İnsan Böbrek Hastalıklarının Zebra Balığı Modellerini Oluşturma ve Değerlendirme Yöntemleri Bölüm 2

histolojik analiz

Mutantlar her zaman yeterince bilgilendirici morfolojik değişiklikler göstermeyebilir. Mutant ve vahşi tip hayvanlar arasındaki farkı belirlemek için yetişkinlerin bu embriyolarının veya organlarının histolojik analizi gerekli olabilir. Hem larva hem de yetişkin zebra balığı için histolojik analiz yöntemleri iyi oluşturulmuştur ve yüksek verimli bir şekilde gerçekleştirilebilir (Sabaliauskas ve diğerleri, 2006). Zebra balığı embriyoları veya yetişkin dokusu, doku mimarisini incelemek için parafin veya JB-4 reçinesine gömülebilir ve ardından mikrotomla kesit alınabilir (Sullivan-Brown ve diğerleri, 2011; Copper ve diğerleri, 2018). Kriyo-kesitleme, zebra balığı embriyolarıyla da yapılabilir (Ferguson ve Shive, 2019). Bu doku bölümleri daha sonra immünofloresan boyama, immünohistokimyasal çalışmalar veya H&E boyama için kullanılır. Yetişkin böbrek bölümlerinin H&E boyaması, proksimal tübülün apikal tarafının koyu pembe boyandığını ve geniş bir lümene sahip olduğunu, distal tübülün ise dar lümenli açık pembe bir lekeye sahip olduğunu ve böylece segmentler arasındaki diferansiyel boyama modelini açıkça işaretlediğini gösterdi ( McCampbell ve diğerleri, 2015). Dokulardaki polisakkaritleri tespit eden periyodik asit-Schiff (PAS) boyama tekniği, proksimal tübülün fırça kenarlı epiteline afiniteye sahiptir (McCampbell ve diğerleri, 2015; McKee ve Wingert, 2015). Metenamin gümüşü, bazal membranları boyar ve nefrik tübüller ve glomerül bazal membran boyama için kullanılabilir (McCampbell ve ark., 2015). Gentamisin saldırısı ile bir AKI zebra balığı modeli, epitelde düzleşme, apikal fırça sınırının kaybı, tübüler distansiyon ve lümende enkaz birikimi gösterdi, böylece zebra balığı hastalığı modellerini analiz etmede histolojinin yararlılığını vurguladı (Cianciolo Cosentino ve diğerleri, 2013) .

Son yıllarda böbrek hastalıklarının tedavisinde kök hücrelerin ve bir Çin bitkisel ilacının kullanımına yönelik araştırmalar büyük ilgi görmüştür. İki terapinin ana mekanizması, yaralı böbrek dokularının onarımını desteklemek ve böbrekleri korumaktır.kalan böbrek fonksiyonları.

Çin bitkisel ilacı olan cistanche, geleneksel Çin tıbbında çeşitli tedavilerde kullanılmıştır.kronik böbrek hastalıklarıeski zamanlardan beri. Sistinin iltihabı azaltma potansiyeline sahip olduğu,böbrek fibrozunu azaltmakve hücre dışı matris bileşenlerinin sentezini teşvik eder. Bu etkilerin, birçok fenolik madde, triterpenoidler ve kumarinler dahil olmak üzere biyoaktif bileşenlerinden kaynaklandığı ortaya çıkmıştır.

Öte yandan, kök hücre teknolojisi tıp pratiğinde bir devrime neden olmuştur. Araştırmalar, kök hücrelerin çeşitli tipte böbrek hücrelerine farklılaşabildiğini ve kalan işlevsel böbrek dokularını korumak, doku fibrozunu yavaşlatmak ve hasar görmüş dokuları onarmak dahil terapötik aktiviteler gerçekleştirebildiğini göstermiştir.böbrek dokuları.

Cistanche Nasıl Alınır'a tıklayın

Daha fazla bilgi için:

david.deng@wecistanche.com WhatsApp:86 13632399501

Nihayetinde, geleneksel Çin tıbbının modern bilimle birleşimi, çeşitli tedavilerin anahtarı olabilir.böbrek hastalıkları. Bu strateji, tıp camiası tarafından yavaş yavaş kabul edildi ve araştırmalar, kombine tedavinincistancheve kök hücre tedavisi, böbrek hastalıklarının ölüm oranını önemli ölçüde azaltabilir.

Sonuç olarak, kullanımıcistancheve böbrek hastalıklarının tedavisinde kök hücre tedavisi büyük bir potansiyel göstermekte ve daha fazla araştırma gerektirmektedir. İki tedavinin kombine tedavisi, böbrek hastalıklarıyla karşı karşıya olanlar için gelişmiş bir tedavi seçeneği sağlayabilir.

Pronephros segmentasyon kusurlarının tanımlanması

Pronefros, farklı işlevleri yerine getiren farklı segmentlere ayrılmıştır. Birçok transkripsiyon faktörü, segmentasyonun düzenleyicileri olarak tanımlanmış olmasına rağmen, bu segmentasyonun arkasındaki mekanizma tam olarak anlaşılamamıştır. Segmental paterndeki farklılıklar, pronefrosun farklı segmentlerini özel olarak işaretleyen riboproblarla WISH analizi ile kolayca belirlenebilir. Pronephros segmentlerinin tam konumu, segmente özgü işaretleyicilerin çift in situ hibridizasyonu ve somiti işaretleyen bir antisens riboprob (smyhc1 ve xirp2a gibi) uygulanarak işaretlenebilir. Segmente özgü en yaygın belirteçler PCT için slc20a1a, PST için trpm7, DE için slc12a1, CS için stc1 ve DL için slc12a3'tür (Şekil 2). İnsan HNF1b'deki mutasyonlar, böbrek displazisi, glomerülokistik böbrek, oligomeganefroni ve soliter işleyen böbrek gibi böbrek anormallikleri ile bağlantılıdır (Lindner, 1999; Bingham ve diğerleri, 2002; Bohn ve diğerleri, 2003). Naylor ve diğerleri, (2013), segmente özgü işaretleyici genler kullanarak hnf1b nakavt zebra balığı embriyolarında WISH ile pronefros segmentasyonunu analiz etti ve mutantlarda proksimal ve distal tübül işaretleyicilerinin bulunmadığını buldu. Benzer deneyler kullanılarak, boş spiracles homeobox gen 1'in (emx1) transkripsiyon faktörünün nefrogenez sırasında distal geç kaderi desteklediği ve distal erken kaderi engellediği bulundu (Morales ve diğerleri, 2018). Wingert ve diğerleri, (2007) RA ve DEAB ile tedavi edilen embriyoların bir WISH analizini gerçekleştirdi ve DEAB tedavisinin proksimal segmentlerde kayıp ve distal segmentlerde genişleme ile sonuçlandığını, ekzojen RA tedavisinin ise bu fenotipi tersine çevirdiğini buldu. Ayrıca nefron pozisyonunu ve segmentasyonunu düzenlemede kaudal transkripsiyon faktörü (cdx) ile RA arasında bir bağlantı kurmuşlardır (Wingert ve diğerleri, 2007). 2 (efhc2) demonte içeren EF-el alanının distal erken segmentlerin genişlemesine ve CS ve distal geç segmentlerin azalmasına neden olduğunu gösterdik. Pronefrik tübüllerin çok kirpikli hücrelerini işaretleyen odf3'ün ifadesi, efhc2 morfantlarında da azaldı (Barrodia ve diğerleri, 2018).

