Karasal Mikroorganizmalar: Cilt Koruma Uygulamaları Olan Biyoaktif Moleküllerin Hücre Fabrikaları Bölüm 4
May 04, 2023
8. Sonuçlar
Doğal olarak türetilen moleküller geleneksel olarak cilt koruma ürünlerinde kullanılır (Tablo 1, CosIng envanteri). Sonuç olarak, mikroorganizmalardan biyoteknolojik araçlar kullanılarak izole edilen ve/veya üretilen doğal bileşikler, halihazırda topikal kozmetik formülasyonlarda dermatolojik amaçlar için kullanılmaktadır. Bu ürünler cildin görünümünü estetik olarak iyileştirebilir, ancak aynı zamanda yaşa bağlı cilt bozukluklarını önleyebilir ve/veya tedavi edebilir. "Yerleşik" moleküllerin ötesinde, kozmetik veya kozmesötik formülasyonlarda kullanım için büyük potansiyele sahip mikroorganizmalardan türetilen birkaç küçük molekül ve/veya enzim vardır (Tablo 1).
İlgili araştırmalara göre cistanche, "ömrü uzatan mucizevi bitki" olarak bilinen yaygın bir bitkidir. Ana bileşenikistanositgibi çeşitli etkilere sahiptir.antioksidan, antienflamatuvar, Vebağışıklık fonksiyonu teşviki. Cistanche ve arasındaki mekanizmaderibeyazlatmacistanche'nin antioksidan etkisinde yatmaktadır.glikozitler. İnsan derisindeki melanin, tirozinin oksidasyonu ile üretilir.tirozinazve oksidasyon reaksiyonu oksijenin katılımını gerektirir, bu nedenle vücuttaki oksijensiz radikaller melanin üretimini etkileyen önemli bir faktör haline gelir. Cistanche, bir antioksidan olan ve vücuttaki serbest radikallerin oluşumunu azaltabilen cistanoside içerir, böyleceengellememelaninüretme.

Cistanche Powder Bulk'a tıklayın
Daha fazla bilgi için:
david.deng@wecistanche.com WhatsApp:86 13632399501
İlginç bir şekilde, Avrupa Kabul Edilen Kozmetik Bileşenler Envanteri'ne (CosIng envanteri) [14] dahil olan birkaç biyomolekül, biyolojik aktivitelerinden biri için kayıtlıdır ancak kozmetik uygulamalarda farklı şekilde kullanılmaktadır. Karakteristik bir örnek, bir "antioksidan" olarak tescil edilen kojik asittir, kozmetikteki ana uygulama ise güçlü anti-tirozinaz aktivitesi ve dolayısıyla bir cilt beyazlatma maddesi olarak uygulanmasıdır (Tablo 1).

Muazzam mikrobiyal biyoçeşitlilik ve dünyadaki hemen hemen her ortama mikrobiyal adaptasyon göz önüne alındığında, mikropların potansiyel cilt koruyucu aktivitelere sahip çok çeşitli biyomoleküllerin yapısal yapı iskelelerinin olağanüstü bir envanterini temsil etmesi beklenebilir. Deniz ortamına ilişkin araştırmalar karasal ortama göre daha sonra eşleşmeye başlasa da, kozmetik başvuruların ve patentlerin deniz kaynaklı mikroorganizmaların lehine olduğu birkaç vakamız var. Foto-koruyucu aktiviteleri ile bilinen MAA'larda belirtildiği gibi, doğal UV filtreleri için birçok patente dahil edilmiştir. Ancak bunların çoğu deniz ortamlarından gelen mikroorganizmalarla geliştirilmişken (yüzde 72,2), karasal ve tatlı su mikroorganizmaları için geliştirilen patentler sırasıyla yüzde 21,4 ve yüzde 2,4'ü geçmemiştir [135]. Bu çalışma, bugüne kadar bazı durumlarda karasal ortamın ihmal edildiğini yansıtmaktadır.

Çıkar çatışmaları:Yazarlar herhangi bir çıkar çatışması beyan etmemektedir.

Kısaltmalar
UVB ultraviyole B
Referanslar
1. Ma, T.; Deng, Z.; Liu, T. Mikrobiyal üretim stratejileri ve likopen ve diğer terpenoidlerin uygulamaları. Dünya J. Microbiol. Biyoteknoloji 2016. [CrossRef] [PubMed]
2. Korinaldesi, C.; Baron, G.; Marcellini, F.; Dell'Anno, A.; Danovaro, R. Marine mikrobiyal türevli moleküller ve bunların kozmetik ve kozmetik ürünlerdeki potansiyel kullanımları. Mart Uyuşturucu 2017, 15, 118. [CrossRef]
3. Lobanovska, M.; Pilla, G. Penisilin'in keşfi ve antibiyotik direnci: gelecek için dersler? J. Biol. Med. 2017, 90, 135–145.
4. Raja, A.; Prabakarana, P. Actinomycetes ve Drug-An'a Genel Bakış. Am. J. İlaç Keşfi. Dev. 2011, 1, 75–84. [ÇaprazRef]
5. Berdy, J. Biyoaktif mikrobiyal metabolitler. J. Antibiyotik. 2005, 58, 1–26. [PubMed]
6. Ferreira, A.; Vecino, X.; Ferreira, D.; Cruz, JM; Moldes, AB; Rodrigues, LR Lactobacillus paracasei'den bir biyosürfaktan içeren yeni kozmetik formülasyonlar. Kolloidler Sörf. B Biointerfaces 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]
7. Argyropoulou, A.; Aliyannis, N.; Trougakos, IP; Skaltsounis, AL Yaşlanma karşıtı aktiviteye sahip doğal bileşikler. Nat. Üretim 2013, 30, 1412–1437. [ÇaprazRef]
8. Cavinato, M.; Jansen-Durr, P. Dermal fibroblastların UVB ile indüklenen yaşlanmasının moleküler mekanizmaları ve bunun insan derisinin fotoyaşlanmasıyla ilgisi. Tecrübe. Gerontol. 2017, 94, 78–82.
