İletişim: Audrey Hu Whatsapp/hp: 0086 13880143964 E-posta:audrey.hu@wecistanche.com

Soyut:Genel sağlık için artan bir endişe, yalnızca gıda endüstrisinde değil aynı zamanda kozmetik alanında da küresel bir doğal içerik pazarını yönlendiriyor. Bu çalışmada, üç İzlandalı bitkiden elde edilen sulu ekstraktların potansiyel kozmetik uygulamaları üzerine bir tarama yapılmıştır.Deniz yosunudarbeli elektrik alanları (PEF) tarafından üretilen s gerçekleştirilmiştir. Ulva lactuca, Alaria esculenta ve Palmaria palmata'dan PEF ile üretilen ekstraktlar, polifenol, flavonoid ve karbonhidrat içeriği açısından geleneksel sıcak su ekstraksiyonu ile karşılaştırılmıştır. Dahası,antioksidanözellikleri ve enzimatik inhibitör aktiviteleri, in vitro testler kullanılarak değerlendirildi. PEF, termal olmayan yapısı ve daha kısa ekstraksiyon süresi gibi çeşitli avantajlar göstererek geleneksel yönteme benzer sonuçlar sergiledi. Üç İzlanda türü arasında Alaria esculenta en yüksek fenolik (ortalama değer 8869.7 µg GAE/g dw) ve flavonoid (ortalama değer) gösterdi. değeri 12.098.7 µg QE/g dw) bileşikleri, aynı zamanda en yüksekantioksidankapasiteler. Ayrıca, Alaria esculenta özleri mükemmel anti-enzimatik aktiviteler sergilemiştir (76.9, 72.8, 93.0 ve kollajenaz, elastaz için yüzde 100,tirozinazandhyaluronidase, sırasıyla) cilt beyazlatma ve yaşlanma karşıtı ürünlerde kullanımları için. Bu nedenle, ön çalışmamız, PEF tarafından üretilen İzlanda Alaria esculenta bazlı özütlerin, doğal kozmetik ve kozmetik formülasyonlar için potansiyel bileşenler olarak kullanılabileceğini düşündürmektedir.

Anahtar Kelimeler:makroalgler; Ulva lactuca; Alaria esculenta; Palmaria palmata; PEF destekli ekstraksiyon;biyoaktif bileşikler; yeşil ekstraksiyon; Doğal içerik; kozmetik

cistanche doğal maddeleri beyazlatır

1. Giriş

Son yıllarda, potansiyel sağlık yararları olan yeni biyoaktif bileşiklere olan talep önemli bir artış göstermiştir. Birçok araştırma grubu, tarım-gıda endüstrisinde, farmakolojide, gıdalarda ve daha yakın zamanda kozmetik alanındaki uygulamalar için yeni ve sürdürülebilir doğal bileşik kaynakları bulmak için makroalgler gibi deniz organizmaları üzerine araştırmalara önem vermiştir [1,2] . Makroalgler, büyük biyoçeşitlilik ve karmaşık biyokimyasal bileşim ile karakterize edilen büyük ve heterojen bir fotosentetik organizma grubudur. Kimyasal yapıları ve pigment içeriklerine göre makroalgler, kahverengi algler (Phaeophyceae), kırmızı algler (Rhodophyta) ve yeşil algler (Viridiplantae) olmak üzere üçe ayrılabilir. Algal bileşikler hücre sitoplazmasının içinde depolanır veya hücre zarlarına bağlanır; bu nedenle, hücre bozulması, alg biyokütlesinin değerlendirilmesi için çok önemlidir. Ek olarak, hücre duvarı bileşimi, küçük zarlardan çok katmanlı karmaşık yapılara kadar değişen alg türleri arasında oldukça değişkendir ve bu da alg ürünlerinin geri kazanılmasını zorlaştırır [3]. Genel olarak deniz yosunları polisakkaritler, proteinler, lipidler ve fenolik bileşikler, terpenoidler, karotenoidler, pigmentler ve nitrojen türevleri gibi çok çeşitli ikincil metabolitler için mükemmel kaynaklardır [4-6]. Birincil metabolitler çok önemli olmasına rağmen, son veriler ikincil metabolitlerin içeriğinin biyolojik aktivitelerini belirlediğini göstermiştir.Deniz yosunuözler [7].

Genel sağlık ve zindelik için artan bir endişenin yanı sıra günlük ürünlerdeki zararlı kimyasalların farkındalığı, küresel bir doğal ve organik içerik pazarını yönlendiriyor [8]. Geçtiğimiz yıllarda, doğal içerik maddeleri ve çevre dostu ürünlerin tercih edilmesine yönelik tüketici bilinci, gıda endüstrisinden kozmetik ve kişisel bakım endüstrisine kadar genişlemiştir [9]. Ayrıca, mevcut küresel ısınma ve ekolojik sorunlar bağlamında, çevre sorunlarına ilişkin kamuoyu farkındalığı artmaktadır. Bu güncel endişeler ışığında tüketiciler, ilgilerini yeşil, sağlıklı ve kimyasal içermeyen ürünlere çevirmiştir. Sonuç olarak, kozmetik endüstrisi şu anda "kimyasal olarak temiz" güzellik ürünleri üretmek için toksik kimyasalları ve zararlı içerikleri yeni ve doğal yüksek değerli bileşiklerle değiştiriyor [10].

Kozmetikler geleneksel olarak vücut yapısını veya işlevlerini etkilemeden temizlik, güzelleştirme veya çekiciliği artırmak için insan vücuduna uygulanan ürünler olarak tanımlanmıştır. Bununla birlikte, yeni trendler ve son tüketici talepleri, minimum çabayla çok sayıda fayda sağlayan yeni ürünlerin geliştirilmesini teşvik etti. Kozmesötik terimi, tıbbi veya ilaç benzeri faydaları olduğu iddia edilen biyoaktif içerikli kozmetik ürünleri tanımlamak için artık sıklıkla kullanılmaktadır [11]. Kozmetikler genellikle vitaminler, fitokimyasallar, enzimler,antioksidanlarve/veya uçucu yağlar [12]. Makroalglerde bu biyoaktif bileşiklerin geniş bir yelpazesi bulunduğundan, yeniDeniz yosunus ve deniz yosunlarından elde edilen ekstraktların umut verici bir kozmetik ve kozmetik araştırma alanı olduğu kanıtlanmıştır [13,14].

Bir dizi ikincil metabolit,Deniz yosunucilt üzerinde foto-koruyucu, nemlendirici,antioksidan,anti-inflamatuar ve rejeneratif özellikler [15]. Bu faydalı etkilere dayanarak, güneş kremi, yaşlanma karşıtı ürünler gibi kozmetik ürünlere ve ayrıca hiperpigmentasyonun önlenmesi için algler kullanılırken, polisakkaritler cildi nemli tutmak ve kuruluğu önlemek için kullanılır [16]. Yaşlanma sırasında, hücre dışı matris proteinleri, kolajenazlar ve elastazlar gibi proteolitik enzimlerin aşırı aktivitesine karşı hassastır, bu da ciltte kırışıklıklar veya cilt elastikiyetinin kaybı gibi gözle görülür değişikliklere neden olur. Dış kaynaklı cilt yaşlanmasını önlemeye yönelik umut verici bir yaklaşım, doğal bileşikler tarafından kolajenaz ve elastaz aktivitelerinin inhibisyonudur. Bitki özleri geniş çapta araştırılmış ve anti-kollajenaz ve anti-elastaz aktivitelerine sahip olduğu bulunmuştur [17]. Ancak, deniz yosunu ekstraktlarının inhibitör enzimatik aktiviteleri hakkında çok az bilgi bulunmaktadır.

Deniz yosunlarından biyoaktiflerin izolasyonu için en sık uygulanan ekstraksiyon yöntemleri geleneksel tekniklere dayanmaktadır. Bununla birlikte, geleneksel yöntemlerin kullanımının, yüksek hacimlerde organik çözücülerin kullanılması, daha uzun ekstraksiyon süreleri, yüksek sıcaklıklar, seçicilik sorunları, yüksek enerji gereksinimleri ve hedeflenmemiş veya girişim yapan bileşiklerin birlikte ekstraksiyonu gibi çeşitli dezavantajları vardır [18]. Bu nedenle, yeşil kimya ilkelerine dayalı yeni ekstraksiyon teknikleri potansiyel bir ilgiye sahiptir [19].

Darbeli elektrik alanı (PEF), gelişmekte olan, ısıl olmayan ve enerji açısından verimli bir gıda işleme teknolojisidir [20]. PEF, genellikle yüksek voltajlarda (kV aralığı) ve kısa sürelerde (mikro veya nano saniye) elektrik alan darbelerinin iki elektrot arasına yerleştirilmiş bir ürüne uygulanmasını içerir [21]. Elektrik darbelerinin uygulanması, hücre zarlarında elektroporasyon veya elektro-geçirgenlik olarak tanımlanan tersinir veya tersinmez gözeneklerin oluşumunu üretir, bu da sonuç olarak çözücülerin hızlı difüzyonunu ve hücre içi bileşiklerin kütle transferini arttırmayı kolaylaştırır [22]. Son uygulamalar, biyo-, gıda ve tarım ürünlerinden bir ekstraksiyon tekniği (PEF-destekli ekstraksiyon) olarak darbeli elektrik enerjisinin kullanımına odaklanmıştır [23]. PEF işlemi ile daha yüksek saflıkta ekstraktlar elde etmek, polifenoller, karotenoidler veya antosiyaninler gibi biyoaktif bileşiklerin ekstraksiyon hızını artırmak ve organik çözücülerin kullanımını ortadan kaldırmak ve ekstraksiyon süresini kısaltmak mümkündür [24,25]. PEF tedavisi, proteinler [26-28], karbonhidratlar [29,30], lipidler [31,32] ve karotenoidler, klorofiller veya fikosiyaninler [22,33] gibi pigmentler gibi farklı deniz kaynaklarından değerli bileşiklerin ekstraksiyonu için başarıyla uygulanmıştır. ,34] mikroalglerden ve deniz yosunlarından.

Bu nedenle, bu çalışmanın temel amacı İzlanda'da yetişen üç makroalg türünden PEF ekstraktlarının potansiyel kozmetik uygulamalarını değerlendirmektir: U. lactuca(yeşil makroalg), A. esculenta (kahverengi makroalg) ve P. palmata (kırmızı makroalg) . Yeşil formülasyonlar için organik ve doğal bileşenler geliştirme çabasıyla, PEF destekli ekstraksiyon, geleneksel organik solvent ekstraksiyonuna çevre dostu bir alternatif olarak önerildi. Ekstraksiyon işleminden sonra suluDeniz yosunuekstreler polifenol, flavonoid ve karbonhidrat içeriği açısından karakterize edildi. Dahası,antioksidanözellikleri ve enzimatik inhibitör aktiviteleri, in vitro aktivite testleri kullanılarak değerlendirildi. Burada rapor edilen sonuçlar, doğal ve sürdürülebilir kaynaklardan izole edilmiş biyolojik olarak aktif bileşikleri içeren kozmetik ürünlerde yenilikçi formülasyonlar için aktif bileşenler üretmek amacıyla kahverengi, kırmızı ve yeşil makroalglerin anlaşılmasını geliştirmek için bir temel sağlayacaktır.

2. Sonuçlar ve Tartışma

2.1. İzlanda Deniz Yosunu Biyokütlesinin İşlenmesi için PEF Destekli Ekstraksiyon

Sonuçlar, elektriksel iletkenliğin A. esculenta'dan hazırlanan süspansiyonda en yüksek olduğunu ve bunu P. palmata ve U. lactuca'nın izlediğini (p < {{0}}.05)="" göstermektedir="" (tablo="" 1).="" ancak="" tedavi="" tipinin="" etkisi="" anlamlı="" bulunmadı="" (p=""> 0.05). Elektriksel iletkenlik ölçümü, artan hücre zarı geçirgenliğinin bir sonucu olarak hücre içi iyonik maddelerin salınımı için biyolojik dokularda PEF işleminin etkinliğini değerlendirmek için diğer yazarlar tarafından başarıyla kullanılmıştır [35-37].

Çalışmamızda, ekstraksiyon işlemlerinin neden olduğu iletkenlik değişiklikleri HW süspansiyonlarında en yüksek olma eğiliminde olduğundan, sonuçlar bu maddelerin PEF tarafından daha güçlü bir salıverildiğini göstermedi. Önceki çalışmalar, hücre dışı ortamın ilk iletkenliğinin elektroporasyon etkinliğini etkilediği sonucuna varmıştı, ancak bu iki faktör arasında pozitif veya negatif bir ilişki olup olmadığı konusunda bir anlaşma eksikliği var [38]. İletkenlik ve malzemenin özelliklerindeki farklılıklar karşılaştırmayı karmaşık hale getirebilir. Çalışmamızda, A. esculenta süspansiyonları ile diğer iki türün iletkenliği arasında ekstraksiyon işlemi sırasında iletkenlik değişikliklerinin derecesine yansımayan büyük bir fark vardı. Kahverengi deniz yosununun kül içeriğinin, diğer iki türe kıyasla A. esculenta süspansiyonlarındaki yüksek iletkenliği kısmen açıklayabilen, büyük ölçüde iyonlardan oluşan kuru ağırlığının yüzde 50'sinden fazlasını oluşturabileceği belirtilmiştir [39].

