Aspergillus Oryzae ve Aspergillus Cristatus İle Fermente Edilmiş Pirinç Kojisinin Metabolit Profili ve Yaşlanma Karşıtı Etkinliği: Karşılaştırmalı Bir Çalışma Ⅱ

3. Tartışma

Kabuk, kepek, embriyo ve endosperm gibi pirincin yüzeyden iç kısmına kadar farklı kısımları farklı kimyasal bileşimlere sahiptir (26). Özellikle pirinç kepeği çeşitlifenolik asitlerVeflavonoidlersergilediği bilinenantioksidan aktivite.Ek olarak, pirinç hücre duvarı, ksiloz, arabinoz, ferulik asit ve ferulik asit içeren bir arabinoksilan yapısından oluşur. inokulum mikroplarından proteaz ve glukozidaz gibi çeşitli enzimler tarafından pirinç hücre duvarı (24. Bu nedenle pirinç koii gösterir)daha yüksek seviyelerde tirozinaz inhibe edici aktiviteVeantioksidan aktivitelerdeğerli zenginleştirilmiş bileşikler (28.

Cistanche Antioksidan Aktivitesi Hakkında Daha Fazla Bilgi Almak İçin Buraya Tıklayın

Enzim aktivitesinde, metabolitlerin üretiminde ve biyoaktivitelerde önemli farklılıkları açıklayan iki farklı filamentli mantarla fermente edilmiş pirinç koji için metabolomik yaklaşımı izledik. Aşılanmış A. cristatus ve A. oryzae tarafından üretilen a-amilaz, &glukosidaz ve -glukosidaz gibi çeşitli enzimlerin aktiviteleri fermantasyon süresiyle birlikte arttı (Şekil 3). Bu enzimler arabinoksilanın yapısını parçaladığından, Şekil 2'de gösterildiği gibi her iki numunede de çeşitli fenolik asitler pirinç hücre duvarından ayrıldı. Bu fenolik asitler oksidatif stresi azaltan potansiyel antioksidanlardır 291. Böylece, antioksidan aktiviteler ve TPC testi fenolik asit içeriği arttıkça fermantasyon süresinin artması (Şekil 2 ve 4) Özellikle RAC, RAO'dan daha yüksek flavonoid içeriğine sahiptir çünkü pirinç hücre duvarından -glikosidik bağı hidrolize eden daha yüksek -glukosidaz seviyesine sahiptir. pirinç koji'de A. cristatus'un büyümesi. Pirinç hücre duvarından ayrılmaya ek olarak glukozidaz, flavonoid glukozit formunu daha yüksek antioksidan aktiviteye sahip bir aglikon formuna hidrolize eder 30]. Artan flavonoid glukozit formu ve aglikon formu, korelasyon ağ haritasında gösterildiği gibi, RAC'ın antioksidan aktivitesini etkileyebilecek ABTS, DPPH FRAP ve TFC gibi antioksidan aktiviteleri arttırır (Şekil 4). Bu fenomen, glukozit izoflavonların aglikonlara biyotransformasyonunu ve soya fasulyesi ile fermente edilmiş soya fasulyesinde mantasyon süresine göre antioksidan aktivitede artan kalıpları gösteren önceki bir çalışmada da gözlenmiştir. [311.

RAO, a-glikosidik bağları parçalayan ve daha yüksek glikoz içeriğini otomatik olarak üreten daha yüksek bir a-glukosidaz aktivitesine sahiptir. Mantar için ana karbon kaynağının glikoz olmasının yanı sıra, RAC'de glikoz seviyesi, A değil A. cristatus tarafından üretilen ayırt edici pigment bileşikleri olan auroglosin türevleri gibi sekonder metabolitlerin sentezi için kullanıldığı için fermantasyondan sonra düşmüştür. .oryzne. Önceki çalışmalar, oroglaucin türevlerinin DPPH'de aktiviteye sahip olduğunu ve potansiyel antioksidan bileşikler olarak varsayıldığını bildirmiştir [32]. Ayrıca, çökmüş pirinç hücre duvarı, enzimlerin pirincin en iç kısımlarına nüfuz etmesine izin verebilir [24]. Bu nedenle, pirincin dış çeperinden kesinti olmadan daha fazla metabolit serbestçe ekstrakte edilebilir.

