5.2. Uçucu Yağ Analizi

Uçucu yağların hidrodistilasyonla izolasyonu, Clevenger tipi bir cihazda 3 saat süreyle gerçekleştirildi [64].

Cistanche glikozidi ayrıca kalp ve karaciğer dokularındaki SOD aktivitesini artırabilir ve her dokudaki lipofuscin ve MDA içeriğini önemli ölçüde azaltabilir, çeşitli reaktif oksijen radikallerini (OH-, H₂O₂, vb.) etkili bir şekilde temizleyerek ve neden olduğu DNA hasarına karşı koruma sağlayabilir. OH radikalleri tarafından. Cistanche feniletanoid glikozitler, serbest radikalleri güçlü bir şekilde süpürme yeteneğine, C vitamininden daha yüksek bir indirgeme kabiliyetine sahiptir, sperm süspansiyonunda SOD aktivitesini geliştirir, MDA içeriğini azaltır ve sperm zarı işlevi üzerinde belirli bir koruyucu etkiye sahiptir. Cistanche polisakkaritleri, D-galaktozun neden olduğu deneysel olarak yaşlanmış farelerin eritrositlerinde ve akciğer dokularında SOD ve GSH-Px aktivitesini artırabilir, ayrıca akciğer ve plazmada MDA ve kollajen içeriğini azaltabilir ve elastin içeriğini artırabilir. DPPH üzerinde iyi bir temizleme etkisi, yaşlanmış farelerde hipoksi süresini uzatır, serumdaki SOD aktivitesini geliştirir ve deneysel olarak yaşlanmış farelerde akciğerin fizyolojik dejenerasyonunu geciktirir Hücresel morfolojik dejenerasyonla, deneyler Cistanche'nin iyi antioksidan yeteneğe sahip olduğunu göstermiştir. ve cilt yaşlanması hastalıklarını önleyen ve tedavi eden bir ilaç olma potansiyeline sahiptir. Aynı zamanda, Cistanche'deki ekinacoside, DPPH serbest radikallerini temizleme konusunda önemli bir yeteneğe sahiptir ve reaktif oksijen türlerini temizleyebilir, serbest radikal kaynaklı kollajen bozulmasını önleyebilir ve ayrıca timin serbest radikal anyon hasarı üzerinde iyi bir onarım etkisine sahiptir.

Cistanche Tubulosa Eki'ne tıklayın

【Daha fazla bilgi için: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Yağların analizleri hem gaz kromatografisi (GC) hem de gaz kromatografisi/kütle spektrometrisi (GC/MS) ile gerçekleştirilmiştir. GC analizleri, 30 m × 0,25 mm iç çap ve 0,25 µm sabit ile donatılmış bir gaz kromatografı (Agilent 7890A, Palo Alto, CA, ABD) kullanılarak yapıldı. film kalınlığı HP-5 kılcal kolon (Agilent J&W, Santa Clara, CA, ABD). Aşağıdaki sıcaklık programı kullanıldı: 60 ◦C'den 246 ◦C'ye 3 ◦C min-1 hızında ve ardından 20 dakika 246 ◦C'de tutuldu (toplam analiz süresi 82 ​​dakika). Diğer çalışma koşulları şunlardı: taşıyıcı gaz helyum (saflık yüzde 99,9999'dan büyük veya buna eşit —Air Liquide, Milano, İtalya); akış hızı, 1,0 mL.dk-1; enjektör sıcaklığı, 250 ◦C; dedektör sıcaklığı, 300 ◦C. 1 uL seyreltilmiş örneğin (n-heksan içinde 1:100, ağırlık/ağırlık) enjeksiyonu, bir otomatik örnekleyici (Agilent, Model 7683B, Santa Clara, CA, ABD) kullanılarak 1:20 bölünmüş oran ile gerçekleştirildi.

GC-MS analizleri, 30 m × 0,25 mm iç çap ve 0,25 µm sabit film kalınlığı HP{ {7}}ms kılcal kolon (Agilent J&W, Santa Clara, CA, ABD), bir elektron iyonizasyon cihazı, EI ve bir dört kutuplu analizöre (Agilent 5973, Santa Clara, CA, ABD) sahip bir kütle seçici detektörle birleştirilmiş. Sıcaklık programı ve kromatografik çalışma koşulları (dedektör hariç), GC-FID için kullanılanla aynıydı. MS koşulları aşağıdaki gibidir: MS transfer hattı sıcaklığı 240°C; EI iyon kaynağı sıcaklığı, 200 ◦C, 70 eV iyonizasyon enerjisi ile; dört kutuplu sıcaklık 150 ◦C; tarama hızı, m/z tarama aralığında 3,2 tarama.s−1, (30 ila 480). Kromatogramları ve kütle spektrumlarını işlemek ve işlemek için MSD ChemStation yazılımı kullanıldı (Agilent, rev. E.01.00.237, Santa Clara, CA, ABD). Bileşikler, kütle spektrumlarının, GC/MS sistemi ve Adams kitaplıklarının NIST02 kitaplık verileriyle karşılaştırılmasıyla tanımlandı [32,33]. Sonuçlar, literatürde [32] bildirilen yarı polar fazlar üzerindeki tutma indeksleri ile bileşiğin elüsyon sırası ile karşılaştırılarak daha da doğrulanmıştır. Bileşenlerin alıkonma indeksleri, bir dizi n-alkanın (iki standart karışım C8–C20 ve C21–C40) alıkonma sürelerine göre lineer enterpolasyonla belirlendi [65]. Bireysel bileşenlerin yüzdesi, FID yanıt faktörü düzeltmesi olmadan GC tepe alanlarına göre hesaplandı. Sonuçlar, bireysel zirvelerin yüzdesi ± iki bağımsız kromatografik çalışmanın standart sapması olarak gösterilir.