Pronefrik kirpik boyama ve görüntüleme

Kirpikler, hareketli veya hareketsiz olan mikrotübül tabanlı organellerdir. Kirpiklerin yapısındaki ve işlevindeki kusurlardan kaynaklanan insan bozukluklarına siliopatiler denir. Zebra balığı pronefrolarında bulunan kirpiklerdeki kusurlar genellikle vücut kıvrılmasına, kist oluşumuna ve tübül genişlemesine yol açar (Sullivan-Brown ve diğerleri, 2008). Zebra balığı pronefrolarında bulunan çoğalmış hücreler, antisens odf3b veya rfx2 riboprobları kullanılarak WISH veya floresan in situ hibridizasyon (FISH) ile görüntülenebilir (Liu ve diğerleri, 2007; Barrodia ve diğerleri, 2018). Zebra balığı embriyolarındaki kirpikler, a-asetillenmiş tübülin kullanılarak boyanabilir ve bazal gövdeleri işaretlemek için g-tübülin kullanılabilir (Jaffe ve diğerleri, 2010; Zaghloul ve Katsanis 2011). Hareketli kirpiklerin hareketi, Tg(Foxj1a: GFP) gibi transgenik zebra balığı kullanılarak yüksek hızlı kameralı bir mikroskop kullanılarak kaydedilebilir (Tavares ve diğerleri, 2017). Çoğaltılmış hücreleri, kirpikleri ve bazal gövdeleri işaretlemek için kombine bir FISH ve immün floresan testi tekniği geliştirilmiştir (Marra ve diğerleri, 2017). Locke, swt ve curly gibi kirpik kusurlarına sahip farklı zebra balığı mutantları ayrıntılı olarak incelenmiş ve bir dizi kirpik hareket kusuru gösterdikleri bulunmuştur (Sullivan-Brown ve diğerleri, 2008). Siliyer hareket Locke mutantında azaldı ve silyalar swt'de hareketsizdi, oysa kıvırcıktaki silya hareketleri hareketsizden düzensiz kaymalara kadar değişiyordu. a-asetillenmiş tübülin ile immün boyama, silyaların uzunluğunun swt ve kıvırcıkta normal olduğunu, oysa locke'un daha kısa silyalar gösterdiğini gösterdi (Sullivan-Brown ve diğerleri, 2008). Burada açıklanan yöntemler, kirpikleri içeren böbrek hastalıklarında kirpik kusurlarını belirlemek için yaygın olarak kullanılmıştır.

Glomerulus fonksiyonunun değerlendirilmesi

Böbreğin temel işlevi, idrarla makromoleküllerin kaybını önlerken, kanı süzmek ve vücuttaki atıkları ve fazla sıvıları uzaklaştırmaktır. Glomerulus, 5 kDa'lık molekülleri filtreleyebilir, ancak serum albümini gibi daha büyük moleküllerin atılmasına izin vermez (Chang ve diğerleri, 1976). İnsanlarda böbrek fonksiyon bozukluğunu değerlendirmek için yaygın olarak kullanılan teşhis yöntemleri, küçük boyutlarından dolayı zebra balıklarına uygulanamaz. Bununla birlikte, insan böbreğinin yaygın olarak karşılaştığı molekülleri taklit eden farklı moleküler ağırlıklara sahip flüoresan boyalar zebra balığına enjekte edilebilir ve bunların temizlenmesinin veya tutulmasının değerlendirilmesi, böbrek fonksiyonunu belirlemek için bir vekil olarak kullanılabilir (Christou-Savina ve diğerleri, 2015). ). Zebra balığı embriyolarının perikardiyal boşluğuna 10 kDa flüoresan dekstran enjeksiyonunun, enjeksiyondan sonraki 24 saat içinde (HPI) böbrekten sekresyon yoluyla boyanın yaklaşık yüzde 85'inin kaybına neden olduğu kanıtlanmıştır (HPI) (Christou-Savina et al. , 2015). 70 kDa veya üzeri gibi daha yüksek moleküler ağırlığa sahip boyaların damar sistemine enjeksiyonu gerekir ve vahşi tip embriyolarda tutulur. Bununla birlikte, 70 kDa dekstran, sistinoz (ctn) mutant zebra balığının vaskülatürüne enjekte edildiğinde proksimal tübül duvarında tespit edilebilir; bu, glomerulus filtre yarıklarının bütünlüğünün cents-/- larvalarında tehlikeye girdiğini gösterir (Elmonem ve diğerleri, 2017) . Kramer-Zucker ve diğerleri, (2005) 84 hpf yabani tip ve nefrin ve podosin morfant zebra balığı embriyolarının kardinal damarına 500 kDa FITC-dekstran enjekte etmiş ve pronefroslarda bu morfantlarda nefronların işlev bozukluğuna işaret eden boyayı saptamıştır.

Metabolitlerin yeniden emiliminin değerlendirilmesi

Transmembran endositik reseptör megalin/LRP2, adaptörü devre dışı2 (dab2) ve koruyucu Dublin, glomerüler filtrattan metabolitlerin endositoz aracılı klerensinde merkezi bir rol oynar (Anzenberger, 2006). Zebra balığı embriyolarının kan dolaşımında megalin/LRP2 ile fiziksel olarak birleşen bir protein olan 70 kDa floresan etiketli dekstran veya floresan konjuge reseptörle ilişkili protein (RAP) enjeksiyonu, bu moleküllerin yeniden emilim için alınmasına yol açar. Bu, böbreğin metabolit yeniden emilim fonksiyonunu değerlendirmek için uygun bir yöntem olarak hizmet eder. Metabolitlerin yeniden emilmesindeki merkezi rolleriyle uyumlu olarak, megalin/LRP2 veya dab2'nin yıkılması, morfantlarda izleyicilerin reseptör aracılı endositik alımında tam bir başarısızlığa yol açar (Anzenberger, 2006).