Hem RAO hem de RAC'ın biyoaktiviteleri ve metabolitleri arasındaki korelasyon ağı haritasında (Şekil 4), ortak eğilimler, flavonoidlerin, organik asitlerin, şeker türevlerinin ve yağ asitlerinin biyoaktivitelere potansiyel katkıda bulunanlar olarak önerilmesiydi. Flavonoidler ve fenolik asitler ünlü antioksidanlardır ve çeşitli işlevlere göre birçok avantaja sahiptirler. Oksidatif stresi hafifletme yeteneklerinden dolayı, gıda kalitesini arttırmak ve cilt yaşlanmasını iyileştirmek için kullanılırlar [33]. Ek olarak, önceki bir çalışma, yağ asitlerinin ve antioksidanların cilt yaşlanmasının önlenmesi ve yönetimi için sinerjistik bir etki yaratabileceğini bildirmiştir [34].

Öte yandan, auroglosin ve lizofosfolipid türevleri, RAC'deki metabolitlere ek katkıda bulunanlar olarak görev yapar [35]. Auroglosin türevleri, yukarıda belirtildiği gibi antioksidan aktivitelere sahiptir ve bu nedenle, cilt streslerini azaltmak için serbest radikal zincir reaksiyonlarını sonlandırma potansiyeline sahip olduklarını varsayıyoruz. Yahagi ve ark. lizofosfolipidlerin, cilt bariyeri ve ciltteki hidrasyon fonksiyonları ile ilişkili faktörlerin ekspresyonunu artırarak cildin nemlenmesini koruyabildiğini göstermiştir [36]. Nemlendirme, sağlıklı cilt için hayati bir faktördür çünkü kuruluk, pürüzlülük, pullu cilt ve ince kırışıklıklar ile karakterize edilen cilt bozulmasına neden olur [37,38]. Auroglosin ve lizofosfolipidlerin, RAC'de son fermantasyon aşamasında RAO'dan daha iyi cilt yaşlanma karşıtı etkilere sahip olduğunu tahmin ediyoruz. Zhao ve ark. baskın mantar A. cristatus içeren Fuzhuan tuğla çayının, ROS'un söndürülmesi ve Nrf2 sinyal kaskadlarının tetiklenmesi yoluyla fotoyaşlanmayı engelleyebileceğini göstermiştir [21]. Bu nedenle, bol nem için daha iyi cilt koşulları oluşturmak gibi dolaylı yollardan hareket ederek RAC'nin RAO'dan daha yüksek bir yaşlanma karşıtı potansiyel sunduğunu varsayıyoruz.serbest radikal stresi azaltmak.

Genel olarak, gelişmiş yağ asitleri, fenolik asitler, flavonoidler, lizofosfolipidler ve hidrokinonların antioksidan aktiviteleri artırabileceğine ve elastin ve kolajenin RNA ifadesini iyileştirebileceğine ve aynı zamanda MMP'nin-1 RNA ifadesini bastırabileceğine inanıyoruz. fermantasyon. Bu bileşikler, inokulum mantarına göre metabolitlerde farklı değişim modelleri sergilediler ve çeşitli biyoaktiviteleri etkilediler. Bu çalışma, metabolomik bir yaklaşım kullanarak aynı Aspergillus cinsinin farklı türleri arasındaki genel metabolizma farkını aydınlatmıştır. Ek olarak, farklı enzim aktiviteleri, farklı metabolitlerin üretimini etkiledi ve RAO ve RAC'de farklı biyoaktiviteleri indükledi.