9. Velarde, MC; Demaria, M. Yaşlanan hücreleri hedeflemek: Cilt yaşlanmasını geciktirmek için olası sonuçlar: Bir mini inceleme. Gerontoloji 2016, 62, 513–518.
10. Trougakos, IP; Sesti, F.; Tsakiri, E.; Gorgoulis, VG Karsinojenezde enzimatik olmayan translasyon sonrası protein modifikasyonları ve proteostaz ağ kuralsızlaştırması. J. Proteomics 2013, 92, 274–298.
11. Sklirou, A.; Papanagnou, ED; Fokialakis, N.; Trougakos, Proteostatik modüllerin aktivasyonu yoluyla IP Kanser kemoprevensiyonu. kanser Letonya 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]
12. Pazar Araştırması Raporları. (22 Ağustos 2017'de erişildi).
13. Hyde, KD; Bahçeli, AH; Moslem, MA Fungi—Kozmetik için sıra dışı bir kaynak. Mantar Dalgıçları. 2010, 43, 1–9. [ÇaprazRef]
14. Envanter Oluşturma. Çevrimiçi olarak erişilebilir: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_en (22 Mart 2018'de erişildi).
15. Çay, TT; Hukuk, YÇ; Wong, FC; Kim, SK Yenilebilir deniz omurgasızlarından antioksidan peptitlerin enzim destekli keşfi: Bir Gözden Geçirme. Mart Uyuşturucu 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]
16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; Larsson, NG Memeli mitokondri ve yaşlanma: bir güncelleme. Hücre. Metab. 2017, 25, 57–71. [ÇaprazRef]
17. Kusumawati, I.; Indrayanto, G. Kozmetikte doğal antioksidanlar. Damızlık. Nat. Üretim kimya 2013, 40, 485–505.
18. Abramoviç, H.; Grobin, B.; Ulrich, NP; Cigi´c, B. İn vitro antioksidan tahlillerinin alaka düzeyi ve standardizasyonu: ABTS, DPPH ve Folin–Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1–9. [ÇaprazRef]
19. Huang, WY; Çay, YZ; Xing, J. Potansiyel bir antioksidan kaynağı: şifalı bitkilerden elde edilen endofitik mantarlar. ekonomi Bot. 2007, 61, 14–30. [ÇaprazRef]
20. Danagoudar, A.; Joshi, CG; Kumar, RS; Poyya, J.; Nivya, T.; Hülikere, MM; Appaiah, KAA Polifenol üreten endofitik mantar-Aspergillus austroafricanus CGJ-B3'ün moleküler profilleme ve antioksidan yanı sıra anti-bakteriyel potansiyeli. Mikoloji 2017, 8, 28–38. [ÇaprazRef]
21. Colla, LM; Furlong, EB; Costa, JAV Farklı sıcaklıklar ve nitrojen rejimleri altında yetiştirilen Spirulina (Arthospira) platensis'in antioksidan özellikleri. Braz. Ark. Biol. Teknoloji 2007, 50, 161–167. [ÇaprazRef]
22. Miranda, MS; Sato, S.; Mancini-Filho, J. Özel koşullarda kültürlenen mikroalg Chlorella vulgaris'in antioksidan aktivitesi. Koza. Chim. Çiftlik. 2001, 140, 165–168.
23. Shalaby, ES; Shanab, SMM Farklı Spirulina platensis ekstrelerinin DPPH ve ABTS radikal deneylerine karşı antiradikal ve antioksidan aktiviteleri. Indian J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [ÇaprazRef]
24. Goiris, K.; Muylaert, K.; Voorspoels, S.; Noten, B.; De Paepe, D.; GJ, B.; De Cooman, L. Farklı evrimsel soylardan mikroalglerde flavonoidlerin saptanması. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [ÇaprazRef]
25. Jerez-Martel, I.; Garcia-Poza, S.; Rodriguez-Martel, G.; Riko, M.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL Mikroalg ve siyanobakteri suşlarından elde edilen ham özlerin fenolik profili ve antioksidan aktivitesi. J. Gıda Kal. 2017, 4, 1–8. [ÇaprazRef]
26. Singh, DP; Prabha, R.; Verma, S.; Meena, KK; Yandigeri, M. Karasal siyanobakterilerde antioksidan özellikler ve polifenolik içerik. 3 Biyoteknoloji. 2017. [CrossRef]
27. Liu, Y.; Nan, L.; Liu, J.; Yan, H.; Zhang, D.; Han, X. Şarap üzümü Cabernet Sauvignon'dan resveratrol üreten endofitlerin izolasyonu ve tanımlanması. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]
28. Shi, J.; Zeng, S.; Liu, Y.; Pan, Z. Alternaria sp. Resveratrol üreten bir mantar olan MG1: resveratrol üretimi için izolasyon, tanımlama ve optimal yetiştirme koşulları. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]
29. Baxter, RA Resveratrolün yaşlanma karşıtı özellikleri: güçlü bir yeni antioksidan cilt bakımı formülasyonunun gözden geçirilmesi ve raporu. J. Kozmetik. Dermatol. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]
30. Zhang, J.; Shi, J.; Liu, Y. Genetiği değiştirilmemiş Alternaria sp. Biyoteknoloji Uygulama biyokimya 2013, 60, 236–243. [ÇaprazRef]
31. An, SM; Ko, JS; Boo, YC P-kumarik asit sadece in vitro insan tirozinaz aktivitesini değil, aynı zamanda UVB'ye maruz kalan hücrelerde melanogenezi de inhibe eder. fitoter. Res. 2010, 24, 1175–1180.