Tübül genişlemesinin değerlendirilmesi

Pronefrik tübül, tek bir polarize epitel hücreleri tabakası ile kaplanmıştır. Pronefrik tübülün morfolojisi ve patının farklı segmentlere dönüşmesi, distal uca yakın farklılaşmış epitel hücrelerinin proliferasyonu ve glomerulusa doğru göçü ile kontrol edilir. Bu olaylar sırasıyla pronefrosta akan sıvı tarafından yönetilir ve böylece organ morfolojisi ve işlevi arasında bir korelasyon sağlar (Vasilyev ve diğerleri, 2009). Proksimal uçtaki hücreler kıvrık ve daha sütunlu, distal uçtaki hücreler ise küboidaldir (Vasilyev ve ark., 2009). Glomerüler filtrasyon hızındaki azalma, tübüldeki tıkanıklık veya silia gelişimi ve hareketliliğindeki kusurlar, arkadan öne doğru bu kollektif hücre göçünü engeller. Ancak distal uçtaki hücreler çoğalmaya devam ederek pronefrik tübüllerin genişlemesine neden olur (Naylor ve Davidson, 2017). Tübül dilatasyonu, tüm embriyoları doğrudan mikroskop altında gözlemleyerek veya histolojik analiz yoluyla değerlendirilebilir. DIC optiği, zebra balığı embriyolarının pronefrik tübülünün çapını görüntülemek ve hesaplamak için kullanılabilir. Sullivan-Brown ve diğerleri, (2008), kirpiklerde kusurları olan vahşi tip ve kıvırcık mutantlarda tübül genişlemesini karşılaştırdı ve vahşi tipte medial tübülün arka tübül ile karşılaştırıldığında daha büyük bir çapa sahip olduğunu ve çapının medial tübüller zamanla azaldı. Kıvırcık mutantlarda, medial ve posterior tübüllerin çapı, 26-30 hpf'de vahşi tipe benzerdi, ancak bu mutantlarda 48 hpf'den itibaren medial tübül çapında sabit bir artış gözlendi. Ayrıca mutant embriyolarda medial tübülü çevreleyen hücre sayısının da arttığı gözlenmiştir (Sullivan-Brown ve ark., 2008). İnsan MNX1 (motor nöron ve pankreas homeobox 1) genindeki mutasyonlar, sakral agenezi ve at nalı böbrek, tek böbrek, hidronefroz ve anorektal stenoz gibi ürogenital ve renal anormallikler ile karakterize nadir bir konjenital hastalık olan Currarino sendromuna neden olur (Currarino ve ark., 1981; Lee ve diğerleri, 2018; Dworschak ve diğerleri, 2021). Ott ve diğerleri, (2016), gelişmekte olan pronefroslarda bir Tg(-8cldnb.1:lynEGFP)zf106 arka plandan görüntüye epitel hücrelerinde mnx2b morfantları üretti ve morfantların vahşi tübüllere kıyasla genişlemiş proksimal tübül çapları gösterdiğini buldu. -tip kontrolleri 4 pdf'de. Daha ileri analizler, bu morfantların böbrek fonksiyonlarını değiştirdiğini, düzensiz pronefrik kirpikleri ve deforme olmuş apikal mikrovillusları ortaya çıkardı (Ott ve diğerleri, 2016). Zebra balığı kullanılarak yapılan bu tür analizler, şüphesiz insan hastalıklarının altında yatan mekanizmayı anlamamıza yardımcı olacaktır.

Epitel hücrelerinin polaritesinin değerlendirilmesi

Epitel hücrelerinin pronefrik tübül polaritesi, hücre zarını apikal ve bazolateral alanlara ayıran ve salgılama, filtrasyon, absorpsiyon ve duyusal uyarım gibi spesifik işlevler için zar alt alanlarını düzenleyen protein kompleksleri tarafından korunur (Pieczynski ve Margolis, 2011). Çeşitli reseptörlerin, taşıyıcıların ve kanalların yer değiştirmesi, PKD'de Na artı K artı -ATPase, Na artı K artı 2Cl− yardımcı taşıyıcı ve EGFR ve Dent hastalığında H artı -ATPaz gibi birçok hastalık koşulunda tanımlanmıştır (Wilson, 2011) . Epitel hücrelerinin polaritesi, Na artı /K artı -ATPase'e karşı bir antikor, sıkı bağlantı işaretleyici ZO-1 veya alkalin fosfataz (AP) kullanılarak tüm embriyoların immünofloresan boyamasıyla kontrol edilebilir. vahşi tip embriyolarla karşılaştırıldığında mutantlarda tübül epiteli. Na artı /K artı -ATPase, sodyum-potasyum homeostazını koruyan ve epitel hücrelerinde bulunan diğer taşıyıcıların fonksiyonlarını düzenleyen, tübüler epitel hücrelerinde en bol bulunan proteinlerden biridir (Fernández ve Malnic, 1998). Bazolateral plazma zarına lokalizedir ve epitel hücre polarizasyonu ve sıkı bağlantıların oluşumu ve sürdürülmesi için önemlidir (Rajasekaran ve diğerleri, 2001). ZO-1 ve AP, pronefrik epitel hücrelerinin apikal yüzeylerini işaretlemek için kullanılır. Drummond ve diğerleri, (1998) pronefrosta hafif ila şiddetli kusura sahip bir grup mutantı analiz etti. Anti-Na artı /K artı -ATPase alfa alt birimi monoklonal antikor (a6F) ile immünofloresan boyama ve ardından doku kesiti ile 2.5 pdf embriyolardaki epitel hücrelerinin polaritesini kontrol ettiler. Bu analiz, Na artı /K artı -ATPase lokalizasyonunun, normal bazolateral ifadesine kıyasla mutant çizgilerin çoğunda değiştiğini gösterdi. Double bubble (bb) ve fler (flr) mutantlarında, apikal yüzeyde Na+/K+-ATPase ifade edilirken, bazolateral yüzeyde azalmış boyanma görüldü. Diğer mutantlar, boyanmamış apikal ve bazolateral yüzeylerle daha çok yanal boyanmaya sahipti (Drumond ve diğerleri, 1998).

böbrek taşı tespiti

Böbrek taşları, kalsiyum taşlarının en yaygın olduğu biriken tuz kristalleridir (Evan, 2010). Bunlar farklı oranlarda kalsiyum oksalat (CaOx) ve kalsiyum fosfattan (CaP) oluşur. Değişmiş kalsiyum homeostazına sahip zebra balığı mutantlarında kalsiyum taşları beklenebilir. Zebra balığı larvalarında kalsiyum içeren dokuları ve böbrek taşlarını tespit etmek için Alizarin kırmızısı (kırmızı floresan) ve Calcein (yeşil floresan) gibi hayati boyalar kullanılabilir. Elizondo ve diğerleri, (2010), trpm7 homozigot mutant embriyoların yüzde 57 - 97'inin 5 dpf'de böbrek taşı geliştirdiğini, oysa vahşi tip kardeşlerin yalnızca yüzde 0-1.4'ünün bu tür taşları geliştirdiğini gösterdi. Alizarin kırmızısı ile boyanmış trpm7 homozigot mutant embriyoların farklı zaman noktalarında görüntülenmesi, 2-4 dpf embriyolarında hiç taş olmadığını ve taşların pronefrik tübül epitelinde değil lümende 5 dpf'de gözlendiğini gösterdi (Elizondo ve ark. ., 2010).