5.3. Antifungal Etkinlik

S. cacaliifolia esansiyel yağının antifungal aktivitesi, ipliksi mantarlara ve mayalara karşı değerlendirildi. Tırnaklardan ve deriden izole edilen üç dermatofit klinik suş (Epidermophyton floccosum FF9, Trichophyton mentagrophytes FF7 ve Microsporum canis FF1) ve Colección Espanõla de Cultivos Tipo'dan (T. mentagrophytes var. interdigital CECT 2958, T. rubrum CECT) dört dermatofit tipi suş 2794, T. verrucosum CECT 2992 ve M. gypseum CECT 2908), bir Cryptococcus neoformans tipi suş (C. neoformans YPO186), tekrarlayan vulvovajinal vakalardan izole edilen iki klinik Candida suşu (C. krusei LF33, C. guillermondii MAT23) ve üç Candida tipi suş (C. albicans ATCC 10231, C. tropicalis YPO128 ve C. paraphimosis ATCC 90018). Tüm suşlar, -80 ◦C'de yüzde 20 gliserol içeren Sabouraud dekstroz sıvı besiyerinde saklandı ve optimum büyüme koşullarını ve saflığı sağlamak için her testten önce Sabouraud dekstroz agar (SDA) veya Patates dekstroz agar (PDA) içinde alt kültürleri yapıldı.

Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü (CLSI) referans protokolü M38-A2 [66]'ya göre yağın minimum inhibe edici konsantrasyonlarını (MIC) ve minimum öldürücü konsantrasyonunu (MLC) belirlemek için bir mikrodilüsyon suyu yöntemi kullanıldı veya Sırasıyla lifli mantarlar ve mayalar için M27-A3 [67]. MIC, aşılanan test tüplerinde üreme olmayan en düşük konsantrasyon iken MLC, tüm negatif tüplerin SDA'sında aşılama sonrası üreme görülmeyen en düşük konsantrasyondu. Bir negatif (aşılanmamış ortam) ve bir pozitif (yüzde 1 DMSO içeren aşılanmış ortam) kontrol de dahil edildi.

5.4. Anti-inflamatuar Aktivite

American Type Culture Collection'dan (ATCC TIB-71) elde edilen bir fare lösemik makrofaj hücre dizisi olan RAW 264.7, daha önce grubumuz tarafından bildirildiği gibi kültürlendi [22].

NO üretimi, Griess reaktifi [68] kullanılarak kültür süpernatanlarında nitrit birikiminin ölçülmesiyle ölçülmüştür. Hücreler (0,6 x 106 hücre/kuyu), 48-kuyu kültür plakalarında kültürlendi. Bir gecelik stabilizasyonun ardından makrofajlar, DMSO içinde seyreltilmiş uçucu yağ (0.08–1,25 µL/mL) ile 1 saat ön işleme tabi tutuldu ve ardından 50 ng/mL LPS ile aktive edildi. 24 saat Pozitif (LPS ile uyarılan makrofajlar) ve negatif kontroller (işlenmemiş makrofajlar) gerçekleştirilmiştir. Bu inkübasyon döneminden sonra, eşit hacimlerde kültür süpernatanları ve Griess reaktifi [yüzde 0,1 (a/h) N-(1-naftil) etilendiamin dihidroklorür ve yüzde 1 (a/h) sülfanilamidin 1:1'i (yüzde 5 (a/h) içeren) w/v) H3PO4] karıştırıldı ve karanlıkta 30 dakika inkübe edildi. 550 nm'deki absorbans, otomatik bir plaka okuyucusunda (Agilent, Santa Clara, CA, ABD) kaydedildi ve nitrit konsantrasyonu, bir sodyum nitrit standart eğrisinden belirlendi. Kullanılan maksimum konsantrasyonda (yüzde 0,4) DMSO'nun anti-inflamatuar ve sitotoksisite etkilerinden yoksun olduğu grubumuz tarafından halihazırda gösterilmiştir (veriler gösterilmemiştir).

RAW 264.7 (1,2 x 106 hücre/kuyu), 6-kuyu plakalarında kültürlendi ve 12 saat stabilize olmasına izin verildi. Daha sonra, hücreler esansiyel yağ (0.64 uL/mL) ile 1 saat süreyle inkübe edildi, ardından 24 saat süreyle LPS (50 ng/mL) aktivasyonu yapıldı. Bir negatif kontrol (işlenmemiş hücreler) ve bir pozitif kontrol (yalnızca LPS ile işlenmiş hücreler) dikkate alındı. Hücre lizatları, daha önce Zuzarte ve diğerleri tarafından tarif edildiği gibi hazırlandı. [22].