32. Lourith, N.; Kanlayavattanakul, M. Meyve suyu üretim kalıntısından elde edilen Passiflflora edulis tohumunun antioksidan aktiviteleri ve fenolikleri. J Oleo. bilim 2013, 62, 235–240. [ÇaprazRef]
33. Lopez-Burillo, S.; Tan, DX; Mayo, JC; Sainz, RM; Manchester, LC; Reiter, RJ Melatonin, xanthurenic asit, resveratrol, EGCG, vitamin C ve alfa-lipoik asit, Fenton reaktiflerinin neden olduğu oksidatif DNA hasarını farklı şekilde azaltır: bunların bireysel ve sinerjistik etkileri üzerine bir çalışma. J. Pineal. Res. 2003, 34, 269–277. [CrossRef] [PubMed]
34. Satooka, H.; Kubo, I. Tirosinaz için kcat tipi bir inhibitör olarak Resveratrol: Güçlendirilmiş melanogenez inhibitörü. Biorg. Med. kimya 2012, 20, 1090–1099. [ÇaprazRef]
35. Li, M.; Kildegaard, KR; Chen, Y.; Rodriguez, A.; Borodina, I.; Nielsen, J. Tasarlanmış Saccharomyces cerevisiae tarafından glikoz veya etanolden resveratrolün De novo üretimi. Metab. Müh. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]
36. Lim, CG; Fowler, ZL; Hueller, T.; Schaffer, S.; Koffffas, MA Tasarlanmış Escherichia coli'de yüksek verimli resveratrol üretimi. Uygulama çevre. Mikrobiyol. 2011, 77, 3451–3460. [ÇaprazRef]
37. Sydor, T.; Schaffer, S.; Boles, E. Zengin besiyerinin kullanımıyla rekombinant endüstriyel maya suşları tarafından resveratrol üretiminde önemli artış. Uygulama çevre. Mikrobiyol. 2010, 76, 3361–3363. [ÇaprazRef]
38. Balestrazzi, A.; Bonadei, M.; Calvio, C.; Mattivi, F.; Carbonera, D. Transgenik beyaz kavaktan resveratrol benzeri bileşikler üreten yaprakla ilişkili bakteriler: izolasyon, moleküler karakterizasyon ve oksidatif stres toleransının değerlendirilmesi. Olabilmek. J. Mikrobiyoloji. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]
39. Xiao, J.; Zhang, S.; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; Zhang, A.-L.; Gao, J.-M. Melia azedarach'ın endofitik Botryosphaeria dothidea'sından ikincil metabolitler ve bunların antifungal, antibakteriyel, antioksidan ve sitotoksik aktiviteleri. J. Agric. Gıda Kimyası 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]
40. Mou, Y.; Meng, J.; Fu, X.; Wang, X.; Tian, J.; Wang, M.; Peng, Y.; Zhou, L. Antimikrobiyal ve antioksidan aktiviteler ve 1-heksadesen ilavesinin endofitik mantar Berkleasmium sp. Dzf12. Moleküller 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]
41. Kerksick, C.; Willoughby, D. Glutatyon ve N-asetil-sistein takviyelerinin ve egzersize bağlı oksidatif stresin antioksidan rolü. J. Int. Sos. Spor Beslenmesi 2005, 2, 38–44. [ÇaprazRef]
42. Sonthalia, S.; Daulatabad, D.; Cilt beyazlatma maddesi olarak Sarkar, R. Glutatyon: gerçekler, mitler, kanıtlar ve tartışmalar. Hintli J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [ÇaprazRef]
43. Fei, L.; Wang, Y.; Chen, S. Pichia pastoris'te gen ekspresyonu ile geliştirilmiş glutatyon üretimi. Biyoproses. Biyosist. Müh. 2009, 32, 729–735. [CrossRef] [PubMed]
44. Wang, C.; Zhang, J.; Wu, H.; Li, Z.; Ye, Q. Geliştirilmiş glutatyon üretimi için Escherichia coli'deki çeşitli vektör sistemlerinde heterolog gshF gen ifadesi. J. Biyoteknoloji. 2015, 214, 63–68. [ÇaprazRef]
45. Palozza, P.; Krinsky, NI Astaksantin ve kantaksantin, bir zar modelinde güçlü antioksidanlardır. Ark. biyokimya biyografiler. 1992, 267, 291–295. [CrossRef] 46. Yamamoto, K.; Hara, KY; Morita, T.; Nishimura, A.; Sasaki, D.; Ishii, J. Genlerin tamamen silinmesi için etkili bir yöntemle Xanthophyllomyces dendrorhous'ta astaksantin üretiminin arttırılması. Mikrob. Hücre Gerçeği. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]
47. Tripathi, U.; Sarada, R.; Ravishankar, GA Kültür koşullarının yeşil alg - Haematococcus pluvialis'in büyümesi ve astaksantin üretimi üzerindeki etkisi. Açta Physiol. Bitki. 2002, 24, 323–329. [ÇaprazRef]
48. Mueller, L.; Boehm, V. Farklı in vitro analizlerde beta-karoten bileşiklerinin antioksidan aktivitesi. Moleküller 2011, 16, 1055–1069. [ÇaprazRef]
49. Zhu, F.; Lu, L.; Fu, S.; Zhong, X.; Hu, M.; Deng, Z. Escherichia coli'de likopen aşırı üretiminin hedeflenen mühendisliği ve ölçeğinin büyütülmesi. İşlem. biyokimya 2015, 50, 341–346. [ÇaprazRef]
50. Nelis, HJ; De Leenheer, A.P, Brevibacterium sp.'nin Yeniden Araştırılması. kantaksantin kaynağı olarak KY-4313 suşu. Uygulama çevre. Mikrobiyol. 1989, 55, 2505–2510.