Sonuçlar ve beklentiler

Böbrek hastalıklarının insidansı dünya çapında endişe verici bir oranda artıyor. Bu hastalıkların nedenlerinin belirlenmesine, teşhis ve tedavilerine yönelik yeni yöntemlerin geliştirilmesine acilen ihtiyaç duyulmaktadır. Memeli metanefrik böbreği karmaşıktır ve böbrek hastalığı patolojisini anlamayı zorlaştırır. Zebra balığı larvalarındaki pronefros fonksiyoneldir ve notokordun her iki tarafında, anteriorda ortak bir glomerulus ve posterior uçta bir kloaka ile birlikte sadece iki nefron vardır. Bu derlemede, insan böbrek hastalıklarının zebra balığı modellerini oluşturmak için kullanılabilecek çeşitli yöntemleri ve bu hastalık modellerinin fenotipinin morfolojik, hücresel ve moleküler seviyelerde nasıl analiz edileceğini tartıştık. Birçok grup tarafından yapılan özenli araştırmalar, yıllar içinde bu hastalık modeli oluşturma ve analiz yöntemlerini oluşturmuştur. Bu çabalar, zebra balığı embriyolarının ve yetişkinlerinin, insanlarda görülen böbrek fonksiyon bozukluğunun çeşitli yönlerini aslına sadık bir şekilde özetleyebilen insan böbrek hastalığı modelleri olarak kullanılabileceğini ortaya koymuştur. Bu çabalar ayrıca, mutant ve transgenik hatlar da dahil olmak üzere birçok faydalı araç ve kaynak üretmiştir. Bu, yalnızca zebra balığı kullanarak böbrek hastalığı mekanizmalarını anlamak için değil, aynı zamanda onları böbrek hastalıklarını tedavi etmek için yeni ilaçlar keşfetmek için kullanmak için bir fırsat sunar. Diyabet, insanlarda böbrekle ilgili komplikasyonlara önemli bir katkıda bulunur. Zebra balığı, diyabetle ilişkili böbrek fonksiyon bozukluğunun da çalışılabileceği bir fırsat sunmaktadır (Jör gens ve ark., 2012). Bu nedenle, zebra balığı bir hastalık modeli olarak mükemmel bir temele sahiptir ve insan hastalıklarına yeni çözümler bulmak için muazzam bir potansiyel sunar.

teşekkürler

Tartışmaları ve yorumları için Tarique Anwar ve Supriya Borah'a teşekkür ederiz. SF, DBT (DBT/2015/ILS/361) alıcısıdır ve UR, DST-Inspire bursunun alıcısıdır. RKS laboratuvarındaki araştırma, SERB-EMR (EMR/2016/003780) ve Hindistan Hükümeti DBT'nin özerk bir enstitüsü olan ILS'nin şirket içi fonları tarafından desteklenmektedir.

yazar katkısı

SF ilk taslağı tasarladı ve yazdı. BM ve RKS el yazmasını tartıştı ve değiştirdi.

Referanslar

1. AMSTERDAM A, BURGESS S, GOLLING G, CHEN W, SUN Z, TOWNSEND K, FARRINGTON S, HALDI M, HOPKINS N (1999). Zebra balığında büyük ölçekli bir eklemeli mutajenez ekranı. Gen Dev 13: 2713–2724.

2.ANZENBERGER U (2006). Larva zebra balığı pronefrosunda megalin/LRP2-bağımlı endositik taşıma işlemlerinin açıklanması. J Cell Sci 119: 2127–2137.

3.BARRODIA P, PATRA C, SWAIN RK (2018). 2 (Efhc2) içeren EF-el alanı, zebra balığı pronephros'un distal segmentasyonu için çok önemlidir. Hücre Biyosci 8: 53.

4.BEGEMANN G, SCHILLING TF, RAUCH GJ, GEISLER R, INGHAM PW (2001). Zebra balığı boyunsuz mutasyonu, arka beyni şekillendiren mezodermal sinyallerde raldh2 için bir gereksinim olduğunu ortaya koymaktadır. Geliştirme 128: 3081–3094.

5. BIKBOV B, PURCELL CA, LEVEY AS, SMITH M, ABDOLI A, ABEBE M, ADEBAYO OM, AFARIDEH M, AGARWAL SK, AGUDELO-BOTERO M, ve diğerleri, (2020). Küresel, bölgesel ve ulusal kronik böbrek hastalığı yükü, 1990–2017: Küresel Hastalık Yükü Çalışması 2017 için sistematik bir analiz. Lancet 395: 709–733.

6.BILL BR, PETZOLD AM, CLARK KJ, SCHIMMENTI LA, EKKER SC (2009). Zebra balığında morfolino kullanımı için bir astar. Zebra balığı 6: 69–77.

7. BINGHAM C, ELLARD S, COLE TRP, JONES KE, ALLEN LIS, GOODSHIP JA, GOODSHIP THJ, BAKALINOVA-PUGH D, RUSSELL GI, WOOLF AS, NICHOLLS AJ, HATTERSLEY AT (2002). Hepatosit nükleer faktör-1b mutasyonları ile ilişkili soliter işleyen böbrek ve çeşitli genital sistem malformasyonları. Kidney Int 61: 1243–1251.

8.BOCH J, BONAS U (2010). Xanthomonas AvrBs3 Aile Tipi III Efektörler: Keşif ve İşlev. Annu Rev Phytopathol 48: 419–436.

9.BOHN S, THOMAS H, TURAN G, ELLARD S, BINGHAM C, HATTERSLEY AT, RYFFEL GU (2003). İnsan HNF1b Geninde Kusurlu Böbrek Gelişimine Yol Açan Mutasyonların Belirgin Moleküler ve Morfogenetik Özellikleri. J Am Soc Nephrol 14: 2033–2041.

10.CANTAGREL V, SILHAVY JL, BIELAS SL, SWISTUN D, MARSH SE, BERTRAND JY, AUDOLLENT S, ATTIÉ-BITACH T, HOLDEN KR, DOBYNS WB, ve diğerleri, (2008). Kirpikler Geni ARL13B'deki Mutasyonlar Joubert Sendromunun Klasik Formuna Yol Açar. Am J Hum Genet 83: 170–179.

11.CAO Y, SEMANCHIK N, LEE SH, SOMLO S, BARBANO PE, COIFMAN R, SUN Z (2009). Kimyasal düzenleyici ekranı, HDAC inhibitörlerini PKD modellerinin baskılayıcıları olarak tanımlar. Proc Natl Acad Sci 106: 21819–21824.

12. CARNEY EF (2020). Kronik böbrek hastalığının küresel sağlık üzerindeki etkisi. Nat Rev Nefrol 16: 251–251.

13. ODALAR BE, WINGERT RA (2016). Renal progenitörler: Böbrek hastalığı ve rejenerasyondaki roller. Dünya J Kök Hücreleri 8: 367–375.

14. CHANG RLS, DEEN WM, ROBERTSON CR, BENNETT CM, GLASSOCK RJ, BRENNER BM, TROY JL, UEKI IF, RASMUSSEN B (1976). Glomerüler kılcal duvarın geçirgenliği. Sıçanlarda nötr dekstran kullanılarak deneysel glomerülonefrit çalışmaları. J Clin Invest 57: 1272–1286.

15. CHRISTOU-SAVINA S, BEALES PL, OSBORN DPS (2015). Bir Floresan Klerans Testi Kullanılarak Zebra Balığı Böbrek Fonksiyonunun Değerlendirilmesi. J Vis Exp 96: e52540.

16.CIANCIOLO COSENTINO C, ROMAN BL, DRUMMOND IA, HUKRIEDE NA (2010). Akut Böbrek Hasarını İncelemek İçin Zebra Balığı Larvalarının İntravenöz Mikroenjeksiyonları. J Vis Exp 42: e2079.