4. Malzemeler ve Yöntemler

4.1. Kimyasallar ve tepkimeler

4.2. Numune Hazırlama ve Ekstraksiyon

Koji kalıpları A. oryzae KCCM 11372 (Korean Culture Center of Microorganism, KCCM; Republic of Korea) ve A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF from Cosmax BTI R&I center; Seongnam, Korea) pirincin fermantasyonu için kullanıldı ve ayrı olarak aşılandı . Her mikroorganizma, 28°C'de malt özü agar (malt özü, 20 g; glikoz, 20 g; pepton, 1 g; ağar, 20 g/L) üzerinde tutuldu. Koji üretimi için fermantasyon adımlarının biyoişlemi, Lee ve diğerlerinden uyarlanmıştır. [11]. A. oryzae ve A. cristatus ile fermente edilen pirinç koji örnekleri 2 günde bir (0. günden 8. güne kadar) hasat edilmiş ve ileri analizlere kadar derin dondurucuda (-80 ◦C) saklanmıştır. Tüm numuneler iki biyolojik kopya ile hazırlandı.

Pirinç koji örneğinin ekstraksiyon yöntemi Lee ve ark. küçük değişikliklerle [11]. Kısaca, toz haline getirilmiş dondurularak kurutulmuş pirinç koji numuneleri (5 g), yüzde 8 sulu etanol (40 mL) eklenerek ve oda sıcaklığında bir orbital çalkalayıcıda (200 rpm, 24 saat) çalkalanarak özümlendi. Numunelerin 10,000 rpm'de 5 dakika 4°C'de santrifüjlenmesinden sonra, süpernatanlar 0.22 um Millex GP filtresi (Merck Millipore, Billerica, MA, ABD) ile süzüldü. Süzülmüş numune özleri, bir hızlı vakum yoğunlaştırıcı (Hanil, Seul, Kore) kullanılarak kurutuldu ve özütleme verimini değerlendirmek için kuru ağırlık ölçüldü.

4.3. GC–TOF–MS Analizi

Ekstrakt edilmiş pirinç koji numunelerinin türevlendirme adımları, Lee ve diğ. [11]. GC–TOF–MS analizi, Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, ABD) ile Agilent 7890A GC sisteminde (Santa Clara, CA, ABD) yapılmıştır. Taşıyıcı gaz (helyum), 1,5 mL/dk sabit akış hızında bir RTx-5MS (30 m uzunluk × 0,25 mm iç çap, J&W Scientific, Folsom, CA, ABD) ile kullanıldı. Enjektör ve iyon kaynağı sıcaklıkları sırasıyla 250 ve 230 ◦C'de tutuldu. Fırın sıcaklığı 2 dakika 75 ◦C'de tutulmuş, ardından 3 dakika sürdürülen 15 ◦C/dk'da 300 ◦C'ye yükseltilmiştir. Ardından, m/z 50–800 kütle tarama aralığı ile 1 µL numune enjekte edildi. Tüm numune analizleri, üç analitik kopya ile gerçekleştirilmiştir.

4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS Analizi

Ekstrakte edilen pirinç koji numuneleri, Kwon ve diğerleri tarafından açıklanan protokoller kullanılarak ultra yüksek performanslı sıvı kromatografi lineer tuzak dört kutuplu orbitrap tandem kütle spektrometresi (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS) kullanılarak ikincil metabolitler için analiz edildi. [39]. Her numune, bir Phenomenex KINETEX® C18 kolonu (100 mm 2,1 mm, 1,7 m partikül boyutu; Torrance, CA, ABD) kullanılarak ayrıldı. Hem pozitif hem de negatif iyon modlarındaki kütle spektrumları ve fotodiyot dizisi aralığı, sırasıyla m/z 100−1000 ve 200−600 nm için ayarlandı.