51. Sindhu, ER; Preethi, KC; Kuttan, R. Karotenoid luteinin in vitro ve in vivo antioksidan aktivitesi. Hintli J. Uzm. Biol. 2010, 843–848.
52. Del Campo, JA; Moreno, J.; Rodriguez, H.; Angeles Vargas, M.; Rivas, J.; Guerrero, MG Klorofil mikroalginin karotenoid içeriği: Muriellopsis sp.'de lutein birikimini belirleyen faktörler. (Klorofil). J. Biyoteknoloji. 2000, 76, 51–59. [ÇaprazRef]
53. Venugopalan, V.; Tripathi, SK; Nahar, P.; Saradhi, PP; Das, RH; Gautam, HK Yeni bir topraktan izole edilen kantaksantin izomerlerinin karakterizasyonu Dietzia sp. ve antioksidan aktiviteleri. J. Mikrobiyoloji. Biyoteknoloji 2013, 23, 237–245. [ÇaprazRef]
54. Mahapatra, S.; Banerjee, D. Endofitik Fusarium solani SD5'ten ekzopolisakaritin in vitro antioksidan gücünün değerlendirilmesi. uluslararası J. Biol. Makromol. 2013, 53, 62–66. [ÇaprazRef]
55. Zheng, LP; Zou, T.; Anne, YJ; Wang, JW; Zhang, YQ Endofitik bakteri Bacillus cereus SZ1'den ekzopolisakkaritlerin antioksidan ve DNA hasarı koruma aktivitesi. Moleküller 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]
56. Liu, J.; Luo, J.; Ye, H.; Güneş, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Endofitik bakteri Paenibacillus polymyxa EJS'den ekzopolisakaritlerin in vitro üretimi, karakterizasyonu ve antioksidan aktiviteleri-3. Karbonhidrat. Polim. 2009, 78, 275–281. [ÇaprazRef]
57. Liu, J.; Luo, J.; Ye, H.; Güneş, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Endofitik bakteri Paenibacillus polymyxa EJS-3'den ekzopolisakaritlerin orta optimizasyonu ve yapısal karakterizasyonu. Karbonhidrat. Polim. 2010, 79, 206–213. [ÇaprazRef]
58. Xiao, R.; Zheng, Y. Mikroalgal hücre dışı polimerik maddelere (EPS) ve bunların uygulamalarına genel bakış. Biyoteknoloji Av. 2016, 34, 1225–1244. [ÇaprazRef]
59. Chen, Y.; Mao, W.; Tao, H.; Zhu, W.; Qi, X.; Chen, Y. Mangrov endofitik mantarı Aspergillus sp. tarafından üretilen bir ekzopolisakaritin yapısal karakterizasyonu ve antioksidan özellikleri. Y16. biyolojik kaynak. Teknoloji 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]
60. Serrato, RV; Sasaki, GL; Cruz, LM; Pedrosa, Ö; Gorin, PA; Iacomini, M. Azot sabitleyici bakteri Burkholderia tropica tarafından asidik bir ekzopolisakarit üretimi için kültür koşulları. Olabilmek. J. Mikrobiyoloji. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]
61. Trabelsi, L.; Chaieb, O.; Mnari, A.; Abid-Essafifi, S.; Aleya, L. Termofilik mikroalg Graesiella sp.'den elde edilen sulu hücre dışı polisakkaritlerin kısmi karakterizasyonu ve antioksidan ve antiproliferatif aktiviteleri. BMC Tamamlayıcı. Altern. Med. 2016. [ÇaprazRef]
62. Romay, C.; Gonzalez, R.; Ledon, N.; Ramirez, D.; Rimbau, V. C-phycocyanin: antioksidan, antiinflamatuar ve nöroprotektif etkileri olan bir biliprotein. Curr. Protein Pept. bilim 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]
63. Tasar, ÖÇ; Erdal, S.; Taşkın, M. Psikrotolerant Rhizopus oryzae tarafından steril olmayan açık fermantasyon koşullarında kitosan üretimi. uluslararası J. Biol. Makromol. 2016, 89, 428–433. [ÇaprazRef]
64. Asachi, R.; Karimi, K. Minimum besin tüketimi ile Mucor indicus tarafından buğday samanından geliştirilmiş etanol ve kitosan üretimi. İşlem. biyokimya 2013, 48, 1524–1531. [ÇaprazRef]
65. Logesh, AR; Thillaimaharani, KA; Şarmila, K.; Kalaiselvam, M.; Raffiffiffi, SM Mangrov ortamından izole edilen endolitik mantarlardan kitosan üretimi ve antagonistik aktivitesi. Asya Pak. J. Trop. Biyomed. 2012, 2, 140–143. [ÇaprazRef]
66. Ordonez, L.; Garcia, J.; Bolanños, G. Kritik altı su kullanarak Aspergillus niger biyokütlesinden kitin ve kitin-glukan kompleksleri üretmek. Süperkritik Akışkanlar Üzerine İbero-Amerikan Konferansı Tutanakları'nda, Cartagena, Kolombiya, 1–5 Nisan 2013.