17.CIANCIOLO COSENTINO C, SKRYPNYK NI, BRILLI LL, CHIBA T, NOVITSKAYA T, WOODS C, WEST J, KOROTCHENKO VN, MCDERMOTT L, DAY BW, DAVID SON AJ, HARRIS RC, DE CAESTECKER MP, HUKRIEDE NA (2013). Histon Deasetilaz İnhibitörü ABH'den Sonra İyileşmeyi Artırır. J Am Soc Nephrol 24: 943–953.

18. COPPER JE, BUDGEON LR, FOUTZ CA, VAN ROSSUM DB, VANSELOW DJ, HUBLEY MJ, CLARK DP, MANDRELL DT, CHENG KC (2018). Zebra balığının optimize edilmiş histolojik hazırlanması için fiksasyon ve gömme tekniklerinin karşılaştırmalı analizi.

19. Comp Biochem Physiol Part C Toxicol Pharmacol 208: 38–46. CREWS DC, BELLO AK, SAADI G (2019). Böbrek hastalığında yük, erişim ve eşitsizlikler. Rev Nefrol Dial y Traspl 39: 1–11.

20.CURADO S, STAINIER DYR, ANDERSON RM (2008). Zebra balığında nitroredüktaz aracılı hücre / doku ablasyonu: gelişimsel ve rejenerasyon çalışmalarında uygulamaları olan, mekansal ve geçici olarak kontrol edilen bir ablasyon yöntemi. Nat Protokolü 3: 948–954.

21.CURRARINO G, COLN D, VOTTELER T (1981). Anorektal, sakral ve presakral anomalilerin üçlüsü. Am J Roentgenol 137: 395–398.

22.DESGRANGE A, CEREGHINI S (2015). Nephron Modelleme: Xenopus, Zebrafish ve Fare Çalışmalarından Alınan Dersler. Hücreler 4: 483–499.

23.DIEP CQ, MA D, DEO RC, HOLM TM, NAYLOR RW, ARORA N, WINGERT RA, BOLLIG F, DJORDJEVIC G, LICHMAN B, ZHU H, IKENAGA T, ONO F, ENGLERT C, COWAN CA, HUKRIEDE NA, HANDIN RI, DAVIDSON AJ (2011). Zebra balığında böbrek rejenerasyonu yapabilen yetişkin nefron progenitörlerinin belirlenmesi. Doğa 470: 95–100.

24.DIEP CQ, PENG Z, UKAH TK, KELLY PM, DAIGLE RV., DAVIDSON AJ (2015). Zebra balığı mezonefrosunun gelişimi. yaratılış 53: 257–269.

25. DRUMMOND I (2003). Zebra balığı böbreği yapmak: iki tüpün hikayesi. Trendler Cell Biol 13: 357–365.

26.DRUMMOND IA, MAJUMDAR A, HENTSCHEL H, ELGER M, SOLNICA-KREZEL L, SCHIER AF, NEUHAUSS SCF, STEMPLE DL, ZWARTKRUIS F, RANGINI Z, DRIEVER W, FISHMAN MC (1998). Zebra balığı pronefrolarının erken gelişimi ve pronefrik işlevi etkileyen mutasyonların analizi. Geliştirme 125: 4655–4667.

27.DWORSCHAK GC, REUTTER HM, LUDWIG M (2021). Currarino sendromu: Nadir bir konjenital bozukluğun kapsamlı bir genetik incelemesi. Orphanet J Rare Dis 16: 167.

28. EISEN JS, SMITH JC (2008). Morfolino deneylerini kontrol etmek: saçmalamayı bırakmayın. Geliştirme 135: 1735–1743.

29.EL-BROLOSY MA, STAINIER DYR (2017). Genetik telafi: Mekanizma arayışında bir fenomen Ed. C Moens. PLOS Genet 13: e1006780.

30.ELIZONDO MR, BUDI EH, PARICHY DM (2010). Trpm7 İn vivo Katyon Homeostazının ve Böbrek Fonksiyonunun Düzenlenmesi Stanniocalcin 1 ve Fgf23'ü içerir. Endokrinoloji 151: 5700–5709.

31.ELMONEM M, BERLINGERIO S, VAN DEN HEUVEL L, DE WITTE P, LOWE M, LEVTCHENKO E (2018). Genetik Böbrek Hastalıkları: Zebra Balığı Modellerinin Ortaya Çıkan Rolü. Hücreler 7: 130.

32. ELMONEM MA, KHALIL R, KHODAPARAST L, KHODAPARAST L, ARCOLINO FO, MORGAN J, PASTORE A, Tylzanowski P, NY A, LOWE M, DE WITTE PA, BAELDE HJ, VAN DEN HEUVEL LP, LEVTCHENKO E (2017). Cystinosis (ctn's) zebra balığı mutantı, pronefrik glomerüler ve tübüler disfonksiyon gösterir. Sci Rep 7: 42583.

33.ENE-IORDACHE B, PERICO N, BIKBOV B, CARMINATI S, REMUZZI A, PERNA A, ISLAM N, BRAVO RF, ALECKOVIC-HALILOVIC M, ZOU H, vd., (2016). Dünyanın altı bölgesinde kronik böbrek hastalığı ve kardiyovasküler risk (ISN-KDDC): kesitsel bir çalışma. Lancet Glob Heal 4: e307–e319.

34. EVAN AP (2010). Böbrek ve idrar yollarında taş oluşumunun fizyopatolojisi ve etiyolojisi. Pediatr Nefrol 25: 831–841.

35. FERGUSON JL, SHIVE HR (2019). Cryosectioned Zebrafish Embriyolarında Sıralı İmmünofloresan ve İmmünohistokimya. J Vis Exp 147: e59344.

36.FERNÁNDEZ R, MALNIC G (1998). H artı ATPaz ve Cl - MDCK Hücre pH'ının Düzenlenmesinde Etkileşim. J Membr Biol 163: 137–145.

37. FOREMAN KJ, MARQUEZ N, DOLGERT A, FUKUTAKI K, FULLMAN N, McGaughey M, PLETCHER MA, SMITH AE, TANG K, YUAN CW, ve diğerleri, (2018). 250 ölüm nedeni için ortalama yaşam süresi, kaybedilen yaşam yılları ve tüm nedenlere ve nedenlere özgü ölüm tahmini: 195 ülke ve bölge için 2016-40 için referans ve alternatif senaryolar. Lancet 392: 2052–2090. 38.GELDSETZER P, MANNE-GOEHLER J, THEILMANN M, DAVIES JI, AWASTHI A, VOLLMER S, JAACKS LM, BÄRNIGHAUSEN T, ATUN R (2018). Hindistan'da Diyabet ve Hipertansiyon. JAMA Intern Med 178: 363.

39.HANKE N, STAGGS L, SCHRODER P, LITTERAL J, FLEIG S, KAUFELD J, PAULI C, HALLER H, SCHIFFER M (2013). Glomerüler Filtrasyon Bariyeriyle İlgili Yeni Genler için "Zebra avcılığı". Biomed Res Int 2013: 1–12.

40. HELLMAN NE, LIU Y, MERKEL E, AUSTIN C, LE CORRE S, BEIER DR, SUN Z, SHARMAN, YODER BK, DRUMMOND IA(2010). Zebra balığı foxj1a transkripsiyon faktörü, yaralanma ve epitelyal gerilmeye yanıt olarak silia fonksiyonunu düzenler. Proc Natl Acad Sci USA 107: 18499–18504.