Sonuçlar, U. lactuca süspansiyonundaki pH'ın diğer iki türe göre daha düşük olduğunu, ancak ekstraksiyon türünden net bir etki üretilmediğini göstermektedir. Sıcaklık, işlemden önce 22 ± 1◦C'den HW ile 95 ◦C'ye (tüm türler için), 36.0 ± 1.0 ◦C, 46.3 ± 0'a yükseltildi. 6 ◦C ve 51.0 ± 1◦C, A. esculenta, P. palmata ve U. lactucasüspansiyonlarında PEF ile. Aynı eğilim, daha sonra HW ile ısıtılan PEF ile tedavi edilen gruplar için de görüldü. Sıcaklıktaki artış, PEF işlemi sırasında süspansiyondaki elektrik enerjisinin termal enerjiye (ohmik ısıtma) dönüştürülmesinden kaynaklanmıştır. Sıcaklık artış seviyesinin uygulanan akımla orantılı, ancak iletkenlik ile ters orantılı olduğu bilinmektedir. Bu neden P. palmata veU'yu açıklayabilir. lactuca, A. esculenta'dan daha düşük iletkenliğe sahip olmalarına rağmen, PEF tedavisi sırasında daha yüksek sıcaklığa ulaşmıştır.

2.2. İzlanda Deniz Yosunu Özlerinin UV-VIS Absorpsiyon Spektrumları

İncelenen deniz yosunları spektral profillerde farklılık gösterir (Şekil 1), bu da kompozisyonun ve UV absorpsiyon potansiyelinin türler arasında farklılık gösterdiğini gösterir. Bununla birlikte, ekstraksiyon tekniği türü UV absorpsiyon spektrumlarında kayda değer bir etki göstermedi; deniz yosunu ekstraktları, ekstraksiyon yönteminden bağımsız olarak benzer absorpsiyon profilleri gösterdi.

Yeşil alg U. lactuca'nın UV absorpsiyon spektrumları, UV-B aralığında (280-320 nm) (Şekil 1a) belirgin bir tepe gösterirken, kahverengi alg A. esculenta'dan elde edilen ekstraktlar, net bir absorpsiyon bölgesi oluşumu göstermedi (Şekil 1c). ). Ancak sonuçlar, A. esculenta'daki yüksek fenolik bileşik içeriğinden kaynaklandığı varsayılan U. lactuca ve P. palmata'ya kıyasla A. esculenta ekstraktlarında 220 nm'de daha güçlü bir absorbans gösterdi(Tablo 2). Bu aralıktaki maksimum absorpsiyon, fenolik bileşikler ve alginatlar arasındaki bir bağlantı ile ilişkilendirilmiştir. Bu ilişkinin zaman içinde fenolik bileşiklerin UV absorpsiyon kapasitesini koruduğu varsayılmaktadır [40].

Daha ilginç bir bulgu, kırmızı alg özleri için elde edilen sonuçların, P. palmata, UV-A radyasyonunun (320-400 nm) bir kısmını emer. Kırmızı alglerin, bu spesifik UV bölgesinde absorbe eden mikosporin benzeri amino asitler (MAA'lar) gibi ultraviyole radyasyon absorpsiyon yeteneklerine sahip fotokoruyucu bileşikler biriktirdiği bilinmektedir [41]. P. palmata, palythinol (332 nm'de pik absorpsiyon), asterina-330 (absorpsiyon tepe noktası) gibi bu aralıkta absorbe eden MAA'ların [42] mevcudiyetine uygun olarak 320 ve 340 nm arasındaki belirgin tepe noktaları ile UV absorpsiyon spektrumunda mükemmeldi. 330 nm), porfira-334 (334 nm'de pik absorpsiyon) ve diğerleri [43]. Çözücü türü gibi ekstraksiyon koşullarının ekstraksiyonun verimliliğini etkilediği bilindiğinden, bu çalışmadaki sonuçlar, MAA'ların P. palmata'dan su ile ekstraksiyonuna ilişkin önceki çalışmalarla karşılaştırıldı. Bu çalışmalarda, bu çalışmada olduğu gibi, 325 ila 330 nm'de [44] absorpsiyon maksimum pikleri tespit edilmiştir. Bu nedenle, 320 ile 340 nm arasında gözlenen piklerin MAA'ların varlığından kaynaklanabileceğini varsaymak mümkündür.

350 ve 700 nm arasındaki absorpsiyon spektrumlarındaki farklılıklar, yeşil, kahverengi ve kırmızı makroalg, klorofil-b (450-500 nm), fukoksantin (400-500 nm) ve fikoeritrin fotosistemlerinde farklı aksesuar pigmentlerin varlığı ile açıklanmıştır. (600-650 nm) sırasıyla [45]. Ekstraktlardaki suda çözünür bileşiklerin konsantrasyonu daha güçlü etkilere sahipti. Sonuç olarak, alg türleri arasındaki farklı pigmentleri yansıtan desen bu çalışmada belirgin değildi.

2.3. İzlanda Deniz Yosunu Özlerinin Toplam Fenolik, Flavonoid ve Karbonhidrat İçeriği

içindeki toplam fenolik içerikDeniz yosunus, 1592 ile 9368 µg GAE/g dw arasında değişmektedir(Tablo 2). Kahverengi alg A. esculenta fenolik bileşiklerin en yüksek miktarını (p < 0.05)="" gösterdi="" (ortalama="" değer="" 8869.7="" µg="" gae/g="" dw),="" ardından="" p.="" palmata="" (ortalama="" değer1806.2="" µg)="" gae/g="" dw)="" ve="" u.="" lactuca="" (ortalama="" değer="" 1750,7="" µg="" gae/g="" dw)="" (p.="" palmata="" ve="" u.="" lactuca="" özütleri="" arasında="" önemli="" farklılıklar="" yoktu)).="" her="" deniz="" yosunu="" türü="" için,="" polifenollerin="" içeriği="" u.="" lactuca="" dışında="" ekstraksiyon="" yöntemleri="" arasında="" farklılık="" göstermedi,="" bu="" da="" hw'nin="" en="" verimli="" teknik="" olduğunu="" gösterdi="" (p="">< 0.05).="" bununla="" birlikte,="" pef'in="" termal="" olmayan="" yapısı,="" daha="" kısa="" ekstraksiyon="" süresi="" (10="" dakikaya="" karşı="" 45="" dakika)="" ve="" yeşil="" süreç="" dahil="" olmak="" üzere="" avantajları="">

Üç alg grubu arasında, kahverengi makroalgler, kırmızı ve yeşil makroalglerden daha fazla sayıda polifenol içerir. Sonuçlar, kahverengi (örn., A. esculenta ve Saccharina latissma) alg türlerinin kırmızı (P. palmata) ve yeşil türlerden (örn., U. lactuca) daha yüksek fenolik içeriğe sahip olduğunu bildiren ilk çalışmalarla [46,47] uyumluydu. Bu, ortalama polifenol içeriğinin türe özgü olduğu (A. esculenta > S. latissma > P. palmata) ve fenolik içeriğin A. esculenta'da diğer türlere göre üç kattan daha fazla olduğu sonucuna varan diğer yazarlar tarafından desteklenmiştir (48). A. esculenta: 37 mg floroglusinol eşdeğeri (PGE)/g dw; S. latissma: 8 mg PGE/g dw; P. palmata: 5 mgGAE/g dw). Ayrıca, aynı çalışmada yazarlar, polifenol içeriğinin mevsime göre değiştiğini, uzamsal varyasyonların (algler Norveç, Fransa ve İzlanda'da toplanmıştır) marjinal bir etki gösterdiğini bildirmiştir. Örneğin, Gager ve ark. (2020), ilkbaharda 20 mg GAE/g DW'nin altına kıyasla sonbaharda 300 mg GAE/g DW'den fazla olan A. esculenta'nın polifenol içeriğinde mevsimsel değişikliklerin önemli bir etkisi olduğunu bulmuştur. Brit tany'de (Fransa) ticari olarak hasat edilen yedi kahverengi deniz yosunundan elde edilen florotaninler,1H NMR ve in vitro analizler ile tespit edildi: kozmetik uygulamalarda zamansal varyasyon ve potansiyel değerlendirme. Örneklerimiz Temmuz (U. lactuca ve A. esculenta) ve Kasım (P. palmata) aylarında toplanmıştır. Roleda'nın çalışmasında [48], Trondheim, Norveç'ten A. esculenta'nın (İzlanda'da toplanmamıştır) ortalama içeriği yaz aylarında 40 mg PGE/g dw ve İzlanda'dan P. palmata iken sonbaharda 4 mg GAE/g dw idi. Çalışmamızla karşılaştırıldığında rapor edilen daha yüksek değerler, kullanılan ekstraksiyon ortamı (80:20 aseton:su) ile açıklanabilir ve muhtemelen daha yüksek ekstraksiyon verimi ile sonuçlanacaktır. Ultrason ile etanol ve su (50:50) karışımı kullanan A. esculenta ekstraktları için daha yüksek bir polifenol içeriği de bulunmuştur [49]. Bununla birlikte, aynı ekstraksiyon ortamı ve klasik solvent ekstraksiyonu kullanılarak, A. esculenta'nın, bu çalışmada gözlemlenene nispeten benzer şekilde, 44.1 mg GAE/100 g dw susuz ekstraktları [50] içerdiği rapor edilmiştir.

Ortalama flavonoid içeriği türe özgüydü (A. esculenta > U. lactuca > P. palmata;(p < 0.{{10}}5) (Tablo 2). A. esculenta ekstraktları için flavonoidler gözlenirken (ortalama değer 12098.7 µg QE/g dw), U. lactuca için daha düşük içerik (ortalama değer 4152.4 µg QE/g dw) bulundu ve P. palmata ekstraktları için minimum bir içerik belirlendi( ortalama değer 905.8 µg QE/g dw) Toplam fenolik içerik için bulunan davranışa benzer şekilde, ekstraksiyon teknolojisi tipinin, U. lactuca hariç, flavonoid içeriği üzerinde önemli etkileri yoktu (p > 0.05). HW ve her iki tekniğin kombinasyonu (PEF artı HW), U. lactuca'da flavonoidlerin ekstraksiyonu için en etkili tekniklerdi (p < 0.05).

Karasal bitkilerde flavonoid içeriği hakkında çok sayıda çalışma vardır, ancak alglerde ve özellikle bu çalışmada incelenen türlerde flavonoid içeriği çalışmaları azdır [51]. Yani, Ummat ve ark. [49], ultrason destekli ekstraksiyonun 11 hastanın hepsinde flavonoidlerin geri kazanımını arttırdığını bildirdi.Deniz yosunu(A. esculenta dahil) yüzde 50 etanol karışımı kullanılarak geleneksel solvent ekstraksiyonlarına kıyasla araştırıldı. Başka bir çalışmada, İran'ın güneyindeki Basra Körfezi'nin kuzey kıyılarının farklı yerlerinde yetişen dört Ulva türünün (Ulva clathrata, Ulva linza, Ulva flexuosa ve Ulva intestinalis) metanolik ekstraktlarında flavonoidler ölçülmüştür; alg ekstraktlarının flavonoid içeriği 8 ila 33 mg RE/g dw arasında değişmektedir [52]. Bununla birlikte, aynı araştırma grubu tarafından yapılan önceki çalışmalar, mevsimlerin ve çevre koşullarının değişmesiyle kimyasal bileşenlerde belirgin değişiklikler bulmuştur [53]. Bu nedenle, bu biyoaktif bileşiklerin bibliyografyasına tam bir genel bakışa sahip olmak biraz zordur.Deniz yosunus, mevcut yayınlanmış araştırmaların olmamasından, aynı zamanda flavonoid içeriğindeki büyüme koşullarından ve coğrafi konumdan etkilenen değişikliklerden dolayı.

Mean carbohydrate content of produced extracts was also species-specific (P. palmata >U. lactuca > A. esculenta; p < 0.05)="" (tablo="" 2).="" içerik,="" yosun="" türlerine="" bağlı="" olarak="" 44,8="" ila="" 510="" mg="" glue/gdw="" arasında="" değişmektedir.="" deniz="" yosunu,="" yapısal="" destek="" ve="" enerji="" depolama="" dahil="" olmak="" üzere="" makroalgal="" hücreler="" için="" önemli="" işlevleri="" olan="" çok="" miktarda="" polisakkarit="" içerir.="" örneğin,="" kırmızı="" ve="" kahverengi="" deniz="" yosunu="" hücre="" duvarlarının="" ana="" kısmı,="" agar,="" aljinat="" ve="" karagenan="" olarak="" bilinen="" sülfatlanmış="" galaktanlarla="" temsil="" edilir="" [54].="" redalg="" p.="" palmata,="" en="" yüksek="" miktarda="" karbonhidrat="" içeriği="" gösterdi="" (ortalama="" değer="" 441="" mgglue/g="" dw).="" sonuçlar,="" palmaria="" türlerinde="" en="" yüksek="" polisakkarit="" konsantrasyonunu="" bildiren="" önceki="" çalışmalarla="" uyumluydu="" [55].="" ayrıca,="" mutripah="" ve="" ark.="" [56],="" bu="" çalışmada="" gözlemlenene="" nispeten="" benzer="" şekilde,="" 469="" mg/g="" kuru="" deniz="" yosunu="" olan="" p.="" palmata'nın="" toplam="" karbonhidrat="" içeriğini="">

Yeşil makroalg U. lactuca, kullanılan ekstraksiyon tekniğine bağlı olarak 249,5 mg GluE/g'ye kadar içerik göstermiştir (Tablo 2). Literatürlere dayanarak, U. lactuca'da, biyokütlenin kuru ağırlığının yüzde 9 ila 36'sına katkıda bulunan ulvan adı verilen ana bileşene sahip yapısal polisakkaritlere karşılık gelen suda çözünür ve çözünmez selüloz vardır [57]. Ulvan esas olarak sülfatlanmış ramnoz, üronik asitler (glukuronik asit ve iduronik asit) ve ksilozdan oluşur. Polar doğası nedeniyle, ulvan susuz çözeltilerinin çözünürlüğü, yüksek sıcaklıklarda (80–90 ◦C) ekstraksiyon ile arttırılır [58]. Ekstraksiyon sıcaklığı, geleneksel sıcak su ekstraksiyonu ve her iki yöntemin (PEF artı HW) kombinasyonu ile üretilen U. lactuca ekstraktlarının toplam karbonhidrat içeriğinin, sadece PEF kullanılarak elde edilen içerikten daha yüksek (p < 0.05)="" olmasının="" nedeni="">

Öte yandan, diğer yazarlar polisakkarit içeriğindeki mevsimsel değişimin önemini vurgulamaktadır. Örneğin, Schiener ve diğerleri, mevsimsel değişiklikleri tanımladığını ve yosun için en iyi hasat zamanlarını tahmin ettiğini iddia ediyor. A. esculenta'nın mevsimsel bileşim analizi, karbonhidratların maksimum değerlerinin protein, kül, polifenol ve nem konsantrasyonlarının azalmasıyla çakıştığını göstermiştir [39]. Yazarlara göre, mevsimler ve türler arasında değişen bu ilişkiler, endüstriler tarafından hedeflenen verimleri en üst düzeye çıkarmak için kullanılabilir.Deniz yosunubileşenler.