İndüklenebilir nitrik oksit sentaz (iNOS) ve siklooksijenaz{{0}} (COX-2) protein seviyelerini ölçmek için Western blot analizi yapıldı. Proteinler, SDS-poliakrilamid 10 yüzde (h/h) üzerinde 130 V'ta 1.5 saat elektroforez ile ayrıldı ve 3 saat 400 mA'da poliviniliden florid membranlara (önceden metanol ile aktive edilmiş) aktarıldı. Spesifik olmayan IgG'leri, oda sıcaklığında 1 saat boyunca TBS-T içinde yüzde 5 (a/h) sütle bloke ettikten sonra, membranlar iNOS (1:500; R&D Systems) veya COX{15}'e karşı spesifik antikorlarla inkübe edildi. } (1:5000; Abcam, Cambridge, BK) gece boyunca, 4 ◦C'de. Daha sonra, zarlar 30 dakika TBS-T ile yıkandı (10 dakika, 3 kez) ve ikincil antikorlarla (1:40, 000; Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX) oda sıcaklığında 1 saat süreyle inkübe edildi , ABD) yaban turpu peroksidazı ile konjuge edilmiştir. İmmünokompleksler, bir kemilüminesans tarayıcı (Image Quant LAS 500, GE, Boston, MA, ABD) kullanılarak tespit edildi. Membranlar, eşdeğer miktarda proteinin yüklendiğini garanti etmek için bir anti-tubulin antikoru (1:20,000; Sigma) ile incelendi. Protein ölçümü, ImageLab sürüm 6.1.0 (Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, ABD) kullanılarak yapıldı.

5.5. Hücre Göçü

Bir fare embriyonik fibroblast hücre hattı (ATCC CRL-1658) olan NIH 3T3, grubumuzda daha önce tarif edildiği gibi kültürlendi [69].

5.5.2. Hücre Migrasyon Deneyi

Hücre göçü, Martinotti ve meslektaşları [70] tarafından küçük değişikliklerle bildirildiği gibi çizik yara tahlili kullanılarak gerçekleştirildi. Kısaca, NIH 3T3 fibroblastları, kuyucuklu plakalarda 2.5 x 105 hücre/mL'de tohumlandı. 24 saatlik büyümeden sonra, 20–200 uL'lik bir pipet ucu kullanılarak hücre tek tabakasında bir çizik gerçekleştirildi. Ayrılan hücreler, hücrelerin steril PBS 1x ile yıkanmasıyla çıkarıldı. Uçucu yağın varlığında veya yokluğunda tüm plakalara yüzde 2 serumlu DMEM ilave edildi. Bir faz sözleşmeli mikroskop kullanılarak, görüntüler çizilmeden 0, 12 ve 18 saat sonra elde edildi ve ImageJ/Fiji yazılımı kullanılarak yara alanı ölçüldü. Sunulan sonuçlar aşağıdaki denklem kullanılarak elde edilmiştir.

5.6. Hücre Canlılığı

Uçucu yağın farklı konsantrasyonlarının hem makrofajların hem de fibroblastların yaşayabilirliği üzerindeki etkisi, resazurin indirgeme deneyi kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Kısaca, makrofajlar ({{0}}.6 × 106 hücre/mL) veya fibroblastlar (1.25 × 105 hücre/mL) 48-kuyu plakalarına ekilmiştir. Bir gecelik stabilizasyonun ardından, 24 saat boyunca DMSO içinde seyreltilmiş farklı konsantrasyonlarda uçucu yağ (0.08-1.25 uL/mL) ilave edildi. Deneyin sonunda ortam çıkarıldı ve makrofajlar ve fibroblastlar için sırasıyla 1 saat veya 4 saat süreyle resazurin (1:10) içeren taze ortam eklendi. 620 nm'lik bir referans filtre ile 570 nm'de absorbans, otomatik bir plaka okuyucusuna (Agilent, Santa Clara, CA, ABD) kaydedildi. Hücre canlılığı, aşağıdaki denklem kullanılarak belirlendi:

burada AbsExp, farklı deney koşullarındaki absorbanstır (570 ve 620 nm arasındaki fark) ve AbsCT, kontrol hücrelerindeki (uçucu yağ yok) absorbanstır.

5.7. Etoposide Kaynaklı Yaşlanma 

Yaşlanma, üreticinin protokolüne göre (Cell Signaling Technology) ticari olarak temin edilebilen bir beta-galaktosidaz boyama kiti kullanılarak değerlendirildi. Kısaca, 2.5 x 104 fibroblast kuyucuklu plakalara ekildi ve gece boyunca yapışmaya bırakıldı. Daha sonra, hücrelerin 24 saat boyunca 12.5 uM etoposid ile inkübe edilmesiyle yaşlanma indüklendi. Etoposid çıkarıldı ve hücreler, PBS 1x ile yıkandı. Daha sonra, hücrelerin S. cacaliifolia esansiyel yağının varlığında veya yokluğunda DMEM'de 72 saat iyileşmesine izin verildi ve morfolojideki değişiklikler günlük olarak değerlendirildi. 72 saat sonra hücreler, 1x fiksatif solüsyon (ticari kitte sağlanır) kullanılarak 15 dakika sabitlendi, ardından PBS yıkamaları yapıldı ve kuru bir inkübatörde 37 °C'de CO2 kaynağı olmadan bir beta-galaktosidaz boyama solüsyonu ile gece boyunca inkübe edildi. Mavi renk gelişimi için farklı alanlar mikroskop altında görüntülendi ve görüntü analizi için fotoğraflandı (koşul başına 8 görüntü). Belirgin bir mavi renk lekelenmesi, beta-galaktosidaz aktivitesinin göstergesiydi. Nicel analiz, ImageJ kullanılarak gerçekleştirildi ve yaşlanan hücrelerin toplam hücrelere yüzdesi hesaplandı.

5.8. İstatistiksel analiz

Sonuçlar, iki kez gerçekleştirilen en az üç bağımsız deneyin ortalama değerleri ± SEM (ortalamanın standart hatası) olarak sunulur. Anti-enflamatuar, hücre canlılığı ve yaşlanma tahlilleri için istatistiksel önem, tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ve ardından GraphPad Prism sürüm 9.3 kullanılarak Dunnett'in post-hoc testi kullanılarak belirlendi.0 (GraphPad Software, San Diego, CA, ABD). Hücre göçü tahlilleri için istatistiksel anlamlılık, iki yönlü ANOVA ve ardından Sydák'ın çoklu karşılaştırma testi ile belirlendi. < 0.05 p değerinin önemli farklılıkları temsil ettiği kabul edildi.