41.HENTSCHELDM,PARKKM,CILENTIL,ZERVOSAS,DRUMMONDI,BONVENTRE JV. (2005). Zebra balığında akut böbrek yetmezliği: karmaşık bir hastalığı incelemek için yeni bir sistem. Am J Physiol Physiol 288: F923–F929.

42. HILL NR, FATOBA ST, OKE JL, HIRST JA, O'CALLAGHAN CA, LASSERSON DS, HOBBSFDR(2016).GlobalPrevalenceofChronicBidneyDisease–ASystematic Review and Meta-Analysis Ed. G Remuzzi. PLoS Bir 11: e0158765.

43. HOWE K, CLARK MD, TORROJA CF, TORRANCE J, BERTHELOT C, Muffato M, COLLINS JE, HUMPHREY S, MCLAREN K, MATTHEWS L, ve diğerleri, (2013). Zebra balığı referans genom dizisi ve bunun insan genomuyla ilişkisi. Doğa 496: 498–503.

44. JAFFE KM, THIBERGE SY, BISHER ME, BURDINE RD (2010). Zebra balığında Kirpiklerin Görüntülenmesi. Methods in Cell Biology'de (Ed. Cassimeris L, Tran P). Cilt 97. Academic Press, s. 415-435.

45. JAIN S (2014). Böbrek Gelişimi ve İlgili Anomaliler. İnsan Hastalığının Patobiyolojisi Elsevier'de, s. 2701–2715.

46. ​​JHA V, GARCIA-GARCIA G, ISEKI K, LI Z, NAICKER S, PLATTNER B, SARAN R, WANG AYM, YANG CW (2013). Kronik böbrek hastalığı: Küresel boyut ve perspektifler. Lancet 382: 260–272.

47.JOBST-SCHWAN T, HOOGSTRATEN CA, KOLVENBACH CM, SCHMIDT JM, KOLB A, EDDY K, SCHNEIDER R, ASHRAF S, WIDMEIER E, MAJMUNDAR AJ, HILDEBRANDT F (2019). Kortikosteroid tedavisi, zebra balığı magi2a nakavt modelinde nefrotik sendromu şiddetlendirir. Kidney Int 95: 1079–1090.

48.JOHNSON CS, HOLZEMER NF, WINGERT RA (2011). Renal Epitel Rejenerasyonunu İncelemek İçin Zebra Balığı Pronephros'un Lazerle Ablasyonu. J Vis Exp 54: 2845.

49.JÖRGENS K, HILLEBRANDS JL, HAMMES HP, KROLL J (2012). Zebra balığı: Diyabetik Komplikasyonları Anlamak İçin Bir Model. Exp Clin Endocrinol Diabetes 120: 186–187.

50.KAMEI CN, LIU Y, DRUMMOND IA (2015). Yetişkin Zebrabalıklarında Gentamisin Kaynaklı Yaralanma ile Böbrek Rejenerasyonu. J Vis Exp 102: e51912.

51.KAUFMAN CK, BEYAZ RM, ZON L (2009). Zebra balığı embriyosunda kimyasal genetik tarama. Nat Protokolü 4: 1422–1432.

52.KAWASUMI M, NGHIEM P (2007). Kimyasal Genetik: Biyolojik Sistemleri Küçük Moleküllü Bileşiklerle Açıklamak. J Invest Dermatol 127: 1577–1584.

53.KİM BH, ZHANG GJ (2020). Birden fazla gRNA kullanarak büyük kromozomal fragmanları silerek stabil nakavt zebra balığı çizgileri oluşturmak. G3 Genleri, Genomlar, Genet 10: 1029–1037.

54.KRAMER-ZUCKER AG (2005). Normal organogenez için zebra balığı pronephros, beyin ve Kupffer'ın vezikülünde kirpikler tarafından yönlendirilen sıvı akışı gereklidir. Geliştirme 132: 1907–1921.

55.KRAMER-ZUCKER AG, WIESSNER S, JENSEN AM, DRUMMOND IA (2005). Zebra balığındaki pronefrik filtrasyon aparatının organizasyonu, Nephrin, Podocin ve FERM alan proteini Mozaik gözler gerektirir. Dev Biol 285: 316–329.

56. KRISHNAMURTHY VG (1976). Stannius Corpuscles'in Sitofizyolojisi. Int Rev Cytol 46: 177–249.

57. KROEGER PT, DRUMMOND BE, MICELI R, MCKERNAN M, GERLACH GF, MARRA AN, FOX A, MCCAMPBELL KK, LESHCHINER I, RODRIGUEZ-MARI A, BREMILLER R, THUMMEL R, DAVIDSON AJ, POSTLETHWAIT J, GOESSLING W, WINGERT RA (2017). Zebra balığı böbrek mutant zeplini, brca2/fancd1'in pronefros gelişimi için gerekli olduğunu ortaya koymaktadır. Dev Biol 428: 148–163.

58. LAWSON ND, WOLFE SA (2011). Zebra Balığında Omurgalı Gelişiminin Analizi İçin İleri ve Geri Genetik Yaklaşımlar. Geliştirici Hücresi 21: 48–64.

59. LEE S, KIM EJ, CHO SI, PARK H, SEO SH, SEONG MW, PARK SS, JUNG SE, LEE SC, PARK KW, KIM HY (2018). Currarino Sendromlu Koreli Hastalarda MNX1 Patojenik Varyantlarının Spektrumu ve İlişkili Klinik Özellikler. Ann Lab Med 38: 242–248.

60. LEVEY AS, ASTOR BC, STEVENS LA, CORESH J (2010). Kronik böbrek hastalığı, diyabet ve hipertansiyon: Bir isimde ne var? Böbrek Bölüm 78: 19–22.

61.LINDNER TH, NJOLSTAD PR, HORIKAWA Y, BOSTAD L, BELL GI, SOVIK O (1999). Hepatosit nükleer faktör-1beta'nın psödo-POU bölgesinin kısmen silinmesiyle ilişkili yeni bir diabetes mellitus, böbrek fonksiyon bozukluğu ve genital malformasyon sendromu. Hum Mol Genet 8: 2001–2008.

62. LIU K, PETREE C, REQUENA T, VARSHNEY P, VARSHNEY GK (2019). Gelişme ve Hastalıkları İncelemek için Zebra Balığı'ndaki CRISPR Araç Kutusunu Genişletmek. Ön Hücre Geliştirme Biyolü 7: 13.

63.LIU Y, LUO D, LEI Y, HU W, ZHAO H, CHENG CHK (2014). Xenopus tropikalis ve zebra balığında hedeflenen gen bozulması için oldukça etkili TALEN aracılı bir yaklaşım. Yöntem 69: 58–66.

64. LIU Y, PATHAK N, KRAMER-ZUCKER A, DRUMMOND IA (2007). Çentik sinyali, zebra balığı pronefrolarında taşınan epitel ve çoğalmış hücrelerin farklılaşmasını kontrol eder. Geliştirme 134: 1111–1122.

65. LUNT SC, HAYNES T, PERKINS BD (2009). Zebra balığı ift57, ift88 ve ift172 intraflagellar taşıma mutantları kirpikleri bozar ancak kirpi sinyalini etkilemez. Dev Dyn 238: 1744–1759.