2.4. İzlanda Deniz Yosunu Özlerinin Antioksidan Kapasiteleri

A. esculenta, üç alg türünün ham özütleri arasında en güçlü DPPH süpürme aktivitesine sahipti (p < {{0}}.05),="" süpürme="" etkileri="" yüzde="" 90'dan="" daha="" yüksek="" (tablo="" 3).="" standart="" solüsyonlar="" olan="" a.="" esculenta,="" 100="" ug/ml="" askorbik="" asit="" (yüzde="" 87.9),="" gallik="" asit="" (yüzde="" 91.0)="" ve="" -tokoferol="" (yüzde="" 87.9)="" olarak="" karşılaştırılabilir="" temizleme="" aktivitesi="" gösterdi.="" sonuçlarımız,="" aynı="" zamanda="" pozitif="" sonuç="" bildiren="" son="" çalışmalarla="" [50]="">antioksidanA. esculenta ekstrelerinin aktivitesi. Şaşırtıcı bir şekilde, önemli bir fark yokantioksidantest edilen farklı ekstraksiyon yöntemleri arasında aktivite gözlemlendi(p > 0.05). Diğer çalışmalar yeşil tekniklerin (mikrodalga destekli ekstraksiyon veya enzimatik ekstraksiyon gibi) daha yüksek antioksidan aktiviteler sergileyerek biyoaktif bileşiklerin ayrışmasını etkili bir şekilde önleyebileceğini gösterdiğinden, PEF ekstraktlarının sıcak geleneksel ekstraksiyon ile üretilen ekstraktlardan daha iyi antioksidan değerler göstermesi bekleniyordu [59]. ,60].

yeteneğiDeniz yosunudemiri (Fe3 plus ) demirli (Fe2 plus ) iyona indirgeyen ekstraktlar ve radikal ABTS'yi temizleme yeteneği de sırasıyla FRAP ve ABTS yöntemi ile incelenmiştir. FRAP sonuçları DPPH'ye benzer eğilimler gösterdi ve A. esculenta'nın üç alg türünün ham özütleri arasında demiri (Fe3 artı ) demirli (Fe2 artı ) iyona indirgeme konusunda en güçlü yeteneğe sahip olduğunu gösterdi (p < 0).{{6}="" }5).="" ancak="" abts="" için="" farklı="" bir="" davranış="" bulundu.="" tüm="" deniz="" yosunu="" özleri,="" abts="" radikalini="" temizlemek="" için="" benzer="" bir="" yetenek="" gösterdi="" (p=""> 0.05), bu türlerin muhtemelen temizleme faaliyetinden sorumlu olan bazı etkili bileşikler içerdiğini gösterir.

Genel olarak, kahverengi alglerin daha yüksek oranda sunduğu bilinmektedir.antioksidankırmızı ve yeşil ailelere kıyasla potansiyel [61]. Sonuçlarımız ayrıca, A'dan sulu ekstraktların olduğunu gösterdi. esculenta, serbest radikallerin temizlenmesi ve gücün azaltılması açısından etkili antioksidan aktiviteler sergiledi, bu da A. esculenta'nın potansiyel olarak doğal antioksidanlar için bir kaynak olabileceğini düşündürdü. A. esculenta ekstraktları için gözlemlenen yüksek antioksidan aktivite, kahverengi alg ekstraktlarında belirlenen fenolik bileşiklerdeki yüksek içerikle bağlantılı olabilir. Birçok çalışmada,antioksidanalg ekstraktlarının aktivitesi fenolik bileşiklere atfedilmiştir ve fenolik içerik ile temizleme kapasitesi arasında çoğunlukla DPPH ile pozitif korelasyonlar gösterir [62,63]. A. esculenta ekstraktları için mevcut çalışmada da benzer korelasyon sonuçları bulundu (Bölüm 2.6'daki daha iyi tartışmaya bakın. Kimyasal bileşikler ve biyoaktif özellikler arasındaki korelasyonlar).

2.5. İzlanda Deniz Yosunu Özünün Enzimatik İnhibitör Aktiviteleri

İzlandacaDeniz yosunuözleri, test edilen tüm enzimlere karşı pozitif inhibitör etkiler sergileyerek (Tablo 4), alg kaynaklarından gelen doğal enzimatik inhibitörlerin kullanılması için yeni yollar açtı. Bildiğimiz kadarıyla, İzlanda'nın enzimatik inhibe edici aktiviteleri ilk defadır.Deniz yosunuPEF tarafından üretilen özler test edilmiştir.

2.5.1. Kollajenaz İnhibisyon Aktivitesi

A. esculenta özleri, yüzde 68 ila 91 arasında değişen pozitif kollajenaz inhibisyonu gösterirken, P. palmaria ve U. lactuca özleri, kollajenaza karşı önemsiz inhibisyon aktiviteleri sergiledi (Tablo 4). A. esculenta sıcak su özütü, epigallocatechin-3-gallate (EGCG) standart solüsyonundan (yüzde 63,2) daha yüksek ve ticari enzimatik kit tarafından sağlanan pozitif standartla (yüzde 74,9) karşılaştırılabilir olan yüzde 71,1 kollajenaz inhibisyon aktivitesi sergiledi. bulgu, PEF tarafından üretilen A. esculenta özütlerinin yüzde 91'lik akollajenaz inhibisyonu gösterdiği ve ticari kit tarafından sağlanan inhibitörden bile daha yüksek aktivite sergilediğiydi. Bu aktivitenin, PEF artı HW kombinasyonu ile değil, sadece PEF tarafından üretilen su ekstraktlarında gözlemlendiği vurgulanmalıdır. Bu davranış, sıcak su işleminin kolajenaz aktivitesini inhibe etmekten sorumlu bileşikler üzerinde olumsuz bir etkiye sahip olma olasılığı ile açıklanabilir. Bununla birlikte, ham alg ekstraktlarının karmaşıklığı nedeniyle bu sonuçları açıklamak için ek çalışmalara ihtiyaç vardır. Yukarıda bahsedilen araştırma grubu, PEF tarafından üretilen bu olumlu etkileri daha iyi anlamak için şu anda A. esculenta ekstraktlarındaki inhibisyon moleküllerinin tanımlanması üzerinde çalışmaktadır.

A. esculenta özütleri tarafından kolajenazın inhibisyonuna ilişkin sonuçlar, yaşlanma önleyici etkisi nedeniyle A. esculenta'nın ticari özütlerde kullanıldığı önceki verilere uygundur. Yaşlanmayla birlikte kolajenaz aktivitesine bağlı olarak kolajen yıkımı meydana gelir ve ciltte kırışıklıklar oluşur. Doğal olarak oluşan bileşikler tarafından kolajenazın inhibisyonu, yaşlanma karşıtı ürünler için ilginç bir fırsattır. Örneğin, kozmetik endüstrisi için içerik tedarikçisi olan SEPPIC, A'nın lipofilik bir ekstraktını sunmaktadır. esculenta (Kalpariane® AD) [64].

2.5.2. Elastaz Engelleme Aktivitesi

Yalnızca A. esculenta'nın ham özleri, elastazı inhibe ederek, inhibisyonun yüzde 70'sinden daha yüksek aktiviteler sergilemiştir (Tablo 4). Ancak, A. esculenta ekstraktlarının anti-elastaz aktiviteleri ekstraksiyon yöntemleri arasında istatistiksel olarak farklılık göstermedi (p > 0.05). 1 mM'de yüzde 100 ve 0.5 mM'de yüzde 58.7 inhibisyon gösteren iyi bilinen bir elastaz inhibitörü olan quercetinsolutions ile karşılaştırıldığında, A. esculenta'dan elde edilen ekstraktların performansı yüksekti.

Elastaz, spesifik peptit bağlarını kırarak elastini azaltabilen bir proteinaz enzimidir. Sonuç olarak, dermis tabakasındaki elastaz aktivitesinin inhibisyonu, cilt elastikiyetini korumak için kullanılabilir [65]. Birçok bitki özütü, elastaz inhibitörleri olarak tanımlanmıştır [17]; bununla birlikte, alg kaynaklarından elastaz inhibisyonu hakkında çok az araştırma yapılmıştır. Literatür verilerine göre bitkilerden ekstrakte edilen polifenollerin güçlü elastaz ve hiyalüronidaz inhibitörleri olduğu bilinmektedir [66]. Yakın zamanda yapılan bir çalışma, kahverengi alglerdeki tanen türü olan phlorotaninlerin, deniz yosunu Eisenia bicyclis ve kahverengi alg Ecklonia cava özlerinin, elastaz aktivitesini önemli ölçüde azaltarak cilde fayda sağladığını bildirdi [67]. Bu çalışmada üretilen A. esculenta özleri, çalışılan diğer türlere kıyasla en yüksek TPC ve TFC değerleri (Tablo 4), bu nedenle P. palmaria ve U. lactuca'dan elde edilen sulu ekstraktların anti-elastaz aktiviteleri göstermemesinin nedeni bu olabilir. Bu hipotezi doğrulamak için, anti-enzimatik aktivitelerin fenolik maddelerin içeriği ile pozitif korelasyon gösterdiğini öne süren Pearson korelasyon analizi yapıldı (bakınız Bölüm 2.6. Kimyasal bileşikler ve biyoaktif özellikler arasındaki korelasyonlar).

2.5.3. Tirozinaz İnhibisyon Aktivitesi

A. esculenta özleri pozitif gösterditirozinazkullanılan tüm ekstraksiyon yöntemleri için yüzde 90'dan daha yüksek inhibisyon, P. palmaria ve U. lactuca ekstraktları ise tirozinaz inhibe edici etkiler göstermedi (Tablo 4). Ancak, A. esculenta ekstraktlarının anti-tirozinaz aktiviteleri ekstraksiyon yöntemleri ile farklılık göstermedi (p < 0.05).="" a.="" esculenta="" ekstraktlarının="" etkisini="" test="" edilen="" kersetin="" solüsyonları="" ile="" karşılaştırıldığında,="" kahverengi="" alglerin="" ham="" ekstraktları="" bu="" solüsyonlardan="" daha="" iyi="" inhibitör="" aktiviteler="" gösterdi="" (sırasıyla="" 0,5="" ve="" 1="" mm="" kuersetin="" solüsyonları="" için="" yüzde="" 88="" ve="" 75).="" literatüre="" dayalı="" olarak,="" çeşitli="" araştırmacılar="" tarafından="" bitkilerin,="" bakterilerin="" ve="" mantarların="" anti-tirozinaz="" aktiviteleri="" rapor="" edilmiştir="" [68].="" bununla="" birlikte,="" farklı="" çalışmalar="" deniz="" yosunlarından="" türetilen="" biyoaktif="" bileşiklerin="" cilt="" beyazlatma="" ajanları="" olarak="" kullanılmak="" için="" iyi="" bir="" potansiyele="" sahip="" olduğunu="" öne="" sürse="" de="" [13],="" bu="" hala="" keşfedilmemiş="" bir="" alandır="" ve="" sadece="" birkaç="" çalışma="" yapılmıştır.="" bu="" alanda="" yapılan="" çalışmaların="" çoğu,="" a.="" esculenta="" ekstraktlarının="" en="" iyi="" anti-tirozinaz="" aktivitelerini="" sergilediği="" bu="" çalışmanın="" sonuçlarıyla="" uyumlu="" olarak,="" kahverengi="" alglere="" odaklanmıştır.="" örneğin,="" kahverengi="" alglerde="" bulunan="" yaygın="" ikincil="" metabolitler="" olan="" floroglusinol="" türevleri="" ve="" florotaninler,="" bakırı="" şelatlama="" yeteneklerinden="" dolayı="" tirozinaza="" karşı="" inhibe="" edici="" aktivite="" göstermiştir="" [69].="" yakın="" tarihli="" bir="" çalışmada,="" mikrodalga="" destekli="" ekstraksiyon="" ile="" üretilen="" kahverengi="" alg="" lessonia="" trabekülat="" özütü,="" yüzde="" 33.73'lük="" bir="" tirozinaz="" aktivitesini="" inhibe="" etti="" [60].="" başka="" bir="" çalışmada,="" kahverengi="" alg="" turbinaria="" conoides="" özütü="" olarak="" aktivite="">antioksidanvetirozinazinhibitör, ancak bu durumda çözücü olarak etanol kullanıldı [70]. Mantar bitkilerinden ekstrakte edilen polifenollerin inhibe edici gücü arasında anlamlı bir ilişkitirozinazönceki çalışmalarda bildirilmiştir [68]. Benzer şekilde, bu çalışmanın sonuçları, tirozinaza karşı inhibe edici aktivitenin, flavonoid ve fenolik içerik ile pozitif olarak ilişkili olduğunu göstermektedir (bkz. Bölüm 2.6. Kimyasal bileşikler ve biyoaktif özellikler arasındaki korelasyonlar).