4.5. Veri İşleme ve İstatistiksel Analiz

Ham GC–TOF–MS ve UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS verileri sırasıyla Leco ChromaTOF ve Thermo Xcalibur yazılımı kullanılarak netCDF (*.cdf) formatına dönüştürüldü. İlgili net CDF (*.cdf) dosyaları, Lee et al. [11,24]. Değişkenler olarak uygun tepe kütlesini (m/z), tutma sürelerini (dak) ve tepe alanı bilgisini temsil eden kütle spektrometrik verileri, SIMCA-P plus 12.0 yazılımı (Umetrics, Umea, İsveç) çok değişkenli istatistiksel analiz için. Temel bileşen analizi (PCA), kısmi en küçük kareler ayırma analizi (PLS-DA) ve ortogonal kısmi en küçük kareler ayırma analizinden (OPLS-DA) önce, veri kümeleri log-dönüştürüldü ve pirinç kojisini karşılaştırmak için birim varyans ölçeklendi. Farklı mantarlarla fermente edilmiştir. PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, ABD), tek yönlü varyans analizi ile önemli farklılıkları (p-değeri < 0,05) test etmek ve korelasyon katsayısı değerlerini hesaplamak için kullanıldı Bir korelasyon haritası için. Pearson korelasyon katsayısı değeri 0,5'ten yüksek olan metabolitler ile biyoaktiviteler arasındaki korelasyon ağı haritası, Cytoscape yazılımı (https://www.cytoscape.org/ (erişim tarihi 13 Temmuz 2021)) ile oluşturulmuştur. Geçici metabolitlerin tanımlanması, moleküler ağırlıklar ve moleküler bileşim, tutma süresi, kütle fragmanı eşleştirilerek gerçekleştirildi.

literatürden ve şirket içi kitaplığımızdan ultraviyole (UV) verilerinin desenleri ve emilimi

4.6. Enzimatik Aktivitelerin Tayini

-amilaz, -glukosidaz ve -glukosidaz için enzimatik aktivite deneyleri önceki çalışmalara göre yapılmıştır [25,40,41]. Her bir pirinç koji numunesinden 10 g miktar, 90 mL su içinde bir orbital çalkalayıcı üzerinde 120 pm'de ve 25 ◦C'de 1 saat çalkalanarak ekstrakte edildi. Numunelerin filtrelenmesinden sonra, süpernatanlar enzim aktivitelerini değerlendirmek için kullanıldı.

4.7. Antioksidan Aktivitelerin ve Toplam Fenolik ve Flavonoid İçeriklerinin Belirlenmesi

Pirinç koji numunelerinin antioksidan aktivitesini belirlemek için ABTS, DPPH, ferrik indirgeyici antioksidan gücü (FRAP), toplam fenolik içerikler (TPC) ve toplam flavonoid içerikler (TFC) analizleri üç tekrarlı olarak yapılmıştır.

ABTS ve FRAP tahlilleri, Lee ve diğerleri tarafından açıklanan yöntem kullanılarak yapıldı. [24]. Kısaca, 750 nm'de (180 µL) 0,7 ± 0.02'lik bir nihai absorbans elde etmek için damıtılmış suyla seyreltilmiş ABTS stok çözeltisi bir 96-kuyu plakasında her numune ekstraktına (20 µL) eklendi. Reaksiyonun karanlıkta, oda sıcaklığında 6 dakika gerçekleşmesi sağlandı. Absorbans, bir spektrofotometre kullanılarak 750 nm'de ölçülmüştür. FRAP testi için, 40 mM HCI içinde 300 mM asetat tamponu (pH 3.6), 20 mM demir (III) klorür ve 10 mM 2,4,6-tripiridil-S-triazin (TPTZ) çözeltisi karışımı (10:1:1, v/v/v) hazırlandı. Numune (10 uL), 300 uL FRAP reaktifi ile karıştırıldı ve oda sıcaklığında 6 dakika inkübe edildi. Absorbans 570 nm'de ölçüldü. DPPH tahlili, Won ve ark. [42], burada 180 µL DPPH stok solüsyonu (etanol içinde 0,2 mM), kuyu plakalarında iki farklı mantar özü içeren 20 µL pirinç koji ile karıştırıldı ve 20 dakika oda sıcaklığında reaksiyona girmesi sağlandı karanlıkta. DPPH tarafından serbest radikal absorbansı 515 nm'de ölçülmüştür. ABTS, FRAP ve DPPH sonuçları, miligram koji başına Trolox eşdeğeri antioksidan kapasite (TEAC) konsantrasyonu (mM) olarak temsil edilir. Standart konsantrasyon eğrileri, 0,0078 mM ila 1 mM TEAC aralığındaydı.