66. MANGOS S, LAM P y., ZHAO A, LIU Y, MUDUMANA S, VASILYEV A, LIU A, DRUMMOND IA (2010). ADPKD genleri pkd1a/b ve pkd2, hücre dışı matris oluşumunu düzenler. Dis Modeli Mech 3: 354–365.

67.MARRA AN, ULRICH M, WHITE A, SPRINGER M, WINGERT RA (2017). Tüm Mount Floresan Yerinde Hibridizasyon ve İmmünofloresan Kombine Protokolüyle Zebra Balığındaki Çoğaltılmış Hücrelerin Görselleştirilmesi. J Vis Exp 129: 56261.

68. MCCAMPBELL KK, SPRINGER KN, WINGERT RA (2015). Zebra Balığı Yetişkin Böbrek Rejenerasyonu Sırasında Hücresel Dinamikler Atlası. Kök Hücreler Uluslararası 2015: 1–19.

69.MCKEE RA, WINGERT RA (2015). Zebra Balığı Böbrek Patolojisi: Ortaya Çıkan Akut Böbrek Hasarı Modelleri. Curr Pathobiol Rep 3: 171–181.

70.MINGEOT-LECLERCQ Milletvekili, TULKENS PM (1999). Aminoglikozidler : Nefrotoksisite. Antimikrob Ajanlar Chemother 43(5): 1003–1012.

71. MORALES EE, HANDA N, DRUMMOND BE, CHAMBERS JM, MARRA AN, ADDI EGO A, WINGERT RA (2018). Zebra balığında nefron distal segment gelişimi için homeogene emx1 gereklidir. Sci Rep 8: 18038.

72.MULLINS MC, HAMMERSCHMIDT M, HAFTER P, NÜSSLEIN-VOLHARD C (1994). Zebra balığında büyük ölçekli mutagenez: Bir omurgalıda gelişimi kontrol eden genlerin aranması. Curr Biol 4: 189–202.

73. NAYLOR RW, CHANG H-HG, QUBISI S, DAVIDSON AJ (2018). Renal epitel hücrelerinin transdiferansiyasyonunu ve canlı hücre ekstrüzyonunu içeren zebra balığında yeni bir bez oluşum mekanizması. Elife 7: e38911.

74. NAYLOR RW, DAVIDSON AJ (2017). Zebra balığında pronefrik tübül oluşumu: morfogenez ve göç. Pediatr Nefrol 32: 211–216.

75.NAYLOR RW, PRZEPIORSKI A, REN Q, YU J, DAVIDSON AJ (2013). HNF1 bIs, Nefrogenez sırasında Nefron Segmentasyonu için Esastır. J Am Soc Nefrol 24: 77–87.

76.OTT E, WENDIK B, SRIVASTAVA M, PACHO F, TÖCHTERLE S, SALVENMOSER W, MEYER D (2016). Zebra balığındaki pronefrik tübül morfogenezi, ara mezoderm içindeki irx1b'nin Mnx aracılı baskısına bağlıdır. Dev Biol 411: 101–114.

77.OUTTANDY P, RUSSELL C, KLETA R, BOCKENHAUER D (2019). Böbrek fonksiyonu ve hastalığı için bir model olarak zebra balığı. Pediatr Nephrol 34: 751–762.

78.PALMYRE A, LEE J, RYKLIN G, CAMARATA T, SELIG MK, DUCHEMIN AL, NOWAK P, ARNAOUT MA, DRUMMOND IA, VASILYEV A (2014). Kolektif Epitel Göçü, Akut Yaralanma Sonrası Böbrek Onarımını Sağlar Ed. AJ Kabla. PLoS Bir 9: e101304.

79.PATTON EE, ZON LI (2001). Genetik ekranların sanatı ve tasarımı: zebra balığı. Nat Rev Genet 2: 956–966.

80.PIECZYNSKI J, MARGOLIS B (2011). Renal epitel polaritesini kontrol eden protein kompleksleri. Am J Physiol Physiol 300: F589–F601.

81.POUREETEZADI SJ, WINGERT RA (2016). Küçük balık, büyük av: böbrek hastalığı için bir model olarak zebra balığı. Kidney Int 89: 1204–1210.

82.RAJAPURKAR MM, JOHN GT, KIRPALANI AL, ABRAHAM G, AGARWAL SK, ALMEIDA AF, GANG S, GUPTA A, MODI G, PAHARI D, PISHARODY R, PRAKASH J, RAMAN A, RANA DS, SHARMA RK, SAHOO R, SAKHUJA V, TATAPUDI RR, JHA V (2012). Hindistan'daki kronik böbrek hastalığı hakkında ne biliyoruz: Hindistan CKD sicilinin ilk raporu. BMC Nefrol 13: 10.

83.RAJASEKARAN SA, PALMER LG, MOON SY, PERALTA SOLER A, APODACA GL, HARPER JF, ZHENG Y, RAJASEKARAN AK (2001). Na,K-ATPase Aktivitesi, Epitel Hücrelerinde Sıkı Kavşakların, Dezmozomların ve Polaritenin İndüksiyonunun Oluşumu İçin Gereklidir Ed. Guidotti. Mol Biol Hücre 12: 3717–3732.

84. ROBERTS RJ, ELLIS AE (2012). Teleostların Anatomisi ve Fizyolojisi. Fish Pathol Dördüncü Baskı'da (Ed. Roberts RJ) Wiley, s. 17–61.

85.ROBU ME, LARSON JD, NASEVICIUS A, BEIRAGHI S, BRENNER C, FARBER SA, EKKER SC (2007). p53 Knockdown Technologies Ed ile Aktivasyon. M Mullins. PLoS Genet 3: e78.

86.ROSSI A, KONTARAKIS Z, GERRI C, NOLTE H, HÖLPER S, KRÜGER M, STAINIER DYR (2015). Genetik telafi, zararlı mutasyonlar tarafından indüklenir, ancak gen yıkımları tarafından başlatılmaz. Doğa 524: 230–233.

87.SABALIAUSKAS NA, FOUTZ CA, MEST JR, BUDGEON LR, SIDOR AT, GERSHENSON JA, JOSHI SB, CHENG KC (2006). Yüksek verimli zebra balığı histolojisi. Yöntem 39: 246–254.

88. SERTORI R, TRENGOVE M, BASHEER F, WARD AC, LIONGUE C (2016). Zebra balığında genom düzenleme: pratik bir genel bakış. Kısa İşlev Genomik 15: 322–330.

89. SHAH AN, DAVEY CF, WHITE BIRCH AC, MILLER AC, MOENS CB (2016). Zebra balığında CRISPR Kullanarak Hızlı Ters Genetik Tarama. Zebra balığı 13: 152–153.

90. SHAO W, ZHONG D, JIANG H, HAN Y, YIN Y, LI R, QIAN X, CHEN D, JING L (2020). Yeni bir aminoglikozit gentamisin, zebra balığı embriyolarında düşük nefrotoksisite ve ototoksisite gösterir. J App Toxicol 41:1063-1075.