Yazar Katkıları:Kavramsallaştırma, LS ve AM; doğrulama, AS, MJG, MTC ve SP; resmi analiz, JMA-S., MJG, AP ve DF; soruşturma, JMA-S., AM ve AP; kaynaklar, AM, EC, MTC ve LS; veri iyileştirme, AP; yazma—orijinal taslak hazırlama, JMA-S., AP ve AM; yazma—inceleme ve düzenleme, MTC, LS ve AM; görselleştirme, JMA-S.; denetim, LS ve AM; proje yönetimi, LS; finansman edinimi, LS ve MTC Tüm yazarlar makalenin yayınlanmış sürümünü okumuş ve kabul etmiştir.

Finansman:Bu çalışma, UIDB/04539/2020, UIDP/04539/2020 ve LA/P/0058/2020 projeleri kapsamında COMPETE 2020—Rekabetçilik ve Uluslararasılaşma Operasyonel Programı ve FCT—Fundação para a Ciência ea Tecnologia aracılığıyla Portekiz ulusal fonları tarafından finanse edilmiştir.

Veri Kullanılabilirliği Beyanı:Veriler istek üzerine sağlanacaktır.

Çıkar çatışmaları:Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Referanslar

1. Bongomin, F.; Gago, S.; Oladele, R.; Denning, D. Mantar Hastalıklarının Küresel ve Çok Uluslu Prevalansı—Tahmin Kesinliği. J. Mantarlar 2017, 3, 57. [CrossRef] [PubMed]

2. Campoy, S.; Adrio, JL Antifungaller. biyokimya eczane 2017, 133, 86–96. [CrossRef] [PubMed]

3. Gupta, AK; Cooper, Dermatofitozun Antifungal Tedavisinde EA Güncellemesi. Mycopathologia 2008, 166, 353–367. [ÇaprazRef]

4. Matiz, C.; Friedlander, SF Deri Altı Doku Enfeksiyonları ve Apseler. Çocuk Enfeksiyon Hastalıkları İlke ve Uygulamalarında; Elsevier: Amsterdam, Hollanda, 2012; sayfa 454–462.e3.

5. de Oliveira, CB; Vasconcellos, C.; Sakai-Valente, NY; Sotto, MN; Luiz, FG; Belda Junior, W.; de Sousa, MdGT; Benard, G.; Criado, PR Ücretli Benzeri Reseptörler (TLR) 2 ve Lokalize ve Dissemine Dermatofitozlu Hastalardan Keratinositlerin 4 Ekspresyonu. Enst. Med. Trop. Sao Paulo 2015, 57, 57–61. [CrossRef] [PubMed]

6. Celestrino, GA; Reis, AKP; Criado, Halkla İlişkiler; Benard, G.; Sousa, MGT Trichophyton Rubrum, Toll-Like Reseptör 2 Aracılığıyla İnsan Monositlerinde Fagositik ve Proinflamatuar Yanıtları Ortaya Çıkarıyor. Mikrobiyoloji. 2019, 10, 2589. [CrossRef]

7. Güneş, S.-C. Bağışıklık ve Enflamasyonda Kanonik Olmayan NF-B Yolu. Nat. Bağışıklık. 2017, 17, 545–558. [CrossRef] [PubMed]

8. Şarma, A.; Gupta, S. Herbonanoceuticals'ın Antifungal Olarak Koruyucu Tezahürü: Dermatofitik Enfeksiyon için Muhtemel Bir İlaç Adayı. Sağlık Bilimi Rep. 2022, 5. [CrossRef]

9. Guo, S.; DiPietro, LA Yara İyileşmesini Etkileyen Faktörler. J. Dent. Res. 2010, 89, 219–229. [ÇaprazRef]

10. Zuzarte, M.; Goncalves, MJ; Cavaleiro, C.; Canhoto, J.; Vale-Silva, L.; Silva, MJ; Pinto, E.; Salgueiro, L. Lavandula Viridis LHér'in Uçucu Yağlarının Kimyasal Bileşimi ve Antifungal Aktivitesi. J.Med. Mikrobiyoloji. 2011, 60, 612–618. [ÇaprazRef]

11. Martinez-Rossi, NM; Bitencourt, TA; Peres, NTA; Lang, EAS; Gomes, EV; Quaresemin, NR; Martins, milletvekili; Lopes, L.; Rossi, A. Antifungal İlaçlara Dermatofit Direnci: Mekanizmalar ve Prospektüs. Ön. Mikrobiyoloji. 2018, 9, 1108. [CrossRef]

12. Murad, A.; Perfect, JR Kriptokokoz Savaşı: Antifungal Arsenal Üzerine Bir İnceleme. Mem. Enst. Oswaldo. Cruz. 2018, 113, e170391. [CrossRef] [PubMed]

13. McCarthy, MW; Kontoyiannis, DP; Cornely, OA; Mükemmel, JR; Walsh, TJ Yeni Ajanlar ve Dirençli Mantarların Zorluklarını Karşılamak İçin İlaç Hedefleri. J. Bulaş. Dis. 2017, 216, S474–S483. [CrossRef] [PubMed]