TFC ve TPC deneyleri için Lee ve diğerleri tarafından kullanılan bir yöntem. [25] takip edildi. TFC tahlili için, her bir pirinç koji numunesinden 20 µL, 20 µL 1 N NaOH ve 180 µL yüzde 90 dietilen glikol ile karıştırıldı. bir 96-kuyu plakası. Karışım oda sıcaklığında 60 dakika inkübe edildikten sonra 405 nm'de absorbans ölçüldü. TFC, miligram koji başına naringin eşdeğeri (NE) konsantrasyonu (mM) olarak sunulur. Standart konsantrasyon eğrisi, 0,0027 ve 0,3445 mM NE arasında doğrusaldı. TPC testinin analizi için, her numuneden 20 µL, 100 µL 0,2 N Folin–Ciocalteu reaktifi ile 96-kuyulu plakalarda oda sıcaklığında 6 dakika inkübe edildi. Daha sonra karışıma 80 µL yüzde 7,5 sodyum karbonat (Na2CO3) solüsyonu ilave edildi ve oda sıcaklığında 60 dakika reaksiyona girmesi sağlandı. Son olarak, absorbans 750 nm'de değerlendirildi. Sonuçlar, 0,0230–2,9391 mM GE standart konsantrasyon aralığında miligram koji başına gallik asit eşdeğeri (GE) konsantrasyonları (mM) olarak belirtilir.

4.8. Hücre Kültürleri

4.9. Gerçek Zamanlı Polimeraz Zincir Reaksiyonu

Hücre peletlerinden toplam RNA'yı izole etmek ve ölçmek için Trizol reaktifi kullanıldı ve analiz bir spektrofotometre kullanılarak yapıldı. cDNA'nın sentezi, 20 uL'lik bir toplam reaksiyon hacminde gerçekleştirildi; reaksiyon karışımı, aşağıdaki reaksiyon koşulları altında 2 ug toplam RNA, oligo (dT) ve ters transkripsiyon ön karışımından oluşuyordu: 45 dakika 45°C, ardından 5 dakika 95°C. RT-PCR, gen ekspresyonunun miktarını belirlemek için kullanıldı ve sonuçlar daha sonra StepOne PlusTM sistem yazılımı (Applied Biosystems, Foster City, CA, ABD) kullanılarak analiz edildi. RT-PCR amplifikasyonları, üreticinin protokolü izlenerek bir ABI 7300 cihazında önceden karıştırılmış ROX (Applied Biosystems, Foster City, CA, ABD) ve primerler (Bioneer, Daejeon, Kore) içeren SYBR Green PCR Master Mix kullanılarak gerçekleştirildi. Reaksiyon koşulları şu şekildeydi: 95 ◦C'de 10 dakika başlatma, ardından 95 ◦C'de 15 s, 60 ◦C'de 30 s ve 72 ◦C'de 30 s, 40 döngü. -aktin dahili kontrol olarak kullanıldı.