67. Guo, J.; Rao, Z.; Yang, T.; Adam, Z.; Xu, M.; Zhang, X. Yeni bir Streptomyces kathirae izolatı tarafından yüksek düzeyde melanin üretimi. FEMS Mikrobiyoloji. Letonya 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]
68. Tarangini, K.; Mishra, S. Meyve atığı ekstraktı üzerinde toprak mikrobiyal izolatı ile melanin üretimi: anahtar parametrelerin iki aşamalı optimizasyonu. Biyoteknoloji 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]
69. Beckstead, AA; Zhang, Y.; Hilmer, JK; Smith, HJ; Bermel, E.; Foreman, CM Bakteriyel pigment violaseinin ultra hızlı uyarılmış durum deaktivasyonu. J. Phys. kimya 2017. [CrossRef] [PubMed]
70. Ahmed, WA; Yusof, Yeni Zelanda; Nordin, N.; Zakaria, ZA; Rezali, MF Tarımsal atıklarda yetiştirilen yerel olarak izole edilmiş Chromobacterium violaceum ile viyolasin üretimi ve karakterizasyonu. Uygulama biyokimya Biyoteknoloji 2012, 167, 1220–1234. [ÇaprazRef]
71. Wang, H.; Jiang, P.; Lu, Y.; Ruan, Z.; Jiang, R.; Xing, X.-H. Yeni bir Duganella sp. suşu ile viyolasein üretimi için kültür koşullarının optimizasyonu. B2. biyokimya Müh. J.2009, 44, 119–124. [ÇaprazRef]
72. Pathak, J.; Sonker, AŞ; Richa, R.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; Singh, V.; Ahmed, H. Hindistan, Varanasi ve çevresindeki tarihi anıtlarda yaşayan siyanobakteriyel kabuklardan fotokoruyucu pigment scytonemin'in taranması ve kısmi saflaştırılması. Mikrobiyol. Res. 2017. [CrossRef]
73. Chen, J.; Zhao, L.; Xu, J.; Yang, R.; O, S.; Yan, X. Üçlü dört kutuplu kütle spektrometresi ile birleştirilmiş yüksek performanslı sıvı kromatografisi ile farklı koşullar üzerinde kültürlenen Nostoc komünü Vauch'ta oksitlenmiş scytonemin'in belirlenmesi. J. Uygulama Phycol. 2013, 25, 1001–1007. [ÇaprazRef]
74. Nakashima, T.; Anzai, K.; Kuwahara, N.; Komaki, H.; Miyadoh, S.; Harayama, S. Streptomyces roseolililacinus tarafından üretilen bir tirozinaz inhibitörünün fizikokimyasal karakterleri NBRC 12815. Biol. eczane Boğa. 2009, 32, 832–836. [ÇaprazRef]
75. Kurbanoğlu, EB; Özdal, M.; Özdal, OG; Algur, OF Koç boynuzu peptonu kullanılarak Serratia marcescens MO-1 tarafından geliştirilmiş prodigiosin üretimi. Braz. J. Mikrobiyoloji. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]
76. Boriç, M.; Danevciç, T.; Stopar, D. Prodigiosin, Vibrio sp. DSM 14379; yeni bir UV koruyucu pigment. Mikrob. ekol. 2011, 62, 528–536. [ÇaprazRef]
77 Lawrence, KP; Gacesa, R.; Uzun, PF; Young, AR İnsan keratinositlerinin doğal olarak oluşan mikosporin benzeri amino asit polietilen tarafından in vitro moleküler fotokorunması. Br. J. Dermatol. 2017, 178, 1353–1363. [ÇaprazRef]
78. Rastogi, RP; Incharoensakdi, A. Cyanobacterium Lyngbya sp.'de UV tarama bileşiklerinin, mikosporin benzeri amino asitlerin ve scytonemin'in karakterizasyonu. 2555 PB. FEMS Mikrobiyoloji. ekol. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]
79. Libkind, D.; Moline, M.; Sommaruga, R.; Sampaio, JP; van Broock, M. Fungal siklosporinin Pucciniomycotina (Basidiomycota) içindeki filogenetik dağılımı. Maya (Chichester, İngiltere) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]
80. Kogej, T.; Gostincar, C.; Volkmann, M.; Gorbuşina, AA; Günde-Çimerman, N.; Kogej, T.; Gorbushina, AA Ekstremofilik mantarlardaki mikosporinler - Yeni tamamlayıcı osmolitler? çevre. kimya 2006, 3, 105–110. [ÇaprazRef]
81. Wei, S.; Xu, N.; Ji, Z. Aspergillus afflatus F52 üreten bir kojik asitin tanımlanması. Açta Mikrobiyoloji. Günah. 2014, 1155–1160.
82. El-Aasar, SA Aspergillus parasiticus tarafından kojik asit üretimi üzerine kültürel koşullar çalışmaları. uluslararası J. Agric. Biol. 2006, 8, 468–473.
83. Muhammed, R.; Ariffff, AB A. afflatus Link 44-1'nin hücreye bağlı enzim sistemi ile çeşitli karbon kaynaklarının kojik aside biyotransformasyonu. biyokimya Müh. J.2007, 35, 203–209. [ÇaprazRef]
84. Zhao, L.; Kim, JC; Paik, MJ; Lee, W.; Hur, JS Parmotrema austrosinense'den izole edilen endolitik bir mantar tarafından üretilen çok işlevli ve olası bir cilt UV koruyucusu (3R)-5-hidroksimellein. Moleküller 2016, 22, 26. [CrossRef]
85. Robledo, A.; Aguilera-Carbo, A.; Rodriguez, R.; Martinez, JL; Garza, Y.; Aguilar, CN Nar kalıntılarının katı hal fermantasyonunda Aspergillus niger tarafından ellagik asit üretimi. J. Ind. Microbiol. Biyoteknoloji 2008, 35, 507–513. [ÇaprazRef]
86. Smith, WP Topikal L(artı) laktik asit ve askorbik asidin cilt beyazlatma üzerindeki etkileri. uluslararası J. Kozmetik. bilim 1999, 21, 33–40. [CrossRef] [PubMed]
87. Maas, RH; Springer, J.; Eggink, G.; Weusthuis, RA Rhizopus oryzae mantarında ksiloz metabolizması: büyüme ve solunumun L artı -laktik asit üretimi üzerindeki etkisi. J. Ind. Microbiol. Biyoteknoloji 2008, 35, 569–578. [ÇaprazRef]
88. Shih, İL; Van, YT Mikroorganizmalardan poli-(gama-glutamik asit) üretimi ve çeşitli uygulamaları. biyolojik kaynak. Teknoloji 2001, 79, 207–225. [ÇaprazRef]
89. Schallreuter, KU; Wood, JW İnsan epidermisinde azelaik asit için olası bir etki mekanizması. Ark. Dermatol. Res. 1990, 282, 168–171. [ÇaprazRef]
90. Balina, LM; Graupe, K. Melazma tedavisi yüzde 20 azelaik asit ve yüzde 4 hidrokinon kremidir. uluslararası J. Dermatol. 1991, 30, 893–895. [ÇaprazRef]
91. Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS Pityrosporum kültürlerinde tirozinaz inhibitörlerinin tanımlanması ve bunların melanositotoksik etkisi. Pigment. Hücre 1979, 4, 234–243.
