenollerin Antioksidan Aktivitesi ve Kantitatif Değerlendirmesi Üzerindeki Etki. Alg Çöz. 2020, 52, 102114. [CrossRef]

123. Catarino, DM; Silva, MA; Cardoso, MS Fucaceae: Biyoaktif Phlorotannins Kaynağı. Int. J. Mol. bilim 2017, 18, 1327. [CrossRef]

124. Pantidos, N.; Bot, A.; Lund, V.; Conner, S.; McDougall, Yenilebilir Deniz Yosunu, Ascophyllum nodosum, İnhibit -Amilaz ve -Glukosidaz: Potansiyel Anti-Hiperglisemik Etkilerden GJ Fenolik Açıdan Zengin Ekstraktlar. J. İşlev. Yiyecekler 2014, 10, 201–209. [ÇaprazRef]

125. Karthik, R.; Manigandan, V.; Sheeba, R.; Saravanan, R.; Rajesh, PR Yapısal Karakterizasyonu ve Hint Kahverengi Yosunlarından Floroglusinolün Karşılaştırmalı Biyomedikal Özellikleri. J. Uygulama Phycol. 2016, 28, 3561–3573. [ÇaprazRef]

126. Parys, S.; Kehraus, S.; Pete, R.; Küpper, FC; Glombitza, K.-W.; König, GM Ascophyllum nodosum'da (Phaeophyceae) Polifenoliklerin Mevsimsel Değişimi. Avro. J. Physiol. 2009, 44, 331–338. [ÇaprazRef]

127. Shrestha, S.; Zhang, W.; Smid, SD Phlorotannins: Biyosentez, Kimya ve Biyoaktivite Üzerine Bir İnceleme. Gıda Biyosci. 2021, 39, 100832. [CrossRef]

128. Erpel, F.; Mateos, R.; Pérez-Jiménez, J.; Pérez-Correa, JR Phlorotannins: İzolasyon ve Yapısal Karakterizasyondan Antidiyabetik ve Antikanser Potansiyellerinin Değerlendirilmesine. Gıda Res. Int. 2020, 137, 109589. [CrossRef] [PubMed]

129. Jegou, C.; Kervarec, N.; Cerantola, S.; Bihanniç, İ.; Stiger-Pouvreau, V. NMR, Florotanninleri Ölçmek İçin Kullanın: Brittany'de (Fransa) Phloroglucinol Üreten Kahverengi Makroalg olan Cystoseira tamariscifolia Örneği. Talanta 2015, 135, 1–6. [ÇaprazRef]

130. Jegou, C.; Culioli, G.; Kervarec, N.; Simon, G.; Stiger-Pouvreau, V. LC/ESI-MSn ve Cystoseira C. Agardh (Fucales; Phaeophyceae) Cinsi İçinde Yararlı Taksonomik Araçlar Olarak 1H HR-MAS NMR Analitik Yöntemleri. Talanta 2010, 83, 613–622. [ÇaprazRef]

131. Ford, L.; Stratakos, AC; Theodoridou, K.; Dick, JTA; Sheldrake, GN; Linton, M.; Corcionivoschi, N.; Walsh, PJ Hayvan Yemlerinde Potansiyel Bir Antimikrobiyal Ajan Olarak Kahverengi Yosunlardan Elde Edilen Polifenoller. ACS Omega 2020, 5, 9093–9103. [ÇaprazRef]

132. Glombitza, KW; Rosener, HU; Müller, D. Bifuhalol ve Diphlorethol Aus Cystoseira tamariscifolia. Fitokimya 1975, 14, 1115–1116. [ÇaprazRef]

133. Jacobsen, C.; Sørensen, A.-DM; Beklet, SL; Ako, CC; Hermund, DB Karakterizasyonu ve Deniz Yosunlarından Yeni Antioksidanların Uygulamaları. Annu. Rev. Gıda Bilimi Teknoloji 2019, 10, 541–568. [ÇaprazRef]

134. Mateos, R.; Perez-Correa, JR; Domínguez, H. Deniz Fenoliklerinin Biyoaktif Özellikleri. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 501. [CrossRef]

135. Glombitza, KW; Hauperich, S.; Keusgen, Kahverengi Yosun Cystophora torulosa ve Sargassum spinuligerum'dan M. Phlorotannins. Nat. Toksinler 1997, 5, 58–63. [ÇaprazRef]

136. Koç, M.; Glombitza, KW; Rösener, Bifurcaria bifurcata'dan HU Polihidroksifenil Eterler. Fitokimya 1981, 20, 1373–1379. [ÇaprazRef]

137. Cerantola, S.; Breton, F.; Safra, EA; Deslandes, E. Fucus spiralis'teki Polimerik Fenollerin Fucol ve Fucophlorethol Sınıflarının Birlikte Oluşumu ve Antioksidan Aktiviteleri. Bot. Mart 2006, 49, 347–351. [ÇaprazRef]

138. McInnes, AG; Ragan MA; Smith, Genel Müdür; Walter, JA Deniz Kahverengi Alg Fucus vesiculosus L. 1H ve 13C Nükleer Manyetik Rezonans Spektroskopisinin Yüksek Molekül Ağırlıklı Polifloroglusinolleri. Olabilmek. J. Chem. 1985, 63, 304–313. [ÇaprazRef]

139. le Lann, K.; Cerrah, G.; Couteau, C.; Coiffard, L.; Cerantola, S.; Gaillard, F.; Larnikol, M.; Zubia, M.; Guerard, F.; Poupart, N.; et al. Kahverengi Macroalga Halidrys siliquosa'dan Phlorotanninlerin Güneş Kremi, Antioksidan ve Bakterisit Kapasiteleri. J. Uygulama Phycol. 2016, 28, 3547–3559. [ÇaprazRef]