14. Vonkeman, HE; van de Laar, MAFJ Steroid Olmayan Anti-İnflamatuvar İlaçlar: Olumsuz Etkiler ve Önlenmeleri. Semin. Artrit. rom. 2010, 39, 294–312. [CrossRef] [PubMed]

15. Bakkalı, F.; Averbeck, S.; Averbeck, D.; Idaomar, M. Uçucu Yağların Biyolojik Etkileri Bir İnceleme. Gıda Kimyası Toksikol. 2008, 46, 446–475. [CrossRef] [PubMed]

16. Christaki, E.; Bonos, E.; Giannenas, I.; Florou-Paneri, P. Biyoaktif Bileşiklerin Kaynağı Olarak Aromatik Bitkiler. Tarım 2012, 2, 228–243. [ÇaprazRef]

17. Edris, AE Uçucu Yağların ve Uçucu Bileşenlerinin Farmasötik ve Terapötik Potansiyelleri: Bir İnceleme. fitoter. Res. 2007, 21, 308–323. [CrossRef] [PubMed]

18. Pinto, E.; Vale-Silva, L.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. Syzygium Aromaticum'dan Karanfil Esansiyel Yağının Candida, Aspergillus ve Dermatophyte Türleri Üzerindeki Antifungal Etkinliği. J.Med. Mikrobiyoloji. 2009, 58, 1454–1462. [ÇaprazRef]

19. Pinto, E.; Hrimpeng, K.; Lopes, G.; Vaz, S.; Goncalves, MJ; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. Ferulago Capillaris Uçucu Yağının Candida, Cryptococcus, Aspergillus ve Dermatophyte Türlerine Karşı Antifungal Etkinliği. Avro. J. Clin. Mikrobiyoloji. bulaştırmak. Dis. 2013, 32, 1311–1320. [ÇaprazRef]

20. Pinto, E.; Pina-Vaz, C.; Salgueiro, L.; Goncalves, MJ; Costa-de-Oliveira, S.; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Rodrigues, A.; Martinezde-Oliveira, J. Thymus Pulegioides Uçucu Yağının Can-dida, Aspergillus ve Dermatophyte Türleri Üzerindeki Antifungal Etkinliği. J.Med. Mikrobiyoloji. 2006, 55, 1367–1373. [ÇaprazRef]

21. Valente, J.; Zuzarte, M.; Goncalves, MJ; Lopes, MC; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Oenanthe Crocata L. Essential Oil'in Antifungal, Antioksidan ve Antiinflamatuar Aktiviteleri. Gıda Kimyası Toksikol. 2013, 62, 349–354. [CrossRef] [PubMed]

22. Zuzarte, M.; Alves-Silva, JM; Alves, M.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Thymus Carnosus ve Thymus Camphoratus Esansiyel Yağlarının ve Ana Bileşiklerinin Anti-inflamatuar Potansiyeli ve Güvenlik Profili Üzerine Yeni Görüşler. J. Ethnopharmacol. 2018, 225, 10–17. [ÇaprazRef]

23. Walker, JB; Sytsma, KJ; Treutlein, J.; Wink, M. Salvia (Lamiaceae) Monofiletik Değildir: Salvia ve Kabile Mentheae'nin Sistematiği, Radyasyonu ve Ekolojik Uzmanlıklarına Yönelik Etkiler. Am. J.Bot. 2004, 91, 1115–1125. [CrossRef] [PubMed]

24. Su, C.-Y.; Ming, Q.-L.; Rahman, K.; Han, T.; Qin, L.-P. Salvia Miltiorrhiza: Geleneksel Tıbbi Kullanımlar, Kimya ve Farmakoloji. Çene. J. Nat. Med. 2015, 13, 163–182. [CrossRef] [PubMed]

25. Ghorbani, A.; Esmaeilizadeh, M. Salvia Officinalis ve Bileşenlerinin Farmakolojik Özellikleri. J. Gelenek. Tamamlayıcı. Med. 2017, 7, 433–440. [ÇaprazRef]

26. Afonso, AF; Alves-Silva, JM; Pereira OR; Cardoso, SM Salvia Bitkilerinin Faydalı Etkileri: Biyoaktif Bileşenlerle Korelasyon. Tıbbi Bitkilerde Son İlerleme Cilt 44: Fitoterapötikler III; Govil, JN, Pathak, M., Ed.; Studium Press: Yeni Delhi, Hindistan, 2016; s. 161–198.

27. Salimikia, I.; Aryanpour, M.; Abdullahi, M.; Abdolghaffari, A.; Samadi, N.; Monsef-Esfahani, H. Salvia Multicaulis Vahl'ın Metanolik Ekstraktının Fitokimyasal ve Yara İyileştirici Etkileri. Sıçan'da. Bitki Med. 2016, 81, S1–S381. [ÇaprazRef]

28. Gali-Muhtasib, H.; Hilan, Ç.; Khater, C. Salvia Libanotica'nın (Doğu Akdeniz Adaçayı) Geleneksel Kullanımları ve Uçucu Yağlarının Etkileri. J. Ethnopharmacol. 2000, 71, 513–520. [CrossRef] [PubMed]

29. Hamidpour, M.; Hamidpour, R.; Hamidpour, S.; Shahlari, M. Kimya, Farmakoloji ve Adaçayının (Salvia) Obezite, Diyabet, Depresyon, Demans, Lupus, Otizm, Kalp Hastalığı ve Kanser Gibi Hastalıkları Önleme ve İyileştirmeye Yönelik Tıbbi Mülkiyeti. J. Gelenek. Tamamlayıcı. Med. 2014, 4, 82–88. [ÇaprazRef]

30. Askari, SF; Avan, R.; Tayarani-Najaran, Z.; Sahebkar, A.; Eghbali, S. İran Salvia Türleri: Fitokimyasal ve Farmakolojik Bir Güncelleme. Fitokimya 2021, 183, 112619. [CrossRef]

31. Davidse, G.; Sousa Sanchez, M.; Knapp, SD; Chian Cabrera, F. Rubiaceae ve Verbenaceae. 4(2): I–Xvi, 1–533. Flora Mesoamericana'da; Davidse, G., Sousa Sánchez, M., Knapp, SD, Chian Cabrera, F., Eds.; Missouri Botanik Bahçesi: St. Louis, MO, ABD, 2012; sayfa 402–403.