92. Yin, C.; Zhang, C.; Gao, M. Kimyasal olarak modifiye edilmiş hiç kimse kullanılarak E vitamini süksinatın enzim katalizli sentezi-435. Çene. J. Chem. Müh. 2011, 19, 135–139. [ÇaprazRef]
93. Wicken, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW Membran lipoteikoik asidin Lactobacillus fermentinden izolasyonu üzerine karşılaştırmalı çalışmalar. J. Bacteriol. 1973, 113, 365–372.
94. Tokiwa, Y.; Kitagawa, M.; Raku, T. Arbutin undesilenik asit esterinin enzimatik sentezi ve bunun mantar tirozinazı üzerindeki inhibitör etkisi. Biyoteknoloji Letonya 2007, 29, 481–486. [ÇaprazRef]
95. Mapari, SA; Meyer, AS; Thrane, Ü.; Frisvad, JC Kemotaksonomik mantık kullanılarak poliketid doğal gıda renklendiricilerinin üretimi için potansiyel olarak güvenli gelecek vaat eden mantar hücresi fabrikalarının belirlenmesi. Mikrob. Hücre Gerçeği. 2009. [ÇaprazRef]
96. Dufossé, L. Mikrobiyoloji Ansiklopedisi, 3. baskı; Akademik Basın: New York, NY, ABD, 2009; Mikrobiyal Pigmentler; sayfa 457–471.
97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: UVA kaynaklı erken fotoyaşlanmayı önlemek için etkili bir doğal madde. Cilt Eczanesi. Fizyol. 2004, 17, 232–237. [ÇaprazRef]
98. Becker, J.; Schafer, R.; Kohlstedt, M.; Daha sert, BJ; Borchert, ABD; Stoveken, N. Kimyasal şaperon ektoinin üretimi için Corynebacterium glutamicum'un sistem metabolik mühendisliği. Mikrob. Hücre Gerçeği. 2013. [CrossRef] [PubMed]
99. Botta, C.; Di Giorgio, C.; Sabatier, AS; De Meo, M. Görünür ışığın (400–800 nm) genotoksisitesi ve bölümün foto koruma değerlendirmesi, L-ergotionin ve manitol ve dört güneş kremi. J. Fotokim. Fotobiyol. B.2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]
100. Pugh, S.; McKenna, R.; Halloum, I.; Nielsen, DR Mühendislik yenilenebilir benzil alkol üretimi için Escherichia coli. Metab. Müh. 2015, 2, 39–45. [ÇaprazRef]
101. Ni, J.; Tao, F.; Du, H.; Xu, P. De novo biyosentez için doğal bir yolu taklit etmek: erişilebilir karbon kaynaklarından doğal vanilin üretimi. bilim Rep. 2015. [CrossRef] [PubMed]
102. Yamada, M.; Okada, Y.; Yoshida, T.; Nagasawa, T. Pseudomonas putida'nın izoöjenol monooksijenazını aşırı eksprese eden Escherichia coli hücreleri kullanılarak Vanillin üretimi. Biyoteknoloji Letonya 2008, 30, 665–670. [ÇaprazRef]
103. Zhao, L.-Q.; Sun, Z.-H.; Zheng, P.; Zhu, L.-L. Yeni bir Bacillus fusiformis suşu tarafından izoöjenolün vaniline biyotransformasyonu. Biyoteknoloji Letonya 2005, 27, 1505–1509. [ÇaprazRef]
104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. Ashbya gossypii'de 2-fenil etanol/gül aroması üretimi için Ehrlich yolunun başlıca katkısı. FEMS Maya Çöz. 2014, 14, 833–844. [ÇaprazRef]
105. Eichmann, MMW; Schrader, J. Doğal aroma kimyasalları 2-fenil etanol ve 2-fenil etilasetatın maya ile verimli üretimi için sulu-organik iki fazlı bir biyoproses. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 2006, 71, 440–443. [ÇaprazRef]
106. Willrodt, C.; David, C.; Cornelissen, S.; Bühler, B.; Julsing, MK; Schmid, A. Minimum ortamda gliserolden limonen oluşumu için rekombinant Escherichia coli'nin üretkenliğinin tasarlanması. Biyoteknoloji J.2014, 9, 1000–1012. [ÇaprazRef]
107. Dobler, L.; de Carvalho, BR; Alves, S.; Neves, M.Ö. Freire, G.; Almeida, RV Basit bir ortamda estA'yı aşırı eksprese eden Pseudomonas aeruginosa tarafından geliştirilmiş rhamnolipid üretimi. PloS BİR 2017, 12, e0183857. [ÇaprazRef]
108. Desai, JD; Banat, IM Yüzey aktif maddelerin mikrobiyal üretimi ve ticari potansiyeli. Mikrobiyol. Mol. Biol. Rev. 1997, 47–64.