Sonuç olarak, pirinç koji, kullanılan farklı Aspergillus türlerine göre farklı metabolitlerin ve biyoaktivitelerin üretimini göstermiştir. daha yüksek seviyeleriflavonoidlerve RAC'deki oroglaucin türevleri daha yüksek sonuç verdiantioksidan aktiviteRAO'dan daha fazla. Ek olarak, yağ asidinin sinerjistik etkileri veantioksidan bileşiklerHer iki kojide de bulunan RNA ekspresyonu ile ilişkilendirildi.cilt yaşlanma karşıtı faktör. RAC'de bulunan auroglosin türevleri ve lizofosfolipidler de ilişkili olabilecek adaylardı.Cilt yaşlanma karşıtı faktörlerin RNA ifadesi. Bu nedenle, pirinç kojisi aynı cinsin (Aspergillus) üyeleri kullanılarak fermente edilse de, farklı türler için enzim aktiviteleri ve metabolitlerinde önemli farklılıklar vardır ve bunlarbiyoaktivitelerörneğinantioksidanVeyaşlanma karşıtı faaliyetler. Bu nedenle, bu çalışma, aşılama mikroplarının rasyonel seçimi için kapsamlı bir içgörü ve aynı zamanda mantık sağlar.

Koji'nin ticari üretiminin kalitesini artırmak için metabolomik.

Tamamlayıcı Malzemeler:Aşağıdakiler çevrimiçi olarak Şekil S1'de mevcuttur: Pirinç için PLS-DA skor grafiği (A,B) ve OPLS-DA skor grafiği (C)kojiile fermente edilmişaspergillus cristatusveyaA. oryzaeUHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A,C) ve GC–TOF–MS'den (B) elde edilmiştir. Tablo S1: Pirinçten önemli ölçüde farklı metabolitlerin listesikojifarklı ileAspergillus türleri. UHPLC–LTQ–Orbitrap-MS/MS tarafından tanımlanan fermantasyon sırasında, Tablo S2: Pirinçten önemli ölçüde farklı metabolitlerin listesikojifarklı ileAspergillus türleri. GC-TOF-MS tarafından tanımlanan fermantasyon sırasında, Şekil S2: Biyoaktivitelerin (cilt hücresi etkisi ve antioksidan aktivite) ve pirincin korelasyon haritasıkojiile fermente edilmişaspergillus cristatusveyaA. oryzaePearson korelasyon katsayısına göre metabolitler. Her kare, Pearson korelasyon katsayısı değerlerini (r) gösterir.

Yazar Katkıları:Kavramsallaştırma, CL ve SL; metodoloji, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) ve JR; doğrulama, HL, SL ve SK (Seoyeon Kyung); resmi analiz, HL ve SK (Seoyeon Kyung); soruşturma, HL ve SL; kaynaklar, JR, SK (Seunghyun Kang) ve MP; yazma—orijinal taslak hazırlama, HL; yazma—inceleme ve düzenleme, HL ve SL; görselleştirme, HL; süpervizyon, SL ve CL; proje yönetimi, SK (Seunghyun Kang), MP ve CL; fon edinimi, CL Tüm yazarlar yayınlananel yazması versiyonu.

Finansman:Bu çalışma, Tarım, Gıda ve Kırsal Bakanlığı tarafından finanse edilen Tarımsal Mikrobiyom Ar-Ge Programı (Tarım ve Gıdada Mikrobiyomlar için Stratejik Girişim) aracılığıyla Kore Gıda, Tarım ve Ormancılıkta Teknoloji Planlama ve Değerlendirme Enstitüsü (IPET) tarafından desteklenmiştir. İşler(MAFRA) (Veri numarası 918011-04-3-HD020). Ayrıca bu çalışma, Tarım, Gıda ve Köyişleri Bakanlığı (MAFRA) tarafından finanse edilen Yüksek Katma Değerli Gıda Teknolojisi Geliştirme Programı aracılığıyla Kore Gıda, Tarım, Ormancılıkta Teknoloji Planlama ve Değerlendirme Enstitüsü (IPET) tarafından desteklenmiştir. (ver numarası 318027-04-3-HD030)

Veri Kullanılabilirliği Beyanı:Bu çalışmada sunulan veriler, istek üzerineilgili yazar

Teşekkür:Bu araştırma, Konkuk Üniversitesi Araştırmacı Fonu tarafından desteklenmiştir.2020.