32. Adams, RP Uçucu Yağ Bileşenlerinin Gaz Kromatografisi/Dört Kutuplu Kütle Spektroskopisi ile Tanımlanması, 4. baskı; Allured Publishing Corporation: Carol Stream, IL, ABD, 2007.

33. NIST/EPA/NIH Kütle Spektral Kitaplığı 2005.

34. Guijarro-Muñoz, I.; Compte, M.; Álvarez-Cienfuegos, A.; Álvarez-Vallina, L.; Sanz, L. Lipopolisakkarit, İnsan Perisitlerinde Toll-benzeri Reseptör 4 (TLR4)-Aracılı NF-KB Sinyal Yolunu ve Proinflamatuar Tepkiyi Aktive Eder. J. Biol. kimya 2014, 289, 2457–2468. [ÇaprazRef]

35. Skrima, M.; Melito, C.; Merola, F.; Iorio, A.; Vito, N.; Giori, AM; Ferravante, A. Salvia Haenkei Hidroalkolik Hava Parçası Ekstresinin İn Vitro ve İn Vivo Deneysel Modellerde Yara İyileştirme Etkinliğinin Değerlendirilmesi. klinik kozmetik Araştırmak Derm. 2020, 13, 627–637. [CrossRef] [PubMed]

36. Farahpour, MR; Pirkhezr, E.; Eşrefyan, A.; Sonboli, A. Salvia Officinalis Uçucu Yağının Pseudomonas Aeruginosa ve Staphylococcus Aureus Enfekte Yara Modeli Üzerinde Topikal Olarak Uygulanmasıyla Hızlandırılmış İyileşme. Biyomed. Eczacı. 2020, 128, 110120. [CrossRef]

37. Matik, İ.; Revandkar, A.; Chen, J.; Bisio, A.; Dal'Acqua, S.; Cocetta, V.; Brun, P.; Mancino, G.; Milanese, M.; Mattei, M.; et al. Salvia Haenkei'nin Entegre Senes-science-Screening Assay Kullanılarak Gerosupresan Ajan Olarak Tanımlanması. Yaşlanma 2016, 8, 3223–3240. [ÇaprazRef]

38.Park, CH; Şin, SH; Lee, EK; Kim, DH; Kim, M.-J.; Roh, S.-S.; Yokozawa, T.; Chung, HY Salvia Miltiorrhiza BUNGE'den Magnezyum Litospermat B, NADPH Oksidaz Aracılı Reaktif Oksijen Üretimi Yoluyla Yaşlanmanın Neden Olduğu Renal Enflamasyonu ve Yaşlanmayı İyileştirir. fitoter. Res. 2017, 31, 721–728. [ÇaprazRef]

39. Najar, B.; Mecaci, G.; Nardi, V.; Cervelli, C.; Nardoni, S.; Mancianti, F.; Ebani, VV; Giannecchini, S.; Pistelli, Güney Afrika Salvia Spp.'nin L. Uçucuları ve Antifungal-Antibakteriyel-Antiviral Aktivitesi. Üniform Koşullarda Yetiştirilen Uçucu Yağlar. Moleküller 2021, 26, 2826. [CrossRef] [PubMed]

40. Abu-Derwish, MS; Cabral, C.; Ali, Z.; Wang, M.; Han, SI; Yakup, MR; Jain, SK; Tekwani, BL; Zülfikar, F.; Khan, IA; et al. Güney Ürdün'den Salvia Ceratophylla L.: Kimyasal Bileşim ve Biyolojik Faaliyetler Üzerine Yeni Görüşler. Nat. Üretim Biyoprospekt. 2020, 10, 307–316. [CrossRef] [PubMed]

41. Taarit, MB; Msaada, K.; Hüsnü, K.; Şahed, T.; Marzouk, B. Tunus'ta Vahşi Olarak Büyüyen Salvia Verbenaca'nın Uçucu Yağ Bileşimi. J. Gıda Biyokimyası. 2010, 34, 142–151. [ÇaprazRef]

42. Viljoen, AM; Gono-Bwalya, A.; Kamatou, GPP; Başer, KHC; Demirci, B. Salvia Stenophylla ve Dostları S. Repens ve S. Runcinata'nın Uçucu Yağ Bileşimi ve Kemotaksonomisi. J. Essent. Petrol Res. 2006, 18, 37–45. [ÇaprazRef]

43. Pinto, E.; Salgueiro, LR; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Gonçalves, MJ Bazı Maya Türlerinin ve Filamentli Mantarların Salvia Officinalis Uçucu Yağlarına In Vitro Duyarlılığı. End. Mahsul. Üretim 2007, 26, 135–141. [ÇaprazRef]