Tirozinaz, derideki melanin pigmentinin biyosentezinde önemli bir rol oynar. Melanin, çeşitli patolojik koşullara neden olabilen zararlı ultraviyole ışınlarına karşı korumadan sorumludur [71]. Ek olarak, melanin hiperpigmente noktalar olarak biriktiğinde estetik problemler yaratabilir [72]. Bu nedenle, kozmetik ürünlere tirozinaz inhibitörlerinin dahil edilmesi, beyazlatma ve/veya aydınlatma etkileri nedeniyle çekici olabilir.

cistanche tirozinazı inhibe edebilir

2.5.4. Hiyalüronidaz İnhibisyon Aktivitesi

HepsiDeniz yosunuekstraktlar önemli ölçüde yüksek anti-hiyalüronidaz aktivitesi sergiledi (Tablo 4), tannik asit çözeltileri (iyi bilinen bir hiyalüronidaz inhibitörü) ile karşılaştırılabilir sonuçlar gösterdi. Spesifik olarak, A. esculenta özleri, test edilen tüm yöntemler için yüzde 100 inhibisyon gösterdi. Ayrıca, U. lactuca özleri, PEF (yüzde 96.8) ve PEF artı HW kombinasyonunun (yüzde 97.3) ürettiği özlerin inhibisyonunun, geleneksel sıcak su yöntemi 93.4 tarafından üretilen inhibisyondan daha yüksek olduğu, inhibisyonun yüzde 90'ından daha yüksek aktiviteler sergiledi. yüzde ) (p < 0.05).="" tüm="" p.="" palmaria="" özleri="" benzer="" aktiviteler="" sergilemiştir="" (p="">< 0.05),="" pef="" tarafından="" üretilen="" özlerin="" inhibisyonu="" (yüzde="" 91.9)="" ve="" pef="" artı="" hw="" (yüzde="" 89.5)="" ve="" geleneksel="" sıcak="" su="" yönteminin="" (yüzde="" 91.8)="" kombinasyonu="">

Diğer yazarlar ayrıca farklı ilaçların anti-hiyalüronidaz aktivitesini de tanımladılar.Deniz yosunuözleri, özellikle kahverengi alglerden elde edilen florotaninler açısından zengin özler için [73,74]. Ancak, bildiğimiz kadarıyla, bu, PEF tarafından üretilen P. palmata ve U. lactuca ekstrelerinin hiyalüronidaz inhibitör aktivitelerinin ilk kez rapor edildiğidir.

Hyaluronik asit, doku onarımında görev aldığı dermisin önemli bir bileşenidir, yaşlanma ile parçalanarak kırışıklıklara ve cilt sıkılığının kaybolmasına neden olur. Bu anlamda, hiyalüronidaz inhibitörleri, yaşlanan yüz derisinin görünümünü iyileştirmek için dermal hücre dışı matrisin hyaluronik asit seviyesini arttırır [13]. Bu nedenle, bu çalışmanın sonuçları, kozmetik ürünlerde potansiyel kullanımı olan alg kaynaklarından doğal hiyalüronidaz inhibitörlerinin sömürülmesi için yeni yollar açabilir.

Özetle, toplanan veriler, test edilen enzimlere karşı A. esculenta ekstrelerinin P. palmaria ve U. lactuca'dan genel olarak daha iyi inhibitör aktiviteler sergilediği sonucuna varmamızı sağladı. Böylece mükemmel anti-enzimatik aktivitelere sahip en umut verici deniz yosunu türü olduğu için laboratuvarımızda daha sonraki çalışmalar için seçilmiştir. A. esculenta'dan elde edilen ham özler, in vitro deneyler için iyi adaylar gibi görünse de, bu biyolojik etkilerden sorumlu metabolitlerin kimliğini aydınlatmak için daha ileri çalışmaların yapılması gerekmektedir.

cistanche özü: anti-oksidasyon

2.6. Kimyasal Bileşikler ve Biyoaktif Özellikler Arasındaki Korelasyonlar

Temel bileşen analizinden (PCA) elde edilen sonuçlar, grupların ana ayrımının, verilerdeki varyansın sırasıyla yüzde 71,9'unu ve yüzde 14,5'ini oluşturan PC1 ve PC2 tarafından tanımlandığını göstermiştir (Şekil 2). A. esculenta ekstraktları, diğer türlere göre daha yüksek flavonoidler ve fenolik bileşikler, enzimler (kollajenaz, tirozinaz ve elastaz) üzerindeki inhibitör etkiler ve DPPH ve FRAP değerleri ile karakterize edildi, P. palmata ve U. lactuca. Öte yandan, A. esculenta, özellikle P. palmata'ya (PC1'in karşı tarafında yer alan) kıyasla daha düşük karbonhidrat içeriğine sahipti. PC2 boyunca verilerdeki varyasyon esas olarak ABTS ve hiyalüronidaz inhibisyonu ile ilgiliydi. Çizimdeki konumdan da anlaşılacağı gibi, P. palmata ABTS ile daha güçlü bir korelasyona sahipti, oysa U. lactuca bu iki türe kıyasla hiyalüronidaz inhibisyon etkileri ile daha fazla ilişkiliydi.

TPC, TFC, DPPH, FRAP ile kolajenaz, elastaz ve diğer hücreler üzerindeki inhibitör etkiler arasında yüksek ve anlamlı bir pozitif korelasyon.tirozinazPearsonkorelasyon analizi ile gösterilmiştir (Tablo 5).

Bu, fenolik bileşiklerin (flavonoidler dahil) çeşitli fenolik bileşiklerin antioksidan aktivitesine ana katkıda bulunduğunu bildiren önceki çalışmalarla uyum içindeydi.yosunlar[75–77]. Kahverengi makroalglerden elde edilen ekstraktların yüksek antioksidan aktivitesi, belirli bir polifenol, florotanin grubu ve bunların benzersiz moleküler yapısı ile ilişkilendirilmiştir. Kahverengi alglerden elde edilen phlorotannis'in elektron kapanı görevi gören sekiz taneye kadar birbirine bağlı fenol halkasına sahip olduğu rapor edilmiştir [78,79]. ABT'lerin TPC ile korele olması bekleniyordu, diğerantioksidanparametreler. Olası nedenler, yöntemlerin farklı reaksiyon koşullarına dayanması ve reaktivitenin hem zamana hem de bileşenlerin aralığına göre farklılık göstermesi olabilir. Örneğin, ABTS reaktifi daha geniş bir aralıkla reaksiyona girer.antioksidanDPPH radikalinden [80]. Öte yandan, ABTS için belirtilen sınırlamalardan biri, uzun bir reaksiyondur ve genel reaksiyon süresi, bir son noktaya ulaşmaya izin vermeyebilir.

Sonuçlar, TPC ve TFC'nin kolajenaz, elastaz ve tirozinazın inhibitör aktivitesiyle ({{0}}.93–0.99) yüksek pozitif korelasyonu olduğunu gösterirken, inhibisyonla olan ilişkisi hiyalüronidaz kadar güçlü değildi (sırasıyla r=0.42 ve 0.54). Bu, diğer bileşenlerin ekstraktların inhibitör etkisine katkıda bulunmuş olabileceğini gösterir. Diğer çalışmalar, polisakkaritlerin, örneğin kahverengi alglerdeki aljinik asit gibi hiyalüronidaz inhibitör aktiviteye sahip olduğunu bildirmiştir [81,82]. Her bir kimyasal bileşenin katkısını değerlendirmek için izole edilmiş bileşiklerin enzim üzerindeki etkileri için makroalg türlerinin kimyasal bileşimi üzerine daha fazla çalışmaya ihtiyaç vardır, çünkü bu çalışmada odak noktası ham özütlerdi.

Bulgular, ekstraktların kimyasal bileşiminin ve biyoaktivite seviyelerinin üç soy (kırmızı, yeşil ve kahverengi alg) arasında ve aynı filuma ait farklı türler arasında yaş ve dokudan etkilendiğini belirten önceki çalışmalarla uyumluydu. tip. Ayrıca, kompozisyon ve özellikler, makroalglerin dağılımını ve büyümesini etkileyen birçok çevresel faktöre bağlıdır. Örneğin, ışık (UV radyasyonu), sıcaklık, besin mevcudiyeti, havaya maruz kalma, su hareketi, dalgaya maruz kalma ve tuzluluk. Sıcaklık, pigment oluşumu ve besin konsantrasyonu, tuzluluk ve UV radyasyonu üzerinde en güçlü etkiye sahip faktör olarak TPC konsantrasyonunu etkileyen faktörler olarak tanımlanmıştır [83].

Farklı makroalg türlerinin dağılımı su derinliğine göre değişir. Gelgitler arası veya kıyısal bölgede kıyıdan daha yüksek konumlar, orada büyüyen türler gelgit değişiklikleri nedeniyle abiyotik faktörlerdeki çoklu değişikliklere dayanmak zorunda olduğundan daha streslidir. Örneğin, havanın kurutma etkisi, yüksek güneş ışınları (gelgitte), tuzluluk ve sıcaklıktaki değişiklikler ve donma dahil düşük hava sıcaklıkları koşulları altında. Düşük su işaretinin altında, artan derinlik, ışık yoğunluğunda çok hızlı bir azalmaya ve ışımaya daha az maruz kalmaya neden olur.

Gelgit aralığında büyüyen algler, UV Radyasyonuna karşı daha düşük duyarlılığa sahiptir ve güneş stresinden daha hızlı iyileşir. Oysa sublittoral bölgede büyüyen algler UV radyasyonuna daha duyarlıdır ve güneş stresinden daha düşük iyileşme gösterir [84]. Aynı zamanda su sütunu koruma sağlar. Bu çalışmada, diğer türlere kıyasla P. palmata için güneş ışığına maruz kalma muhtemelen daha güçlüydü. Diğer çalışmalar, MAA'ların oluşumunun doğrudan güneş ışığı ile ilişkili olduğunu [85], organizmaları UV-A ve UV-B radyasyonuna karşı koruduğunu göstermiştir. Ayrıca, artan toplama derinliği ile spesifik MAA miktarının azaldığı gösterilmiştir. A. esculenta gibi vareklerin üst sublittoral bölgede büyüdüğü bilinmektedir, ancak aynı zamanda alt filigranın hemen üzerindeki en düşük intertidal içine de uzanmaktadır. Yani su sütunu P. palmata'ya göre daha güçlü koruma sağlamıştır. Ayrıca morfolojik özellikleri farklıdır, A. esculenta'nın kanatları diğer iki türe göre daha kalındır. Esas olarak intertidaland sublittoralinde büyüyen U. lactuca, çok düşük ışınımlar altında fotosentez yapabilir ve büyüyebilir. UVB ışığına maruz kalmanın, U'nun fotosentetik parametrelerinin geri kazanılmasını hızlandırdığı belirtilmiştir. UVA ışığının olumsuz etkilerinden lactuca. Hem A. esculenta (5-7 yıl) hem de her yıl yenilenen P. palmata'dan daha küçük, yapı olarak daha basit ve daha kısa (3 ay) ömürlüdür.

Özetle, özütlerin özelliklerindeki temel farklılıkların, alg türlerinin yaşam süresi, morfolojik özellikleri ve büyüme koşullarındaki farklılıklar olduğu varsayımı yapılabilir.

3. Malzemeler ve Yöntemler

3.1. Malzemeler

İzlandacaDeniz yosunuU. lactuca (yeşil algler), A. esculenta (kahverengi algler) ve P. palmata (kırmızı algler) İzlandalı Mavi Midye veDeniz yosunu, Breidafjordur'da (Batı-İzlanda) deniz yosunları hasat etti. Hasattan sonra deniz yosunları kurutuldu (yaklaşık yüzde 90 kuru malzeme), öğütüldü ve vakumla paketlendi. Örnekler kullanılana kadar oda sıcaklığında kuru ve karanlık bir yerde saklandı.

tirozinazmantardan, L-3,4-dihidroksifenilalanin (L-DOPA), domuz pankreasından elastaz, askorbik asit, N-Süksinil-Ala-Ala-Ala-p-nitroanilid (AAAPVN), sığır testislerinden hiyalüronidaz , kuersetin, -tokoferol, tannik asit, 2,2-difenil-1-pikrilhidrazil (DPPH), 2,4,6-Tripiridil-s-Triazin (TPTZ), Trolox, Folin-Ciocalteu reaktif, gallik asit ve bir kolajenaz aktivitesi kolorimetrik deney kiti (MAK293) Sigma-Aldrich Co.'dan (St. Louis, MO, ABD) satın alındı. Hyaluronik asit sodyum tuzu MakeingCosmetics'ten (Redmond, WA, ABD) satın alındı. Kullanılan diğer tüm kimyasallar ve reaktifler analitik kalitedeydi ve VWR International, LLC'den elde edildi. Su bazlı çözeltilerin ekstraksiyonu ve hazırlanması için deiyonize su (Elix® Essential, Merck, Darmstadt, Almanya) kullanıldı.

3.2. Deneysel tasarım

İzlanda deniz yosunu türlerinin (U. lactuca,A. esculenta, P. palmata) ve ekstraksiyon işleminin (sıcak su ekstraksiyonu (HW, 95 ◦C)) ve PEF destekli ekstraksiyonun (PEF) ve her ikisinin kombinasyonunun etkilerini değerlendirmek için faktöriyel tasarım kullanıldı. teknikleri (PEF artı HW), ekstrakt kompozisyonu ve biyoaktivite üzerine (Tablo 6). Ekstraksiyon, her grup için üç kopya halinde gerçekleştirildi ve her bir ekstrakt kopyası, üç kopya halinde analiz edildi.