Referanslar

1. Şanlıer, N.; Gökçen, BB; Sezgin, AC Fermente gıdaların sağlığa faydaları. kritik Rev. Gıda Bilimi Nutr. 2019, 59, 506–527. [ÇaprazRef]

2. Yu, K.-W.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Suh, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hwang, J.-H. Kore geleneksel meju'sundan izole edilmiş Aspergillus oryzae CJCM-4 kullanılarak pirinç koji hazırlama için optimizasyon. Gıda Bilimi Biyoteknoloji 2012, 21, 129–135. [ÇaprazRef]

3. Yang, Y.; Xia, Y.; Lin, X.; Wang, G.; Zhang, H.; Xiong, Z.; Yu, H.; Yu, J; Ai, L. Üstün etanol toleransı ve fermantasyon aktivitesi ile fermente edici maya oluşturarak Çin pirinç şarabındaki lezzet profillerinin iyileştirilmesi. Gıda Res. uluslararası 2018, 108, 83–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ichikawa, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Yazava, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Iwashita, K.; Hirata, D. Koji başlatıcının, sake pirinci Koshitanrei'den yapılan Japon alkollü içeceği sake'deki metabolitler üzerindeki etkisi. Biyosci. Biyoteknoloji biyokimya 2020, 84, 1714–1723. [ÇaprazRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Jay, M.; Sutthanut, K. Yerel bir Tayland çeşidi yapışkan siyah pirinç kepeği: İmmün modülasyon, hücre canlılığı ve kollajen sentezi ve matris metaloproteinaz -2 ve -9 inhibisyonunda fonksiyonel bileşiklerin kaynağı. J. İşlev. Yiyecekler 2014, 7, 650–661. [ÇaprazRef]

6. Kim, AJ; Choi, JN; Kim, J; Kim, HY; Park, SB; Yeo, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Metabolit profili ve Aspergillus suşları tarafından fermente edilmiş pirinç kojisinin biyoaktivitesi. J. Mikrobiyoloji. Biyoteknoloji 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Ames, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Oksidanlar, antioksidanlar ve yaşlanmanın dejeneratif hastalıkları. Proc. Natl. Acad. bilim ABD 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

8. Valko, M.; Leibfritz, D.; Moncol, J.; Kronin, MT; Mazur, M.; Telser, J. Normal fizyolojik fonksiyonlarda ve insan hastalığında serbest radikaller ve antioksidanlar. uluslararası J. Biochem. Hücre Biol. 2007, 39, 44–84. [ÇaprazRef]

9. Uttara, B.; Singh, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Oksidatif stres ve nörodejeneratif hastalıklar: Yukarı ve aşağı antioksidan terapötik seçeneklerin gözden geçirilmesi. Curr. Nörofarmakol. 2009, 7, 65–74. [ÇaprazRef]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-W. Aspergillus candidus ile fermente edilmiş pirinç kojisinin antioksidan aktivitesi ve aktif bileşikleri. Gıda Kimyası 2003, 83, 49–54. [ÇaprazRef]

11. Lee, DE; Lee, S.; Singh, D.; Jang, ES; Shin, HV; Ay, B.S; Lee, CH Kahverengi-, beyaz- ve dev embriyo-pirinç ile Koji fermantasyonu için zamana bağlı karşılaştırmalı metabolomlar. Gıda Kimyası 2017, 231, 258–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Jarrar, M.; Behl, S.; Şahin, N.; Fatıma, A.; Nasab, R. Retinol ve Alfa Hidroksi Asitin Yapay Olarak Foto-Yaşlandırılmış İnsan Dermal Fibroblast Hücre Hatlarının Elastin Lifleri Üzerinde Yaşlanma Karşıtı Etkileri. uluslararası J. Med Sağlık Biomed. eczane Müh. 2015, 7, 328.