44. Tosun, A.; Han, S.; Kim, Y.; Calín-Sánchez, A.; Hisenaj, X.; Carbonell-Barrachina, A. Murin Makrofajlarındaki Salvia Officinalis L'nin (Lamiaceae) Uçucu Yağ Bileşimi ve Anti-Enflamatuvar Aktivitesi. Trop. J. Ecz. Res. 2014, 13, 937. [CrossRef]

45. Abu-Derwish, MS; Cabral, C.; Ferreira, IV; Goncalves, MJ; Cavaleiro, C.; Cruz, MT; Al-Bdur, TH; Sal-gueiro, L. Ürdün'den Adaçayı Esansiyel Yağı (Salvia Officinalis L.): Memeli Hücrelerinde Güvenliğin Değerlendirilmesi ve Antifungal ve Antiinflamatuar Potansiyeli. Biyomed. Res. Int. 2013, 2013, 1–9. [ÇaprazRef]

46. ​​Leporini, M.; Bonesi, M.; Loizzo, Bay; Passalacqua, NG; Tundis, R. Salvia Rosmarinus Spenn'in Uçucu Yağı. Sağlığı Teşvik Eden Bileşiklerin Kaynağı Olarak İtalya'dan: Kimyasal Profil ve Antioksidan ve Kolinesteraz İnhibitör Aktivite. Bitkiler 2020, 9, 798. [CrossRef]

47. Choi, JK; Oh, H.-M.; Lee, S.; Kwon, TK; Shin, T.-Y.; Rho, M.-C.; Kim, S.-H. Salvia Plebeia Atopik Dermatit Benzeri Deri Lezyonlarını Bastırır. Am. J. Chin. Med. 2014, 42, 967–985. [ÇaprazRef]

48. Fahed, L.; Stien, D.; Ouaini, N.; Eparvier, V.; el Beyrouthy, M. Salvia multicaulis Vahl Uçucu Yağlarının Kimyasal Çeşitliliği ve Antimikrobiyal Aktivitesi. kimya Biyodalgıçlar. 2016, 13, 591–595. [ÇaprazRef]

49. Juliano, C.; Marchetti, M.; Campagna, P.; Usai, M. Helichrysum Microphyllum Cambess'ten Uçucu Yağın Antimikrobiyal Aktivitesi ve Kimyasal Bileşimi. Alt sp. Tyrrhenicum Bacch., Brullo & Giusso Güney-Batı Sardunya'da Toplanmıştır. Suudi. J. Biol. bilim 2019, 26, 897–905. [CrossRef] [PubMed]

50. O, X.; Zhang, L.; Chen, J.; Sui, J.; Yi, G.; Wu, J.; Ma, Y. Clausena Lansium Uçucu Yağının Candida spp. Moleküller 2019, 24, 1394. [CrossRef]

51. Ruiz-Vásquez, L.; Ruiz Messia, L.; Caballero Ceferino, HD; Ruiz Messia, W.; Andres, MF; Diaz, CE; Gonza-lez-Coloma, A. Peru Amazonia'sından Piper Uçucu Yağlarının Antifungal ve Herbisidal Potansiyeli. Bitkiler 2022, 11, 1793. [CrossRef] [PubMed]

52. Fontenelle, ROS; Moray, SM; Brito, EHS; Brilhante, RSN; Cordeiro, RA; Nascimento, NRF; Kerntopf, MR; Sidrim, JJC; Rocha, Brezilya Caatinga Biyomundan Kroton Türlerinin Uçucu Yağlarının MFG Antifungal Aktivitesi. J. Uygulama Mikrobiyoloji. 2008, 104, 1383–1390. [CrossRef] [PubMed]

53. Mathela, C.; Joshi, S. Yaprak Uçucu Yağının ve Bileşenlerinin Antioksidan ve Antibakteriyel Aktiviteleri Lindera Pulcherrima (Nees.) Benth'ten Furanodienone ve Curzerenone. Eski Kanca. F. Farmakognozi. Res. 2012, 4, 80. [CrossRef]

54. Serra, E.; Hidalgo-Bastida, L.; Verran, J.; Williams, D.; Maliç, S. Ticari Uçucu Yağların ve Biyositlerin Candida Albicans'a Karşı Antifungal Etkinliği. Patojenler 2018, 7, 15. [CrossRef]

55. Burstein, VL; Beccace, I.; Guasconi, L.; Mena, CJ; Cervi, L.; Chiapello, LS Dermatofitlere Cilt Bağışıklığı: Deneysel Enfeksiyon Modellerinden İnsan Hastalığına. Ön. immünol. 2020, 11, 605644. [CrossRef]

56. Genci´c, MS; Aksi´c, JM; Živkovi´c Stoši´c, MZ; Randjelovic, PJ; Stojanoviç, NM; Stojanoviç-Radiç, ZZ; Radulovic´c, NS Ölümsüz Çiçek Esansiyel Yağının Antimikrobiyal ve Antiinflamatuar Etkilerini Kimyasal Bileşimi ile Bağlama - Büyük ve Küçük Bileşenler Arasındaki Etkileşim. Gıda Kimyası Toksikol. 2021, 158, 112666. [CrossRef] [PubMed]

57. Acımoviç, M.; Ljuji´c, J.; Vuliç, J.; Zheljazkov, VD; Pezo, L.; Varga, A.; Tumbas Šaponjac, V. Helichrysum Ital-icum (Roth) Sırbistan'dan G. Don Esansiyel Yağı: Kimyasal Bileşim, Sınıflandırma ve Biyolojik Aktivite—Sırbistan İçin Uygun Yeni Bir Mahsul Olabilir mi? Tarım Bilimi 2021, 11, 1282. [CrossRef]