3.3. İzlanda Deniz Yosunlarından Biyoaktiflerin Ekstraksiyonu

Makroalgal biyokütlenin farklı seviyelerde kullanılması, bilim insanlarını yeşil özütleme yaklaşımlarına dayalı daha çevre dostu, verimli ve uygun maliyetli özütleme tekniklerini keşfetmeye motive etmiştir. Bu çalışmada, karşılaştırma için geleneksel sıcak su ekstraksiyonu kullanılırken, PEF destekli ekstraksiyon, fonksiyonel ekstraktlar üretmek için yeni ve yeşil bir yöntem olarak değerlendirildi. Ayrıca, her iki tekniğin kombinasyonunun, makroalglerin PEF işleminin ardından geleneksel sıcak su ekstraksiyonunun biyoaktif geri kazanım üzerindeki etkisi araştırıldı. Fiziksel işlemden sonra hücre zarlarında üretilen beklenen elektroporasyon nedeniyle, sıcak su ile aşağıdaki ekstraksiyon hücre içi materyalin [86] salınmasını daha da kolaylaştırabilir ve ekstraksiyon verimini artırabilir.Malzemeler için bir işlemden sonra bir süre gereklidir. hücrelerin dışına yayılmak için [87,88] ve bu deneyde süspansiyonlar, sıvının (özütün) hamurdan ayrılmasına kadar gece boyunca bekledi.

Ekstraksiyon ortamı ile ilgili olarak, üretmek için damıtılmış su kullanıldı.Deniz yosunutoksik ve organik çözücülerin kullanımına ilişkin sınırlamaların üstesinden gelmek için özler. Suyun çeşitli biyoaktif bileşiklerin ekstraksiyonu için iyi bir çözücü olduğu kanıtlanmıştır.Deniz yosunus [46,89–91] ve çevre dostudur. Ayrıca su, elektrik için iyi bir iletken olduğu için PEF destekli ekstraksiyon için yaygın olarak kullanılır.

3.3.1. Ekstraksiyon Prosedürleri

Her gruptaki her tekrar için,Deniz yosunus (15 g) deiyonize su (300 mL) içinde oda sıcaklığında (22°C) gece boyunca ıslatıldı. Daha sonra süspansiyon, PEF (PEF), ısıtılmış (HW) veya hem PEF ile işlenmiş hem de ısıtılmış (PEF artı HW) ile işlenmiştir. Süspansiyonlar bir gece buzdolabında bekletildi, ardından kaba (20 µm) filtre kağıdı ile süzüldü. Daha sonra süzüntüler (özütler) analizlerine kadar 4 ◦C'de saklandı.

Darbeli elektrik alan destekli ekstraksiyon, şirket içinde yerleşik bir darbe üreteci kullanılarak gerçekleştirildi. Bir FuGHCK-200-2000 kondansatörüne (FuG Elektronik GmbH, Rosenheim,Almanya) ve kıvılcım aralığına (18,5 kV OG75, Perkin-Elmer Optoelectronics, GMBH, Wiese baden, Almanya) sahipti. PEF ekipmanı, 0.96 µs genişliğe ve 18 kV genliğe sahip üstel bozulma darbeleri üretti. Süspansiyonları 1.2 Hz'de 8 kV/cm elektrik alanla 10 dakika tedavi etmek için (U × Y × G) 20 × 8 × 2.5 cm boyutlarında, en kısa mesafe plaka elektrotları arasında olacak şekilde bir pleksiglas tedavi odası kullanılmıştır.

Süspansiyonun bir beher içinde termostatik su banyosunda ısıtılmasıyla HW ekstraktları hazırlandı ve 95 ◦C'de 45 dakika tutuldu. Kombine darbeli elektrik alanı ve ısıtma işlemi için, süspansiyonlar PEF işlemine tabi tutuldu ve daha sonra bir behere yerleştirildi, bir su banyosunda ısıtıldı ve 45 dakika boyunca 95 ◦C'de tutuldu.

3.3.2. İletkenlik, pH ve Sıcaklık Ölçümleri

Deniz yosunu süspansiyonlarının elektriksel iletkenliği ve pH'ı, bir iletkenlik sensörü ile donatılmış bir pH metre (OrionStar™ A215 pH/Conductivity Benchtop Meter, Thermo Scientific, Waltham, MA, ABD) kullanılarak, ekstraksiyon işlemlerinden sonra ve ıslatma işleminden sonra ölçülmüştür. pH/ARC triyot kombinasyon elektrodu. Ayrıca, uygulamalara bağlı sıcaklık değişimleri kaydedildi.

3.4. Yosun Ekstraktlarının Spektral Profilleri

Farklı deniz yosunu ekstraktlarının UV-VIS absorpsiyon spektrumları, 1 cm kuvars küvetli çift ışınlı Thermo Scientific Evolution 350 UV Vis Spektrofotometresi (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, ABD) kullanılarak 200 ila 450 nm aralığında ölçüldü. Her deniz yosunu özü için üç tarama yapıldı.

3.5. Toplam Polifenolik İçeriğin Belirlenmesi

içindeki toplam fenolik içerik (TPC)Deniz yosunuözütler, aMultiskan Sky Microplate Spektrofotometresi (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, ABD) kullanılarak Zhang [92] tarafından açıklanan biraz değiştirilmiş bir yöntem izlenerek Folin-Ciocalteu reaktifi kullanılarak belirlendi. 20 µL'lik bir hacimDeniz yosunuekstrakt veya seri standart solüsyon 100 µL Folin–Ciocalteu reaktifi (damıtılmış suda yüzde 10) ile karıştırıldı. 5 dakika sonra 80 uL yüzde 7.5 (h/a) sodyum karbonat solüsyonu eklendi. Reaksiyon karışımı, oda sıcaklığında ve karanlıkta 30 dakika süreyle inkübe edildi. Absorbans, 760 nm dalga boyunda ölçüldü. Kör olarak distile su kullanıldı. Toplam fenolik içeriği belirlemek için standart bir gallik asit eğrisi kullanıldı ve bir gram kuru materyal (ug GAE/g dw) başına ug gallik asit eşdeğerleri (GAE) olarak ifade edildi.

3.6. Toplam Flavonoid İçeriğinin Belirlenmesi

içindeki toplam flavonoid içeriği (TFC)Deniz yosunuözütler, Kamtekar [93] tarafından açıklanan yöntemle belirlendi ve 96-kuyulu mikroplakalara uyarlandı. Kısaca, 25 µLof deniz yosunu özütü veya seri standart çözelti hacmi 100 µL sodyum nitrit (yüzde 0,375 a/h) ile karıştırıldı. 5 dakika sonra, karışıma 25 uL alüminyum klorür (yüzde 3 a/h) ilave edildi ve 6 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edildi. Daha sonra karışıma 100 uL sodyum hidroksit (yüzde 2 a/h) ilave edildi ve karıştırıldı. Hemen 510 nm dalga boyunda absorbans ölçüldü. Kör olarak distile su ve etanol kullanıldı. Toplam fenolik içeriği belirlemek için standart bir kersetin eğrisi (etanol içinde çözülmüş) kullanıldı ve bir gram kuru malzeme (ug QE/g dw) başına ug kersetin eşdeğeri (QE) olarak ifade edildi.

3.7. Karbonhidrat İçeriğinin Belirlenmesi

Serbest şeker içeriği, [94] tarafından açıklanan yönteme göre, hafif değişikliklerle ölçülmüştür. 50 uL fenol çözeltisi (yüzde 4) ve 250 uL sülfürik asit (yüzde 96), 100 uL numune veya standart çözeltiye ilave edildi. Oda sıcaklığında 10 dakikalık inkübasyondan sonra karışımın absorbansı 490 nm'de okunmuştur. Toplam karbonhidrat içeriğini belirlemek için standart bir glikoz eğrisi kullanıldı ve gram kuru malzeme (mg GluE/g dw) başına mg glikoz eşdeğeri (GluE) olarak ifade edildi.

3.8. Yosun Ekstraktlarının Antioksidan Özellikleri

3.8.1. 2,2 Difenil-1-pikrilhidrazil (DPPH) Serbest Radikal Süpürme Testi

buantioksidanaktivitesi (DPPH)Deniz yosunuözütler, bazı modifikasyonlar ile daha önce açıklanan metodoloji [94] izlenerek belirlendi. Kısaca, bir 96-kuyu plakasında 100 uL numuneye (metanol içinde 1:1) 200 uLof 10.825 × 10−5 M DPPH solüsyonu ilave edildi. Aynı hacimde DPPH 50 µL standart artı 50 µL metanol ile karıştırıldı. Daha sonra numuneler ve standart karanlık bir yerde oda sıcaklığında 30 dakika inkübe edildi. Absorbans 517 nm dalga boyunda ölçüldü. Kör olarak damıtılmış su kullanıldı. DPPH radikalini temizleme yeteneği aşağıdaki denklem kullanılarak hesaplandı:

Süpürme etkisi ( yüzde )=(1 − (Bir numune − Bir boş numune)/(A kontrol − Ametanol körü)) × 100 (1)

Akontrolün kontrolün absorbansı olduğu yerde (numunesiz DPPH solüsyonu), A numunesi test numunesinin absorbansıdır (DPPH solüsyonu artı test numunesi), A numune körü sadece numunenin absorbansıdır (DPPH solüsyonu olmayan numune) veAmetanol boş, yalnızca metanolün absorbansıdır. Reklamantioksidans (askorbik asit, gallik asit ve -tokoferol) pozitif kontrol olarak kullanıldı.

cistanche antioksidandır

3.8.2. Antioksidan Gücü Azaltan Demir İyon (FRAP) Testi

FRAP aktivitesi, Benzie ve Strain [95] yöntemine göre ölçüldü. Kısaca, asetat tamponu (300 mM, pH 3.6), 2,4,6-tripiridil-s-triazin (TPTZ) 10 mM 40 mM HCl ve FeCl3·6H2O (20 mM) oranında karıştırıldı. 10:1:1 çalışan FRAPreagent'ı elde etmek için. Reaksiyon karışımı 37 ◦C'de 10 dakika inkübe edildi. Her ekstraktan 50 uL'lik bir numune, oda sıcaklığında 8 dakika boyunca 150 uL çalışan FRAP çözeltisi ile karıştırıldı. Renkli ürünün, Ferrous-TPTZ'nin absorbansı, 593 nm dalga boyunda ölçüldü. FRAP değerleriDeniz yosunuözütler, kuru malzemenin gramı başına uM trolox eşdeğerleri (TE) olarak ifade edildi.

3.8.3. 2,2 Azino-bis(3-etilbenzotiazolin-6-sülfonik Asit) (ABTS) Testi

Analiz, bazı modifikasyonlar ile ABTS renk giderme protokolü [76] kullanılarak yapıldı. ABTS'nin (66 mg) 10 mL potasyum persülfat çözeltisi (2.45 mM) ile reaksiyona sokulmasıyla bir ABTS radikal katyonu (ABTS. plus) üretildi. Karışım kullanımdan önce 12-16 saat karanlık oda sıcaklığında bırakıldı. ABTS. artı çözelti, 734 nm'de 0.700'lük bir absorbansa kadar suyla seyreltildi. Reaksiyon karışımı (200 ul) amikroplakaya aktarıldı, 50 uL numune ilave edildi ve ardından 150 uL reaktif solüsyonu eklendi. Plaka orta hızda 10 saniye çalkalandı ve oda sıcaklığında 5 dakikalık inkübasyondan sonra 734 nm'de absorbans ölçüldü. A734nm Trolox standartlarının inhibisyonunu, konsantrasyonlarının bir fonksiyonu olarak çizerek standart bir eğri hazırlandı. Trolokseşdeğeriantioksidannumunelerin kapasite (TEAC) değeri, her numune için A734nm değerlerinin ikame edildiği standart eğrinin lineer regresyonundan elde edilen denklem kullanılarak hesaplanmıştır:

TEAC (µM)=(örnek engelleme A734nm - kesişme)/eğim (2)

buantioksidanaktivite, TEAC konsantrasyonu, umol/g kuru ağırlık algleri cinsinden ifade edildi.

3.9. Yosun Ekstraktlarının Anti-Enzimatik Aktiviteleri

3.9.1. Kollajenaz İnhibisyon Testi

Kollajenaz inhibisyonunu belirlemek için Sigma Aldrich'ten satın alınan bir kolajenaz aktivitesi kolorimetrik deney kiti (MAK293) kullanıldı.yosunlarözler. Kit, kolajenin yapısını taklit eden sentetik bir peptit (FALGPA) kullanarak kolajenaz aktivitesini ölçtü. İşlem kit talimatlarına göre yapıldı.