91.SHARMA KR, HECKLER K, STOLL SJ, HILLEBRANDS JL, KYNAST K, HERPEL E, PORUBSKY S, ELGER M, HADASCHIK B, BIEBACK K, HAMMES HP, NAWROTH PP, KROLL J (2016). ELMO1, böbrek gelişimi ve diyabetik koşullarda böbrek yapısını ve ultrafiltrasyonu korur. Sci Rep 6: 37172.

92.SMYTH IM, CULLEN-MCEWEN LA, CARUANA G, BLACK MJ, BERTRAM JF (2017). Böbreğin Gelişimi. Fetal and Neonatal Physiology Elsevier'de, s. 953-964.e4.

93. SULLIVAN-BROWN J, BISHER ME, BURDINE RD (2011). JB-4 reçinesi kullanılarak zebra balığı embriyolarının gömülmesi, seri kesitlenmesi ve boyanması. Nat Protokolü 6: 46–55.

94.SULLIVAN-BROWN J, SCHOTTENFELD J, OKABE N, HOSTETTER CL, SERLUCA FC, THIBERGE SY, BURDINE RD (2008). Kirpik hareketliliğini etkileyen zebra balığı mutasyonları, benzer kistik fenotipleri paylaşır ve pkd2 morfantlarından farklı bir kist oluşum mekanizması önerir. Dev Biol 314: 261–275.

95. SUMMERTON J (1999). Morfolino antisens oligomerleri: RNase H'den bağımsız bir yapısal tip için durum. Biochim Biophys Açta - Gen Yapısı Açıklama 1489: 141–158.

96.SUN, Z. AMSTERDAM, A. PAZOUR, GJ COLE, DG MILLER SM (2004). Zebra balığındaki genetik bir tarama, silia genlerini kistik böbreğin başlıca nedeni olarak tanımlar. Geliştirme 131: 4085–4093.

97.TAHARA T, OGAWA K, TANIGUCHI K (1993). Güney Afrika Pençeli Kurbağası Xenopus laevis Daudin'deki Pronephros ve Mesonephros'un Ontogeny'si, Renin-immunopozitif Hücrelerin Görünüşüne ve Hareketine Özel Referansla. Exp Anim 42: 601–610.

98. TALLAFUSS A, GIBSON D, MORCOS P, LI Y, SEREDICK S, EISEN J, WASHBOURNE P (2012). Zebra balığında sens ve antisens foto morfolinolar kullanılarak gen fonksiyonunun AÇIK ve KAPALI duruma getirilmesi. Geliştirme 139: 1691–1699.

99.TAVARES B, JACINTO R, SAMPAIO P, PESTANA S, PINTO A, VAZ A, ROXO-ROSA M, GARDNER R, LOPES T, SCHILLING B, HENRY I, SAÚDE L, LOPES SS (2017). Çentik / Her12 sinyali, zebra balığı sol-sağ düzenleyicisinde Foxj1a'nın aşağısındaki hareketli / hareketsiz kirpikler oranını modüle eder. Elife 6: e25165.

100.THOMAS R, KANSO A, SEDOR JR (2008). Kronik Böbrek Hastalığı ve Komplikasyonları. Prim Care - Clin Off Uygulaması 35: 329–344.

101.VARMA PP (2015). Hindistan'da kronik böbrek hastalığının yaygınlığı - Nereye gidiyoruz? Indian J Nephrol 25: 133–135.

102.VARSHNEY GK, BURGESS SM (2014). Gelişim ve insan hastalıklarını incelemek için zebra balığındaki mutajenez ve fenotipleme kaynakları. Kısa İşlev Genomik 13: 82–94.

103.VARSHNEY GK, CARRINGTON B, PEI W, BISHOP K, CHEN Z, FAN C, XU L, JONES M, LAFAVE MC, LEDIN J, SOOD R, BURGESS SM (2016). Zebra balığında CRISPR/Cas9-aracılı hedeflenen mutajeneze dayalı, yüksek verimli işlevsel bir genom bilimi iş akışı. Nat Protokolü 11: 2357–2375.

104.VARUGHESE S, ABRAHAM G (2018). Hindistan'da Kronik Böbrek Hastalığı. Clin J Am Soc Nephrol 13: 802–804.

105.VASILYEV A, LIU Y, MUDUMANA S, MANGOS S, LAM PY, MAJUMDAR A, ZHAO J, POON KL, KONDRYCHYN I, KORZH V, DRUMMOND IA (2009). Kolektif Hücre Göçü, Böbrek Nefronunun Morfogenezini Etkiler Ed. DL Stemple. PLoS Biol 7: e1000009.

106.VERLANDER JW (1998). Normal Böbrek Fonksiyonu ve Nefrotoksisite Durumlarında Böbrek Fonksiyonunda Değişiklikler Böbreğin ve Alt Üriner Sistemin Normal İnce Yapısı. Toxicol Pathol 26: 1–17.

107.WILSON PD (2011). Polikistik böbrek hastalığı epitelinde apiko-bazal polarite. Biochim Biophys Açta - Mol Basis Dis 1812: 1239–1248.

108.WINGERT RA, DAVIDSON AJ (2011). Zebra balığı nefrogenezi, renal progenitörlerde dinamik uzaysal ekspresyon değişikliklerini ve retinoik asit ve irx3b'den gelen temel sinyalleri içerir. Dev Dyn 240: 2011–2027.

109.WINGERT RA, SELLECK R, YU J, SONG HD, CHEN Z, SONG A, ZHOU Y, BU B, BU C, MCMAHON AP, DAVIDSON AJ (2007). Cdx genleri ve retinoik asit, zebra balığı pronefrolarının konumlandırılmasını ve segmentasyonunu kontrol eder. PLoS Genet 3: 1922–1938.

110.YAKULOV TA, TODKAR AP, SLANCHEV K, WIEGEL J, BONA A, GROSS M, SCHOLZ A, HESS I, WURDITSCH A, GRAHAMMER F, vd., (2018). CXCL12 ve MYC, böbrek hasarından sonra adaptif yanıtları desteklemek için enerji metabolizmasını kontrol eder. Nat Komün 9: 1–15.

111.YAMAGUCHI T, HAMPSON SJ, REIF GA, HEDGE AM, WALLACE DP (2006). Kalsiyum, İnsan Polikistik Böbrek Hastalığı Epitel Hücrelerinde Normal Proliferasyon Fenotipini Geri Getirir. J Am Soc Nephrol 17: 178–187.

112.ZAGHLOUL NA, KATSANIS N (2011). Cilipathies Zebra balığı Tahlilleri. Methods in Cell Biology'de (Ed. Detrich HW, Westerfield M, Zon L. I). cilt 105. Academic Press, s. 257-272.

113.ZHAO C, MALICKI J (2007). Zebra balığındaki pronefrik kirpiklerin genetik kusurları. Mech Dev 124: 605–616.

114.ZHOU W, DAI J, ATTANASIO M, HILDEBRANDT F (2010). Zebra balığı embriyolarında siliyer fonksiyon için nefrosistin-3 gereklidir. Am J Physiol Physiol 299: F55–F62.

115.ZHOU W, HILDEBRANDT F (2012). Transgenik zebra balığında indüklenebilir podosit hasarı ve proteinüri. J Am Soc Nephrol 23: 1039–1047.

Daha fazla bilgi için: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501