58. Amorim, JL; Simas, DLR; Pinheiro, MMG; Moreno, DSA; Alviano, CS; da Silva, AJR; Dias Fernandes, P. Dört Narenciye Türünün Uçucu Yağlarının Anti Enflamatuar Özellikleri ve Kimyasal Karakterizasyonu. PLoS BİR 2016, 11, e0153643. [ÇaprazRef]

59. Ascari, J.; de Oliveira, MS; Nunes, DS; Granato, D.; Scharf, DR; Simionatto, E.; Ötüki, M.; Soley, B.; Heiden, G. Baccharis punctulata'nın (Asteraceae) Erkek ve Dişi Örneklerinden Elde Edilen Uçucu Yağların Kimyasal Bileşimi, Antioksidan ve Antiinflamatuar Aktiviteleri. J. Ethnopharmacol. 2019, 234, 1–7. [ÇaprazRef]

60. Singh, P.; Singh, S.; Kapoor, IPS; Singh, G.; Isidorov, V.; Szczepaniak, L. Curcuma Zedoaria Rizomlarından Uçucu Yağ ve Oleoresinlerin Kimyasal Bileşimi ve Antioksidan Aktiviteleri, Kısım-74. Gıda Biyosci. 2013, 3, 42–48. [ÇaprazRef]

61. Jena, S.; Ray, A.; Banerjee, A.; Sahoo, A.; Nesim, N.; Sahoo, S.; Kar, B.; Patnaik, J.; panda, bilgisayar; Nayak, S. Curcuma Angustifolia Roxb'nin Yapraklarından ve Köksaplarından Elde Edilen Uçucu Yağın Kimyasal Bileşimi ve Antioksidan Aktivitesi. Nat. Üretim Res. 2017, 31, 2188–2191. [ÇaprazRef]

62. Andjiç, M.; Bozin, B.; Draginiç, N.; Koçoviç, A.; Jeremic, JN; Tomovic, M.; Milojevi´c Şamanoviç, A.; Kladar, N.; ˇKapo, I.; Jakovljevi´c, V.; et al. Diyabetik Sıçanlarda Yara İyileşmesi İçin Helichrysum Italicum Uçucu Yağ Bazlı Topikal Formülasyonların Formülasyonu ve Değerlendirilmesi. Eczacılık 2021, 14, 813. [CrossRef]

63. Ahlina, FN; Nugraheni, N.; Salsabila, IA; Haryanti, S.; Dai, M.; Meiyanto, E. Ortak Kemoterapötik ve Yaşlanma Karşıtı Ajan Olarak Amaçlanan Metastatik Meme Kanseri Hücrelerinde ve Normal Fibroblast Hücrelerinde Oksidatif Strese Karşı Galangal (Alpinia Galanga L.) Ekstraktının Ters Etkisinin Ortaya Çıkarılması. Asya Pak. J. Kanser Önceki. 2020, 21, 107–117. [ÇaprazRef]

64. Avrupa Konseyi. Avrupa Farmakopesi, 7. baskı; Avrupa Konseyi İlaç ve Sağlık Hizmetleri Kalite Müdürlüğü: Strasbourg, Fransa, 2010; ISBN'si 978-92-871-6700-2.

65. van den Dool, H.; Kratz, PD Doğrusal Sıcaklık Programlı Gaz—Sıvı Bölünme Kromatografisi Dahil Olmak Üzere Tutma İndeksi Sisteminin Genelleştirilmesi. J. Kromatr. 1963, 11, 463–471. [ÇaprazRef]

66. Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü. İpliksi Mantarların Broth Dilution Antifungal Duyarlılık Testi için Referans Yöntemi; Onaylı Standart M38-A2, 2. baskı; Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü: Wayne, PA, ABD, 2008; ISBN'si 1-56238-668-9.

67. Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü. Mayaların Broth Dilution Antifungal Duyarlılık Testi için Referans Yöntemi; Onaylı Standart M27-A3, 3. baskı; Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü: Wayne, PA, ABD, 2008; ISBN'si 1-56238-666-2.

68. Yeşil, LC; Wagner DA; Glogowski, J.; Kaptan, PL; Wishnok, JS; Tannenbaum, Biyolojik Sıvılarda Nitrat, Nitrit ve [15N]Nitrat SR Analizi. Anal. biyokimya 1982, 126, 131–138. [ÇaprazRef]

69. Piras, A.; Maccioni, A.; Falconieri, D.; Porcedda, S.; Goncalves, MJ; Alves-Silva, JM; Silva, A.; Cruz, MT; Salgueiro, L.; Maxia, A. Teucrium Scordium L. Subsp. Uçucu Yağının Kimyasal Bileşimi ve Biyolojik Aktivitesi. Scordioides (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) Sardinya Adasından (İtalya). Nat. Üretim Res. 2021, 36, 5828–5835. [CrossRef] [PubMed]

70. Martinotti, S.; Ranzato, E. Çizik Yara İyileştirme Testi. Epidermal Hücrelerde: Moleküler Biyolojide Yöntemler; Türksen, K., Ed.; Humana: New York, NY, ABD, 2019; Cilt 2109, s. 225–229.

Sorumluluk Reddi/Yayıncının Notu:Tüm yayınlarda yer alan ifadeler, görüşler ve veriler yalnızca yazar(lar)a ve katkıda bulunan(lar)a aittir ve MDPI ve/veya editör(ler)e ait değildir. MDPI ve/veya editör(ler), içerikte atıfta bulunulan herhangi bir fikir, yöntem, talimat veya üründen kaynaklanan kişi veya mal yaralanmalarından sorumlu değildir.