3.9.2. Elastaz İnhibisyon Testi

elastaz inhibisyonuDeniz yosunuözleri, daha önce tarif edildiği gibi değiştirilmiş yöntemle TRIS tampon çözeltisinde araştırıldı [96]. Kısaca, 100 µL 0.1 M TRIS tampon solüsyonu (pH 8.0), 25 µL elastaz (TRIS tamponunda 1 U/mL) ve 25 µL numune ekstraktı karıştırıldı ve 15 dakika süreyle inkübe edildi. Reaksiyonu başlatmak için substratı eklemeden önce 30 C. İnkübasyon süresinden sonra 50 µL 2 mM AAAPVN solüsyonu eklendi. Daha sonra, 420 nm'de absorbans, 30 °C'lik sabit bir sıcaklık altında bir mikroplaka okuyucu kullanılarak 20 dakika boyunca izlendi. Son olarak, elastaz inhibisyonu aşağıdaki denklem kullanılarak yüzde olarak hesaplandı:

yüzde İnhibisyon=[(∆Abs/min kontrolü − ∆Abs/min numunesi)/∆Abs/minkontrol] × 100 (3)

burada Abscontrol, inhibitör (numune) yerine tampon kullanan testin absorbansıdır ve Abs numunesi, numune ekstraktlarının absorbansıdır. Quercetin pozitif kontrol olarak kullanıldı. Kör olarak TRIS tamponu kullanıldı.

etkilericistanche özü:yaşlanma karşıtı

3.9.3. Tirozinaz İnhibisyon Testi

tirozinazinhibitör tahlil, substrat olarak L-DOPA kullanılarak daha önce [66] tarafından açıklanan yönteme göre yapıldı. 20 µL numune, 10 µL mantartirozinazsolüsyon (fosfat tamponu içinde 50 U/mL) ve 80 uL fosfat tamponu (pH=6.8) bir mikroplaka içinde karıştırıldı ve 37 ◦C'de 5 dakika önceden inkübe edildi. Daha sonra 90 uL L-DOPA(2 mg/mL) eklendi. Dopakrom oluşumu, 37 ◦C sabit sıcaklıkta bir mikroplaka okuyucuda 475 nm'de 20 dakika boyunca hemen izlendi. yüzde inhibisyonutirozinazenzim aşağıdaki eşitlik kullanılarak hesaplanmıştır:

yüzde İnhibisyon=[(∆Abs/minkontrol − ∆Abs/min numune)/∆Abs/minkontrol] × 100 (4)

burada Abs kontrolü, inhibitör (numune) yerine tampon kullanan testin absorbansıdır ve Abs numunesi, numune ekstraktlarının absorbansıdır. Pozitif kontrol olarak Quercetin kullanıldı. Kör olarak fosfat tamponu kullanıldı.

3.9.4. Hiyalüronidaz İnhibisyon Testi

Hiyalüronidaz inhibe edici aktivite, daha önce [66] tarafından tarif edildiği gibi birkaç modifikasyonla ölçülmüştür. 100 µl tip-1-S bovin testis hiyalüronidaz (2100 U/mL) hacmi 0 içinde çözüldü. 1 M asetat tamponu (pH 3.5) 100 µL ekstrakt ile karıştırıldı ve 37 ◦C'de 20 dakika inkübe edildi. Reaksiyon karışımına 200 µL 6 mM kalsiyum klorür eklendi ve ardından karışım 37 ◦C'de 20 dakika inkübe edildi. Bu Ca2 artı aktifleştirilmiş hiyalüronidaz, 0.1 M asetat tamponu (pH 3.5) içinde çözülmüş 250 uL sodyum hiyalüronat (1.2 mg/mL) ile muamele edildi ve daha sonra 37°C'de bir su banyosunda 40 dakika süreyle inkübe edildi. Reaksiyon karışımına 50 µL 0.9 M sodyum hidroksit ve 100 µL 0.2 M sodyum borat ilave edildi ve sonra 5 dakika kaynar su banyosunda inkübe edildi. Oda sıcaklığına soğutulduktan sonra reaksiyon karışımına 250 µL ρ-dimetilaminobenzaldehit (DAMB) çözeltisi ilave edildi. DAMB çözeltisi, 0.25 gof DAMB'nin 21.88 mL yüzde 100 asetik asit ve 3.12 mL 10N hidroklorik asit içinde çözülmesiyle hazırlandı. Kontrol grubu, ekstrakt yerine 100 uL yüzde 5 su ile muamele edildi. Absorbans, 45 dakika sonra 585 nm dalga boyunda ölçüldü. Yüzde enzim inhibisyonu aşağıdaki denklem kullanılarak hesaplandı:

yüzde engelleme=[(Mutlak kontrol − Mutlak)/Mutlak kontrol] × 100 (5)

burada Abs kontrolü, inhibitör (numune) yerine tampon kullanan testin absorbansıdır ve Abs numunesi, numune ekstraktlarının absorbansıdır. Tannik asit referans standardı olarak kullanılır.

3.10. İstatistiksel analiz

Her ekstrenin üçlü analizinin ortalaması hesaplandı ve her grup için ortalama değerleri ve standart sapmaları bulmak için kullanıldı (n {{0}}). Deneysel faktörlerin (türler ve ekstraksiyon yöntemleri) ölçülen değişkenler üzerindeki ana etkilerini ve iki yönlü etkileşimlerini değerlendirmek için sabit faktörler için genel doğrusal modeller (GLM) uygulandı. Ayrıca, gruplar arasındaki önemli (p < 0.05)="" farklılıkları="" belirlemek="" için="" anova="" ve="" tukey-kramer="" testi="" kullanıldı.="" değişkenler="" arasındaki="" doğrusal="" ilişkiyi="" değerlendirmek="" için="" pearson="" korelasyonu="" kullanıldı.="" ölçülen="" değişkenler="" ve="" deneysel="" faktörler="" arasındaki="" ilişkideki="" yapıyı="" tespit="" etmek="" için="" temel="" bileşen="" analizi="" (pca)="" kullanıldı.="" pca,="" hacimli="" verileri,="" orijinal="" değişkenler="" arasındaki="" korelasyon="" modellerine="" dayalı="" olarak,="" ilgili="" değişkenlerin="" (yani,="" faktörlerin)="" küçük="" bir="" doğrusal="" kombinasyonları="" kümesine="" indirger.="" ortaya="" çıkan="" doğrusal="" nitelik="" kombinasyonları,="" incelenen="" değişkenlere="" dayalı="" olarak="" belirli="" ürün="" özelliklerinin="" profilini="" çıkarmak="" için="" kullanılabilir.="" tüm="" istatistiksel="" analizler="" ncss="" 2020="" statisticalsoftware="" (2020)="" (ncss,="" llc.,="" kaysville,="" ut,="" abd)="" kullanılarak="">

yaşlanma karşıtı cistanche özü

4. Sonuçlar

Bu ilk tarama deneyinin sonuçları, üç İzlandalının potansiyelini gösterdi.Deniz yosunuçeşitli yollarla etkili faydalı etkiler sağlayarak türler. Sulu darbeli elektrik alanları kullanılarak geliştirilen yeşil yaklaşım, termal olmayan doğası ve daha kısa ekstraksiyon süresi (10 dakikaya karşı 45 dakika) gibi çeşitli avantajlar göstererek, geleneksel sıcak su ekstraksiyonuna benzer sonuçlar sergiledi. Üç alg türü arasında, kahverengi makroalg A. esculenta en yüksek TPC içeriğini gösterdi ve TFC de en yüksek içeriği sergiledi.antioksidanAyrıca, A. esculenta su ekstraktları, en umut verici olan kollajenaz, elastaz, tirozinaz ve hiyalüronidaz'a karşı P. palmaria ve U. lactuca'dan daha iyi inhibe edici aktiviteler sergilemiştir.Deniz yosunucilt beyazlatmada kullanımları için mükemmel anti-enzimatik aktivitelere sahip türler,yaşlanma karşıtıve cilt sağlığı. İlginç bir şekilde, A. PEF yöntemiyle üretilen esculenta özütleri, geleneksel sıcak su ekstraksiyonu ile gösterilen inhibisyon aktivitesinden daha yüksek ve ticari kit tarafından sağlanan inhibitörden bile daha yüksek, yüzde 91'lik bir kolajenaz inhibisyonu gösterdi. Sonuç olarak, ön çalışmamız İzlanda'nınDeniz yosunuSu bazlı darbeli elektrik alanları destekli ekstraksiyon ile üretilen, özellikle kahverengi makroalg A. esculenta'dan elde edilen ekstraktlar, yakın gelecekte kozmetik ve kozmesötik formülasyonlar için aktif bileşikler olarak kullanılabilecek potansiyel fonksiyonel bileşenlerdir.

Referanslar

1. Ariede, MB; Candido, TM; Jacome, ALM; Velasco, MVR; de Carvalho, JCM; Baby, AR Alglerin kozmetik özellikleri—Areview. Alg Araş. 2017, 25, 483–487. [Çapraz Referans]

2. Makkar, HPS; Trans, G.; Heuzé, V.; Giger-Reverdin, S.; Lessire, M.; Lebas, F.; Ankers, P. Hayvancılık diyetleri için deniz yosunları: Bir inceleme.Anim. Yem Bilimi. Teknoloji. 2016, 212, 1-17. [Çapraz Referans]

3. O'Connor, J.; Meaney, S.; Williams, GA; Hayes, M. Üç Farklı Fiziksel Ön-Tedavi Stratejisi Kullanarak Dört Farklı Yosundan Protein Ekstraksiyonu. Moleküller 2020, 25, 2005. [CrossRef]

4. Maximo, P.; Ferreira, LM; Branco, P.; Lima, P.; Lourenço, A. Güney Avrupa'nın İstilacı Makroalglerinin İkincil Metabolitleri ve Biyolojik Aktivitesi. Mart Uyuşturucu 2018, 16, 265. [CrossRef]

5. Barkya, İ.; Saari, N.; Manning, İnsan Sağlığı ve Beslenmesine Yönelik Yüksek Değerli Ürünler için SR Mikroalg. Mart Uyuşturucu 2019,17, 304. [CrossRef]

6. Gomez-Zavaglia, A.; Prieto Lage, MA; Jimenez-Lopez, C.; Mejuto, JC; Simal-Gandara, J. Prebiyotik ve Antioksidan Değerinin Fonksiyonel Bileşenlerinin Kaynağı Olarak Yosunların Potansiyeli. Antioksidanlar 2019, 8, 406. [CrossRef] [PubMed]

7. Salihi, B.; Sharifi-Rad, J.; Seca, AML; Pinto, DCGA; Michalak, İ.; Trincone, A.; Mishra, AP; Nigam, M.; Zam, W.; Martins, N. Deniz Yosunlarında Güncel Trendler: Kimyasal Bileşim, Fitofarmakoloji ve Kozmetik Uygulamalarına Bakmak. Moleküller2019, 24, 4182. [CrossRef]

8. Gazali, E.; Yakında, PC; Mutum, DS; Nguyen, B. Sağlık ve kozmetik: Tüketicilerin organik kişisel bakım ürünleri satın alma değerlerini araştırmak. J. Perakende. tüket. Hizmet et. 2017, 39, 154-163. [Çapraz Referans]

9. Amberg, N.; Fogarassy, ​​C. Kozmetik Pazarında Yeşil Tüketici Davranışı. Kaynaklar 2019, 8, 137. [CrossRef]

10. Pereira, L. Biyoaktif Maddelerin Kaynağı ve Cilt Bakımı Tedavisi Olarak Yosunlar—Kozmesötikler, Algoterapi ve Thalassoterapi. Kozmetik 2018, 5, 68. [CrossRef]

11. Martins, A.; Vieira, H.; Gaspar, H.; Santos, S. Farmasötik ve kozmetik endüstrilerinde pazarlanan doğal deniz ürünleri: Başarı için ipuçları. Mart Uyuşturucu 2014, 12, 1066–1101. [CrossRef] [PubMed]

12. Agatonovic-Kustrin, S.; Morton, D. Deniz yosunlarında bulunan biyoaktif maddelerden elde edilen kozmetikler. Oşinografi 2013,1, 106.

13. Wang, H.-MD; Chen, C.-C.; Huynh, P.; Chang, J.-S. Kozmetikte yosun kullanma potansiyelini keşfetmek. Biyorezör. Teknoloji. 2015,184, 355-362. [Çapraz Referans]

14. Cihan, A.; Ahmet, İZ; Fatma, N.; Ansari, VA; Akhtar, kozmetik endüstrisindeki J. Algal biyoaktif bileşikleri: Bir inceleme. Phycologia 2017, 56, 410-422. [Çapraz Referans]

15. Morone, J.; Alfeus, A.; Vasconcelos, V.; Martins, R. Siyanobakterilerin kozmetik ve kozmetiklerdeki potansiyelini ortaya çıkarmak—Yeni biyoaktif yaklaşım. Alg Araş. 2019, 41, 101541. [CrossRef]

16. Cikoš, A.-M.; Jerkovi'c, I.; Molnar, M.; Šubari´c, D.; Joki´c, S. Makroalgal doğal ürün uygulamaları için yeni trendler. Nat. Ürün.Res. 2019, 37, 1–12. [Çapraz Referans]

17. Thring, TS; Hilal, P.; Naughton, DP 21 bitkiden elde edilen ekstraktların anti-kollajenaz, anti-elastaz ve antioksidan aktiviteleri. BMC Tamamlayıcı. Alternatif. Med. 2009, 9, 27. [CrossRef]

18. Jacobsen, C.; Sørensen, AM; Holdt, SL; Akoh, CC; Hermund, DB Kaynağı, Deniz Yosunlarından Yeni Antioksidanların Ekstraksiyonu, Karakterizasyonu ve Uygulamaları. Annu. Rev. Gıda Bilimi. Teknoloji. 2019, 10, 541–568. [Çapraz Referans]

19. Castejón, N.; Señoráns, FJ Basınçlı sıvılar kullanılarak Nannochloropsis gaditana'nın ıslakmikroalgal biyokütlesinden omega-3 asilgliserollerin ve glikolipidlerin eşzamanlı ekstraksiyonu ve fraksiyonlanması. Alg Araş. 2019, 37, 74-82. [Çapraz Referans]

20. Muhammed, MEA; Eissa, AHA Gıda işleme teknolojisi için darbeli elektrik alanları. Yapı. İşlev. Gıda Müh. 2012, 11, 275–306.