13. Bolla, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, Başkan Yardımcısı; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; Yusuf, JP; Surapaneni, KM Aristolochia saccata'nın metanolik yaprak ekstraktının in vitro yara iyileştirme potansiyeline muhtemelen kollajen -1 ekspresyonu üzerindeki uyarıcı etkisi aracılık eder. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Schanzer, S.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Oral Olarak Alınan Karotenoid Açısından Zengin Kıvırcık Lahana Ekstresinin Cildin Kollajen I/Elastin İndeksi Üzerindeki Etkileri. Besinler 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Mecid, M.; Bhat, B.; Anand, S.; Sivakumar, A.; Paliwal, P.; Geetha, KG Normal insan dermal fibroblastlarında Phyllanthus emblica özütünün UV ile indüklenen ROS ve kollajen hasarının inhibisyonu. J. Kozmetik. bilim 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Mesud, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uwaya, A.; İsami, F.; Matsuda, H. Matrix metaloproteinase-1 Morinda citrifolia tohum ekstresinin ve UVA ışınlı insan dermal fibroblastlarındaki bileşenlerinin inhibitör aktiviteleri. Biol. eczane Boğa. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jung, S.-H.; Şarkı, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, CS-S. Fermente pirinç kepeği ekstraktının UV kaynaklı normal cilt fibroblastları üzerindeki anti-fotoyaşlanma etkisi. Avro. Gıda Res. Teknoloji 2010, 231, 163–169. [ÇaprazRef]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Pirinç antioksidanları: Fenolik asitler, flavonoidler, antosiyaninler, proantosiyanidinler, tokoferoller, tokotrienoller, -orizanol ve fitik asit. Gıda Bilimi Nutr. 2014, 2, 75–104. [ÇaprazRef]

19. Bechman, A.; Philips, RD; Chen, J. Fermantasyon ve depolama sırasında pirinç ve arpa koji'nin seçilen fiziksel özelliği ve enzim aktivitesindeki değişiklikler. J. Yiyecek. bilim 2012, 77, M318–M322. [ÇaprazRef]

20. Kang, D.; Sü, M.; Duan, Y.; Fuzhuan tuğla çayından potansiyel bir probiyotik mantar olan Huang, Y. Eurotium cristatum, bağırsak mikrobiyotasını modüle ederek farelerde obeziteyi hafifletti. Gıda İşlevi. 2019, 10, 5032–5045. [ÇaprazRef]

21. Zhao, P.; Alem, MB; Lee, SH MAPKs/Nrf aracılığıyla Fuzhuan-Tuğla Çayı Sulu Ekstraktı ile UVB Kaynaklı Fotoyaşlanmanın Korunması2- MMP'nin Aracılı Aşağı Düzenlemesi-1. Besinler 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Hur, SJ; Lee, SY; Kim, YÇ; Choi, I.; Kim, GB Fermantasyonun bitki bazlı gıdalarda antioksidan aktiviteye etkisi. Gıda Kimyası 2014, 160, 346–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huang, L.; Dong, M.-S. Bir HPLC-PDA-Üçlü-TOF-MS/MS-ABTS sistemi kullanılarak Eurotium cristatum ile fermente edilmiş Angelica dahurica'daki serbest radikal süpürücü bileşiklerin çevrimiçi taranması ve tanımlanması. Gıda Kimyası 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Lee, S.; Lee, DE; Singh, D.; Lee, CH Metabolomics, Pirinç Koji Fermentasyonuna Yönelik Optimal Tahıl Ön İşlemesini (Öğütme) Ortaya Çıkardı. J. Agric. Gıda Kimyası 2018, 66, 2694–2703. [ÇaprazRef]

Daha fazlasını iste:

E-posta:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: artı 86 15292862950