109. Castelblanco-Matiz, LM; Barbachano-Torres, A.; Ponce-Noyola, T.; Ramos-Valdivia, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, CM Karotenoid üretimi ve astaksantin aşırı üreten Xanthophyllomyces dendrorhous mutant suşunda gen ifadesi. Ark. Mikrobiyol. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]
110. Berman, J.; Zorrilla-Lopez, U.; Farre, G.; Zhu, C.; Sandmann, G.; Twyman, RM; Capell, T.; Christou, P. Tüketici ürünleri olarak beslenme açısından önemli karotenoidler. fitokimya Rev. 2015, 14, 727–743. [ÇaprazRef]
111. Henriquez, V.; Escobar, C.; Galarza, J.; Gimpel, J. Mikroalglerde karotenoidler. Doğada Bulunan Karotenoidlerde; Garip, E., Ed.; Springer Uluslararası Yayıncılık: New York, NY, ABD, 2016; sayfa 219–237.
112. Lau, N.-S.; Matsui, M.; Abdullah, AA-A. Siyanobakteriler: endüstriyel ürünlerin sürdürülebilir sentezi için fotoototrofik mikrobiyal fabrikalar. J. Biomed. Biyoteknoloji 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]
113. Das, A.; Yoon, SH; Lee, SH; Kim, JY; Oh, DK; Kim, SW Mikrobiyal karotenoid üretimi üzerine bir güncelleme: son metabolik mühendislik araçlarının uygulanması. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 2007, 77, 505–512. [ÇaprazRef]
114. Mata-Gomez, LC; Montanez, JC; Mendez-Zavala, A.; Aguilar, CN Karotenoidlerin mayalar tarafından biyoteknolojik üretimi: Genel bir bakış. Mikrob. Hücre Gerçeği. 2014. [ÇaprazRef]
115. Liu, J.; Wang, X.; Pu, H.; Liu, S.; Kan, J.; Jin, C. Endofitik ekzopolisakaritlerdeki son gelişmeler: Üretim, yapısal karakterizasyon, fizyolojik rol ve biyolojik aktivite. Karbonhidrat. Polim. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]
116. Liu, F.; Ah, VE; Chang, ST Mantar polisakkarit ekstraktlarının serbest radikal yakalama aktiviteleri. Hayat Bilimi 1997, 60, 763–771. [ÇaprazRef]
117. Jin, M.; Çay, YX; Li, JR; Zhao, H. 1,10-fenantrolin-Fe2 artı H2O2/Fe tarafından üretilen hidroksil radikalinin oksidatif tahlili. prog. biyokimya biyografiler. 1996, 23, 553–555.
118. Chen, B.; Sen, W.; Huang, J.; Yu, Y.; Chen, W. Rhodella reticulata'dan hücre dışı polisakaritin izolasyonu ve antioksidan özelliği. Dünya J. Microbiol. Biyoteknoloji 2010, 26, 833–840. [ÇaprazRef]
119. Cirulis, JT; Scott, JA; Ross, GM Mikroalgler tarafından oksidatif stresin yönetimi. Olabilmek. J. Physiol. Eczacılık 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]
120. Hassan, HM Oksiradikallerin sitotoksisitesi ve süperoksit dismutazların evrimi. Oksijen, Gen İfadesi ve Hücresel Fonksiyonda; Massaro, D., Clerch, L., Eds.; Marcel Dekker: New York, NY, ABD, 1997.
121. Bruno-Barcena, JM; Azcarate-Peril, MA; Hassan, HM Organik asitlere karşı bakteriyel dirençte antioksidan enzimlerin rolü. Uygulama çevre. Mikrobiyol. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]
122. Rahman, K. Serbest radikaller, antioksidanlar ve yardımcı faktörler üzerine çalışmalar. klinik Interv. Yaşlanma 2007, 2, 219–236.
123. Abbott, DA; Suur, E.; Duong, GH; de Hulster, E.; Pronk, JT; van Maris, AJ Katalaz aşırı ekspresyonu, Saccharomyces cerevisiae'de laktik asit kaynaklı oksidatif stresi azaltır. Uygulama çevre. Mikrobiyol. 2009, 75, 2320–2325. [ÇaprazRef]
124. Shao, N.; Beck, CF; Lemaire, SD; Krieger-Liszkay, A. Fotosentetik elektron arkadaşı, Chlamydomonas reinhardtii'de katalazın etkisizleştirilmesiyle H2O2 sinyalini etkiler. Planta 2008, 228, 1055–1066. [ÇaprazRef]
125. Avrupa Komisyonu. Hayvanlarda Test Yasağı. Çevrimiçi olarak erişilebilir: https://ec.europa.eu/growth/sectors/ Cosmetics/animal-testing_en (14 Nisan 2019'da erişildi).
126. Gao, Q.; Garcia-Pichel, F. Mikrobiyal ultraviyole güneş kremleri. Nat. Rev. Mikrobiyoloji. 2011, 9, 791–802. [ÇaprazRef]
127. Plonka, PM; Grabacka, M. Mikroorganizmalarda melanin sentezi-biyoteknolojik ve tıbbi yönlerden. Açta Biokim. Pol. 2006, 53, 429–443.