21. Geada, P.; Rodrigues, R.; Loureiro, L.; Pereira, R.; Fernandes, B.; Teixeira, JA; Vasconcelos, V.; Vicente, AA Mikroalgal biyoteknolojiye uygulanan Elektroteknolojiler—Uygulamalar, teknikler ve gelecekteki eğilimler. Yenile. Güç vermek. Enerji Rev. 2018, 94, 656–668.[CrossRef]

22. Poojary, AA; Barba, FJ; Aliakbaryan, B.; Donsi, F.; Pataro, G.; Dias, DA; Juliano, P. Mikroalg ve deniz yosunlarından karotenoidleri çıkarmak için yenilikçi alternatif teknolojiler. Mart Uyuşturucu 2016, 14, 214. [CrossRef] [PubMed]

23. Vorobyev, E.; Lebovka, N. 2—Pulsed Electric Energy ile Geliştirilmiş Gıdalardan ve Biyomalzemelerden Ekstraksiyon. Yenilikçi Gıda İşleme Teknolojilerinde; Knoerzer, K., Juliano, P., Smithers, G., Eds.; Woodhead Yayıncılık: Sawston, Birleşik Krallık, 2016; s. 31–56.

24. Käferböck, A.; Smetana, S.; de Vos, R.; Schwarz, C.; Toepfl, S.; Parniakov, O. Darbeli elektrik alanları teknolojisiyle desteklenen Spirulina'dan değerli bileşenlerin sürdürülebilir şekilde çıkarılması. Alg Araş. 2020, 48, 101914. [CrossRef]

25. Parniakov, O.; Barba, FJ; Grimi, N.; Martal, L.; Jubeau, S.; Lebovka, N.; Vorobiev, E. Darbeli elektrik alan destekli mikroalg Nannochloropsis spp.'den besin değeri yüksek bileşiklerin ekstraksiyonu. organik çözücüler ve suyun ikili karışımını kullanarak. Yeni. Gıda Bilimi Acil. Teknoloji. 2015, 27, 79-85. [Çapraz Referans]

26. Scherer, D.; Krust, D.; Frey, W.; Mueller, G.; Nick, P.; Gusbeth, C. ChlorellaVulgaris'ten darbeli elektrik alanı (PEF) destekli protein geri kazanımı, hücre ölümünden sonra enzimatik bir süreç aracılığıyla gerçekleştirilir. Alg Araş. 2019, 41, 101536. [CrossRef]

27. Naseri, A.; Marinho, GS; Holdt, SL; Bartela, JM; Jacobsen, C. Kırmızı deniz yosunu Palmaria palmitatından bir proteinin enzim destekli ekstraksiyonu ve karakterizasyonu. Alg Araş. 2020, 47, 101849. [CrossRef]

geçmek

28. Robin, A.; Kazır, M.; Çuval, M.; İsrail, A.; Frey, W.; Mueller, G.; Livney, YD; Golberg, A. Green Marine Macroalga Ulva sp.'den Yüksek Voltaj Darbeli Elektrik Alanları ve Mekanik Pres ile Ekstrakte Edilen Fonksiyonel Protein Konsantreleri. ACS Sürdürür. Kimya Müh.2018, 6, 13696–13705. [Çapraz Referans]

29. Einarsdottir, R.; Þórarinsdóttir, KA; Aðalbjörnsson, BV; Guðmundsson, M.; Marteinsdóttir, G.; Kristbergsson, K. Darbeli elektrik alan destekli tedavi parametrelerinin Laminaria digitata'nın ham sulu ekstraksiyonu üzerindeki etkisi. J. Uygulama Fikol. 2021, 33,3287–3296. [Çapraz Referans]

30. Posta, Halkla İlişkiler; Cerezo-Çinirro, O.; Akkerman, RJ; Olivieri, G.; Wijffels, Sağ; Brandenburg, ABD; Eppink, MHM Makroalg Ulva Lactuca Biyorafinerisi: Proteinlerin ve karbonhidratların hafif parçalanma ile ekstraksiyonu. J. Uygulama Fikol. 2018, 30, 1281–1293.[CrossRef]

31. Zbinden, MDA; Sturm, BSM; Kuzey, RD; Carey, WJ; Moore, D.; Shinogle, H.; Stagg-Williams, SM Mikroalglerden daha yeşil solvent lipid ekstraksiyonu için yoğunlaştırma ön işlemi olarak Darbeli elektrik alanı (PEF). Biyoteknoloji. Biyomüh. 2013, 110, 1605–1615.[CrossRef]

32. Silve, A.; Papachristou, İ.; Wüstner, R.; Sträsner, R.; Schirmer, M.; Leber, K.; Guo, B.; Interrante, L.; Posten, C.; Frey, W. Darbeli elektrik alanı işlemi ve etanol-heksan karışımları kullanılarak ıslak mikroalga Auxenochlorella protothecoides'ten lipidlerin ekstraksiyonu. AlgalRes. 2018, 29, 212-222. [Çapraz Referans]

33. Chittapun, S.; Jonjaroen, V.; Khumrangsee, K.; Charoenrat, T.C-phycocyanin'in iki tatlı su siyanobakterisinden donma-çözülme yoluyla ekstraksiyonu ve ekstraksiyon verimliliğini ve saflığını geliştirmek için darbeli elektrik alanı teknikleri. Alg Araş. 2020, 46, 101789. [CrossRef]

34. Aryee, ANA; Agyei, D.; Akanbi, TO Gıda işlemede deniz yosunu pigmentlerinin geri kazanılması ve kullanılması. Kör. Görüş. Gıda Bilimi.2018, 19, 113–119. [Çapraz Referans]

35. Nowacka, M.; Tappi, S.; Wiktor, A.; Rybak, K.; Miszczykowska, A.; Czyzewski, J.; Drozdzal, K.; Witrowa-Rajchert, D.; Tylewicz, U. Pancardan Biyoaktif Bileşiklerin Ekstraksiyonunda Darbeli Elektrik Alanının Etkisi. Gıdalar 2019, 8, 244. [CrossRef]

36. Martínez, JM; Delso, C.; Alvarez, I.; Raso, J. Mikroorganizmalardan değerli bileşiklerin darbeli elektrik alan destekli ekstraksiyonu. Anlayın. Rev. Gıda Bilimi. Gıda Saf. 2020, 19, 530–552. [Çapraz Referans]

37. Pataro, G.; Goettel, M.; Straessner, R.; Gusbeth, C.; Ferrari, G.; Frey, W. Mikroalg C. vulgaris'ten değerli bileşiklerin ekstraksiyonunda PEF tedavisinin etkisi. Kimya Müh. Trans. 2017, 57, 67-72.

38. Brunton, NP; Luengo, E. Bitkilerden İkincil Metabolitlerin Ekstraksiyonu için Darbeli Elektrik Alanları. Bitkilerden Sekonder Metabolitlerin Ekstraksiyonu için Darbeli Elektrik Alanlarda; Miklavcic, D., Ed.; Springer International Publishing: Cham, İsviçre, 2017;s. 1-15.

39. Schiener, P.; Siyah, KD; Stanley, MS; Yeşil, DH Kelp türlerinin kimyasal bileşimindeki mevsimsel değişiklik Laminaria digitata, Laminaria hyperborea, Saccharina latissima ve Alaria esculenta. J. Uygulama Fikol. 2015, 27, 363-373. [Çapraz Referans]

40. Salgado, LT; Tomazetto, R.; Cinelli, LP; Farina, M.; Filho, GMA Kahverengi alg aljinatlarının fenolik bileşikler üzerindeki etkisi in vitro ultraviyole radyasyon absorpsiyon yeteneği. Braz. J. Oşinogr. 2007, 55, 145–154. [Çapraz Referans]

41. Orfanudaki, M.; Hartmann, A.; Karsten, U.; Ganzera, M. Yirmi üç kırmızı alg türünde mikosporin benzeri amino asitlerin kimyasal profili. J. Phycol. 2019, 55, 393-403. [Çapraz Referans]

42. Pangestuti, R.; Siahaan, EA; Kim, S.-K. Deniz Alglerinden Türetilen Fotokoruyucu Maddeler. Mart Uyuşturucu 2018, 16, 399.[CrossRef] [PubMed]

43. Schneider, G.; Figueroa, FL; Vega, J.; Chaves, P.; Álvarez-Gómez, F.; Korbee, N.; Bonomi-Barufi, J. Yüksek ultraviyole maruziyet alanlarında yetişen deniz fotosentetik organizmalarının fotokoruma özellikleri: Kozmesötik uygulamalar. Alg Araş. 2020,49, 101956. [CrossRef]

44. Nishida, Y.; Kumagai, Y.; Michiba, S.; Yasui, H.; Kishimura, Japonya'daki Red Alga Dulse Palmaria palmitatından Mikosporin Benzeri Amino Asitlerin H. Verimli Ekstraksiyonu ve Antioksidan Kapasitesi. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 502. [CrossRef] [PubMed]

45. Rehm, E.; Dalgleish, F.; Huot, M.; Matteoli, S.; Archambault, P.; Lambert Girard, S.; Piche, M.; Lagunas-Morales, J. Arctic substratlarına uygulamalarla alg biyokütlesini tespit etmek için floresan ve diferansiyel absorpsiyon LiDAR tekniklerinin karşılaştırılması. Okyanus İçi Algılama ve İzleme X; Uluslararası Optik ve Fotonik Derneği: Bellingham, WA, ABD, 2018; Cilt 10631, s. 106310Z.

46. ​​Wang, T.; Jonsdottir, R.; Ólafsdóttir, G. İzlanda deniz yosunlarından elde edilen ekstraktların toplam fenolik bileşikleri, radikal temizleme ve metal şelasyonu. Gıda Kimyası 2009, 116, 240–248. [Çapraz Referans]

47. Bedoux, G.; Hardouin, K.; Burlot, AS; Bourgougnon, N. On İkinci Bölüm—Deniz Yosunlarından Biyoaktif Bileşenler: Kozmetik Uygulamalar ve Gelecekteki Geliştirme. Botanik Araştırmalarındaki Gelişmelerde; Bourgougnon, N., Ed.; Akademik Basın: Cambridge, MA,ABD, 2014; Cilt 71, s. 345–378.

48. Roleda, BENİM; Marfaing, H.; Desnica, N.; Jónsdóttir, R.; Skjermo, J.; Rebours, C.; Nitschke, U. Yabani hasat edilmiş ve ekilmiş deniz yosunu toplu biyokütlesinin polifenol ve ağır metal içeriklerindeki varyasyonlar: Gıda uygulamaları için sağlık riski değerlendirmesi ve etkisi. Gıda Kontrolü 2019, 95, 121–134. [Çapraz Referans]

49. Ümmet, V.; Tiwari, BK; Jaiswal, AK; Condon, K.; Garcia-Vaquero, M.; O'Doherty, J.; O'Donnell, C.; Rajauria, G. Kahverengi Deniz Yosunlarından Polifenoller, Florotaninler ve İlişkili Antioksidan Aktivitenin Geri Kazanılması için Ultrason Frekansı, Ekstraksiyon Süresi ve Solvent Optimizasyonu. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 250. [CrossRef]

50. Afonso, C.; Matos, J.; Guarda, İ.; Gomes-Bispo, A.; Gomes, R.; Cardoso, C.; Gueifão, S.; Delgado, İ.; Coelho, İ.; Castanheira, İ.; et al. Alaria esculenta ve Saccharina latissima'nın biyoaktif ve beslenme potansiyeli. J. Uygulama Fikol. 2021, 33, 501–513. [Çapraz Referans]

51. Cotas, J.; Leandro, A.; Monteiro, P.; Pacheco, D.; Figueirinha, A.; Gonçalves, AMM; da Silva, GJ; Pereira, L. Yosun Fenolikleri: Ekstraksiyondan Uygulamalara. Mart Uyuşturucu 2020, 18, 384. [CrossRef]

52. Farasat, M.; Khavari-Nejad, RA; Nabavi, SM; Namjooyan, F. Basra Körfezi'nin Kuzey Kıyılarından Bazı Yenilebilir Yeşil Yosunların Antioksidan Aktivitesi, Toplam Fenolikler ve Flavonoid İçerikleri. IJPR 2014, 13, 163–170. [PubMed]

53. Manivannan, K.; Thirumaran, G.; Devi, GK; Anantharaman, P.; Balasubramanian, T. Vedalai Kıyı Sularından (Mannar Körfezi) Farklı Deniz Yosunu Grubunun Yakın Bileşimi: Hindistan'ın Güneydoğu Kıyısı. Orta Doğu J. Sci. Araş. 2009, 4, 72-77.

54. Mišurcová, L.; Škrovánková, S.; Samek, D.; Ambrožová, J.; Mach ˚u, L. Bölüm 3—İnsan Beslenmesinde Algal Polisakkaritlerin Sağlığa Faydaları. Gıda ve Beslenme Araştırmalarındaki Gelişmelerde; Henry, J., Ed.; Akademik Basın: Cambridge, MA, ABD, 2012; Cilt66, s. 75–145.

55. Lafarga, T.; Acién-Fernández, FG; Garcia-Vaquero, M. Gıda uygulamaları için deniz yosunundan elde edilen biyoaktif peptitler ve karbonhidratlar: Doğal oluşum, izolasyon, saflaştırma ve tanımlama. Alg Araş. 2020, 48, 101909. [CrossRef]

56. Mutripah, S.; Meinita, MDN; Kang, J.-Y.; Jeong, G.-T.; Susanto, AB; Prabowo, RE; Hong, Y.-K. Palmaria palmata'nın sülfürik asit kullanılarak hidrolizatından biyoetanol üretimi ve bira mayası ile fermantasyon. J. Uygulama Fikol. 2014, 26, 687–693.[CrossRef]

57. Dominguez, H.; Loret, EP Ulva lactuca, Sorunların ve Potansiyel Zenginliklerin Kaynağı. Mart Uyuşturucu 2019, 17, 357. [CrossRef]

58. Kidgell, JT; Magnusson, M.; de Nys, R.; Glasson, CRK Ulvan: Ekstraksiyon, bileşim ve işlevin sistematik bir incelemesi.Algal Res. 2019, 39, 101422. [CrossRef]

59. Habeebullah, SFK; Alagarsamy, S.; Arnus, A.; Jacobsen, C. Danimarka deniz yosunlarından antioksidan bileşenlerin enzimatik ekstraksiyonu ve aktif ilkelerin karakterizasyonu. Alg Araş. 2021, 56, 102292. [CrossRef]

60. Yuan, Y.; Zhang, J.; Fan, J.; Clark, J.; Şen, P.; Li, Y.; Zhang, C. Dört ekonomik kahverengi makroalg türünden fenolik bileşiklerin mikrodalga destekli ekstraksiyonu ve antioksidan aktivitelerinin ve -amilaz, -glukosidaz, pankreatik lipaz ve tirozinaz üzerindeki inhibitör etkilerinin değerlendirilmesi. Int. Gıda Araş. J. 2018, 113, 288–297. [Çapraz Referans]

61. Balboa, EM; Conde, E.; Moure, A.; Falque, E.; Domínguez, H. Ham özütlerin ve kahverengi alglerden elde edilen bileşiklerin in vitro antioksidan özellikleri. Gıda Kimyası 2013, 138, 1764-1785. [Çapraz Referans]

62. Kaynama, H.; Fatmawati, S.; Santoso, M.; Papilaya, PM; Ersam, T. Garcinia lasoar PAM'ın Serbest Radikal Süpürme ve Toplam Fenolik ve Flavonoid İçeriklerinin İlişkisi. Eczacılık Kimya J. 2020, 53, 1151–1157. [Çapraz Referans]

63. Dang, TT; Van Vuong, Q.; Schreider, MJ; Bowyer, MC; Van Altena, IA; Scarlett, CJ Alg Hormosira bankalarının fenolik içeriği ve antioksidan aktiviteleri için ultrason destekli ekstraksiyon koşullarının yanıt yüzey metodolojisi kullanılarak optimizasyonu. J. Uygulama Fikol. 2017, 29, 3161–3173. [Çapraz Referans]

64. Couteau, C.; Coiffard, L. Bölüm 14—Kozmetikte Deniz Yosunu Uygulaması. Sağlıkta ve Hastalıktan Korunmada Yosunlarda; Fleurence, J., Levine, I., Eds.; Akademik Basın: San Diego, CA, ABD, 2016; s. 423–441.

65. Tsukahara, K.; Takema, Y.; Moriwaki, S.; Tsuji, N.; Suzuki, Y.; Fujimura, T.; Imokawa, G. Cilt FibroblastElastazının Seçici İnhibisyonu, Ultraviyole B'ye Bağlı Kırışıklık Oluşumunun Konsantrasyona Bağlı Önlenmesini Ortaya Çıkarır. J. Araştır. Dermatol. 2001,117, 671-677. [Çapraz Referans]

66. Liyanaarachchi, GD; Samarasekera, JKRR; Mahanama, KRR; Yeni kozmetikler için Sri Lanka şifalı bitkilerinin hemalal, KDP Tirozinaz, elastaz, hiyalüronidaz, inhibitör ve antioksidan aktivitesi. Sanayi Bitkileri Prod. 2018, 111, 597-605. [Çapraz Referans]

67. Gupta, PL; Rajput, M.; Öza, T.; Trivedi, U.; Sanghvi, G. Kozmetik Endüstrisinde Mikrobiyal Ürünlerin Eminence. Nat. Ürün.Bioprospect. 2019, 9, 267-278. [CrossRef] [PubMed]

68. Zolghadri, S.; Bahrami, A.; Hassan Khan, MT; Munoz-Munoz, J.; Garcia-Molina, F.; Garcia-Canovas, F.; Saboury, AA Tirozinaz inhibitörleri hakkında kapsamlı bir derleme. J. Enzim Engelleme. Med. 2019, 34, 279–309. [Çapraz Referans]

69. Couteau, C.; Coiffard, L. Phycocosmos ve Diğer Deniz Kozmetikleri, Deniz Kaynakları Kullanılarak Formüle Edilmiş Özel Kozmetikler.Mar. İlaçlar 2020, 18, 322. [CrossRef]

70. Sarı, DM; Enver, E.; Arifianti, AE Kahverengi deniz yosununun (Turbinaria conoides) etanol ekstraktlarının aydınlatıcı bileşen olarak antioksidan ve tirozinaz inhibitör aktiviteleri. Eczacılık J. 2019, 11, 379-382. [Çapraz Referans]

71. Brenner, M.; İşitme, VJ Melaninin insan cildindeki UV hasarına karşı koruyucu rolü. Fotokimya. Fotobiyol. 2008, 84.539–549. [CrossRef] [PubMed]

72. Lee, SY; Baek, N.; Nam, T.-G. Doğal, yarı sentetik ve sentetik tirozinaz inhibitörleri. J. Enzim Engelleme. Med. Kimya 2016, 31,1–13. [CrossRef] [PubMed]

73. Ferreres, F.; Lopes, G.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; Susa, C.; Mouga, T.; Valentão, P. HPLC-DAD-ESI-MSn ile Karakterize Edilen Fucales'ten Phlorotanin Ekstraktları: Hyaluronidaz İnhibitör Kapasitesi ve Antioksidan Özelliklerine Yaklaşımlar. Mar.Drugs 2012, 10, 2766–2781. [CrossRef] [PubMed]

74. Fayad, S.; Nehme, R.; Tannuri, M.; Lesellier, E.; Pichon, C.; Morin, P. Macroalga Padina pavonica basınçlı sıvı ekstraksiyonu ve mikrodalga destekli ekstraksiyon ile elde edilen su ekstraktları, kılcal elektroforez ile gösterildiği gibi hiyalüronidaz aktivitesini inhibe eder.J. kromatogr. A 2017, 1497, 19–27. [CrossRef] [PubMed]

75. Athukorala, Y.; Kim, K.-N.; Jeon, Y.-J. Kahverengi alg, Ecklonia cava'dan bir enzimatik hidrolizatın antiproliferatif ve antioksidan özellikleri. Gıda Kimyası Toksikol. 2006, 44, 1065-1074. [Çapraz Referans]

76. Jiménez-Escrig, A.; Gómez-Ordóñez, E.; Rupérez, P. Potansiyel antioksidan nutrasötik kaynakları olarak kahverengi ve kırmızı deniz yosunları.J. Uygulama Fikol. 2012, 24, 1123-1132. [Çapraz Referans]

77. Karawita, R.; Siriwardhana, N.; Lee, K.-W.; Heo, M.-S.; Yeo, I.-K.; Lee, Y.-D.; Jeon, Y.-J. Hizikia fusiformis.Eur.'den farklı çözücü fraksiyonlarının reaktif oksijen türlerini temizleme, metalşelasyon, indirgeme gücü ve lipid peroksidasyon inhibisyon özellikleri. Gıda Araş. Teknoloji. 2005, 220, 363-371. [Çapraz Referans]

78. Jormalainen, V.; Honkanen, T. Kahverengi alg Fucus vesiculosus'ta büyüme ve florotaninler için doğal seçilimde varyasyon.J. Evrim. Biol. 2004, 17, 807-820. [CrossRef] [PubMed]

79. Koivikko, R.; Loponen, J.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. Kahverengi alg Fucus vesiculosus'tan florotanninlerin yüksek performanslı sıvı kromatografik analizi. Bitki kimyası. Anal. 2007, 18, 326-332. [CrossRef] [PubMed]

80. Mareçek, V.; Mikyška, A.; Hampel, D.; Cejka, P.; Neuwirthov ˇá, J.; Malachova, A.; Baharlık arpa ve maltın antioksidan kapasitesini araştırmak için bir araç olarak Cerkal, R. ABTS ve DPPH yöntemleri. J. Tahıl Sci. 2017, 73, 40–45. [Çapraz Referans]

81. Esada, M.; Sugi, M.; Inoue, M.; Nakagomi, K.; Hongo, S.; Murat, K.; Irie, S.; Takeuchi, T.; Tomizuka, N.; Oka, S. Alginik Asitlerin Hiyalüronidaz Üzerindeki İnhibitör Etkisi ve Mast Hücrelerinden Histamin Salımı. Biosci. Biyoteknoloji. Biyokimya. 1997, 61, 1030–1032.[CrossRef] [PubMed]

82. Mase, T.; Yamauchi, M.; Kato, Y.; Esaki, H.; Isshiki, PorphyridiumPurpureum'dan İzole Edilen S. Hyaluronidase-Inhibitör Asidik Polisakkarit. Suishan Kadın Gakuen Üniversitesi'nde Araştırma Makaleleri Koleksiyonu. Nat. bilim 2013, 44, 105-113.83. Tolpeznikaite, E.; Bartkevics, V.; Ruzauskas, M.; Pilkaityte, R.; Viskelis, P.; Urbonaviciene, D.; Zavistanaviciute, P.; Zokaityte, E.;Ruibys, R.; Bartkiene, E. Makro ve Mikroalg Ekstraktlarının Karakterizasyonu Biyoaktif Bileşikler ve Mikro ve Makro Elementler Alglerden Ekstraktlara Geçiş. Gıdalar 2021, 10, 2226. [CrossRef]

84. Gomez, I.; Huovinen, P. Morfo-fonksiyonel desenler ve Güney Şili deniz yosunlarının bölgelenmesi: Fotosentetik ve biyo-optik özelliklerin önemi. Mart Ekol. prog. Sör. 2011, 422, 77-91. [Çapraz Referans]

85. Karsten, U.; Wiencke, C. Spitsbergen'den (Norveç) Deniz Kırmızısı Alga Palmaria palmitatında UV emici Mikosporin benzeri Amino Asitlerin Oluşumunu Kontrol Eden Faktörler. J. Bitki. Fizyol. 1999, 155, 407-415. [Çapraz Referans]

86. Ümmet, V.; Sivagnanam, SP; Rajauria, G.; O'Donnell, C.; Tiwari, BK Deniz yosunlarından biyoaktif için ön arıtma tekniklerinde ve yeşil ekstraksiyon teknolojilerinde ilerlemeler. Trendler Gıda Bilimi Teknoloji 2021, 110, 90–106. [Çapraz Referans]

87. Boussetta, N.; Lanoisellé, J.-L.; Bedel-Cloutour, C.; Vorobiev, E. Polifenol geri kazanımı için yüksek voltajlı elektrik deşarjları ile üzüm posasından çözünür maddenin ekstraksiyonu: Kükürt dioksit ve termal işlemlerin etkisi. J. Gıda Müh. 2009, 95, 192–198.[CrossRef]

88. Goettel, M.; Eing, C.; Gusbeth, C.; Straessner, R.; Frey, W. Darbeli elektrik alan destekli hücre içi değerli eşyaların mikroalglerden çıkarılması. Alg Araş. 2013, 2, 401–408. [Çapraz Referans]

89. Hwang, P.-A.; Wu, C.-H.; Gau, S.-Y.; Chien, S.-Y.; Hwang, D.-F. Deniz yosunu Sargassum epiphyllum'dan sıcak su ekstraktının antioksidan ve bağışıklık uyarıcı aktiviteleri. J. Mar. Sci. Teknoloji. 2010, 18, 41-46. [Çapraz Referans]

90. Sabeena Farvin, KH; Jacobsen, C. Danishcoast'tan seçilen deniz yosunu türlerinin fenolik bileşikleri ve antioksidan aktiviteleri. Gıda Kimyası 2013, 138, 1670-1681. [CrossRef] [PubMed]

91. Godlewska, K.; Michalak, İ.; Tuhy, L.; Chojnacka, K. Su ile Deniz Yosunu Ekstraksiyonunun Farklı Yöntemlerine Dayalı Bitki Büyüme Biyostimulanları. BioMed Arş. Int. 2016, 2016, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

92. Zhang, Q.; Zhang, J.; Shen, J.; Silva, A.; Dennis, DA; Barrow, CJ Deniz Yosunlarındaki Toplam Polifenol İçeriğinin Tahmini için Basit Bir 96-Kuyu Mikroplaka Yöntemi. J. Uygulama Fikol. 2006, 18, 445-450. [Çapraz Referans]

93. Kamtekar, S.; Keer, V.; Patil, V. Pazarlanan poliherbal formülasyonun fenolik içeriği, flavonoid içeriği, antioksidan ve alfa-amilaz inhibitör aktivitesinin tahmini. J. Uygulama Eczacılık bilim 2014, 4, 61.

94. Neto, R.; Marçal, C.; Queiros, A.; Abreu, M.; Silva, A.; Cardoso, S. Ulva serta, Gracilaria sp., Fucus vesiculosus ve Saccharina latissima'nın Fonksiyonel Bileşenler olarak taranması. Int. J. Mol. bilim 2018, 19, 2987. [CrossRef]

95. Benzie, IF; Strain, JJ "Antioksidan gücün" bir ölçüsü olarak plazmanın ferrik indirgeme yeteneği (FRAP): FRAP testi. Anal.Biyokimya. 1996, 239, 70-76. [Çapraz Referans]

96. Eun Lee, K.; Bharadwaj, S.; Yadava, U.; Gu Kang, S. Kafeinin kollajenaz, elastaz ve tirozinaza karşı bir inhibitör olarak siliko ve in vitro yaklaşımda değerlendirilmesi. J. Enzim Engelleme. Med. Kimya 2019, 34, 927-936. [CrossRef] [PubMed]