128. Nosançuk, JD; Stark, RE; Casadevall, A. Fungal melanin: Yapı hakkında ne biliyoruz? Ön. Mikrobiyol. 2015. [ÇaprazRef]
129. Sansinenea, E.; Ortiz, A. Melanin: Bacillus thuringiensis bazlı biyopestisitler için bir foto koruma. Biyoteknoloji Letonya 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]
130. Matsui, K.; Nazififi, E.; Hirai, Y.; Vada, N.; Matsugo, S.; Sakamoto, T. Siyanobakteriyel UV emici pigment scytonemin, radikal süpürücü aktivite gösterir. J.Gen.Appl. Mikrobiyol. 2012, 58, 137–144. [ÇaprazRef]
131. Garcia-Pichel, F.; Sherry, ND; Castenholz, RW Karasal siyanobakteri Chlorogloeopsis sp. Fotokim. Fotobiyol. 1992, 56, 17–23. [ÇaprazRef]
132. Rastogi, RP; Sonani, RR; Madamwar, D. Siyanobakteriyel güneş koruyucu scytonemin: foto koruma ve biyomedikal araştırmalardaki rolü. Uygulama biyokimya Biyoteknoloji 2015, 176, 1551–1563. [ÇaprazRef]
133. Darshan, N.; Manonmani, HK Prodigiosin ve potansiyel uygulamaları. J. Gıda Bilimi Teknoloji 2015, 52, 5393–5407. [ÇaprazRef]
134. Duran, N.; Justo, GZ; Duran, M.; Brocchi, M.; Kordi, L.; Tasic, L. Chromobacterium violaceum'daki gelişmeler ve violaceinin ana ikincil metabolitinin özellikleri: Bir gözden geçirme. Biyoteknoloji Av. 2016, 34, 1030–1045. [ÇaprazRef]
135. Colabella, F.; Moline, M.; Libkind, D. Mikrobiyal kaynaklı UV güneş kremleri: siklosporin ve mikosporin benzeri amino asitler. Son Pat. Biyoteknoloji 2014, 8, 179–193. [ÇaprazRef]
136. Hüsrevî, S.; Khodabandeh, S.; Ah, N.; Bakhtiarian, M. Urmiye Gölü'nden (İran) Artemia'da tuzluluk ve ultraviyole radyasyonun mikosporin benzeri amino asitlerin biyobirikimi üzerindeki etkileri. Fotokim. Fotobiyol. 2013, 89, 400–405. [ÇaprazRef]
137. Gorbushina, AA; Whitehead, K.; Dornieden, T.; Niesse, A.; Schulte, A.; Hedges, JI Hayatta kalma birimleri olarak siyah mantar kolonileri: kayada yaşayan mikro koloni mantarları tarafından sentezlenen hiphal siklosporin. Olabilmek. J.Bot. 2003, 81, 131–138. [ÇaprazRef]
138. Gillbro, JM; Olsson, MJ Cilt aydınlatıcı ajanların melanogenezisi ve mekanizmaları-mevcut ve yeni yaklaşımlar. uluslararası J. Kozmetik. bilim 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]
139. Smit, N.; Vilanova, J.; Pavel, S. Doğal cilt beyazlatma ajanları arayışı. uluslararası J. Mol. bilim 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]
140. Pillaiyar, T.; Manicam, M.; Namasivayam, V. Cilt beyazlatma ajanları: tirozinaz inhibitörlerinin tıbbi kimya perspektifi. J. Enzim Engelleme Med. kimya 2017, 32, 403–425. [ÇaprazRef]
141. Pillaiyar, T.; Namasivayam, V.; Manicam, M.; Jung, SH Melanogenesis İnhibitörleri: Güncellenmiş Bir İnceleme. J.Med. kimya 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]
142. Ha, TJ; Yang MS; Jang, DS; Choe, SU; Park, GH Sophora flavecens'ten izole edilen flavanon türevlerinin melanogenez için inhibe edici aktiviteleri. Boğa. Kore Kimyası Sos. 2001, 22, 97–99.
143. Pervez, S.; Kang, M.; Çung, HS; Cho, C.; Hong, MC; Shin, MK Araştırma ve cilt depigmentasyonu ve aydınlatma ajanlarının mekanizması. fitoter. Res. 2006, 20, 921–934. [ÇaprazRef]
144. Rosfarizan, M.; Mohd, SM; Nuraşikin, S.; Medine, MS; Arbakariya, BA Kojik asit: Üretim için fermantasyon sürecinin uygulamaları ve geliştirilmesi. Biyoteknoloji. Mol. Biol. 2010, 5, 24–37.
145. Ortiz-Ruiz, CV; Berna, J.; Tudela, J.; Varon, R.; Garcia-Canovas, F. Melanin biyosentez yolu üzerinde ellagik asidin etkisi. J. Dermatol. bilim 2010, 5, 24–37. [ÇaprazRef]
146. Ventura, J.; Belmares, R.; Aguilera-Carbo, A.; Gutierrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. Creosote çalısından (Larrea tridentata) ve Tar çalısından (Fluorensia cernua) tanenlerin gallik ve ellagik asit üretimi için mantarla biyolojik bozunması. Gıda Teknolojisi Biyoteknoloji 2008, 46, 213–217.
147. Sepúlveda, L.; Ascacio, A.; Rodriguez-Herrera, R.; Aguilera-Carboó, A.; Aguilar, CN Ellagik asit: Üretim süreçleri için biyolojik özellikler ve biyoteknolojik gelişim. Afr. J. Biyoteknoloji. 2011, 10, 4518–4523.
148. Breathnach, AC; Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Zina, G. Pigmentasyon bozukluklarında azelaik asit tedavisi. klinik Dermatol. 1989, 7, 106–119. [ÇaprazRef]
149. Sieber, MA; Hegel, JK Azelaik asit: Özellikler ve etki şekli. Cilt Eczanesi. Fizyol. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]
150. Breathnach, AS Cildin melanin hiperpigmentasyonu: melazma, azelaik asit ile topikal tedavi ve diğer terapiler. Cutis 1989, 7, 106–119.
151. Usuki, A.; Ohashi, A.; Sato, H.; Ochiai, Y.; Ichihashi, M.; Funasaka, Y. Glikolik asit ve laktik asidin melanom hücrelerinde melanin sentezi üzerindeki inhibe edici etkisi. Tecrübe. Dermatol. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]
152. Zhang, ZY; Jin, B.; Kelly, JM Rhizopus mantarları tarafından yenilenebilir malzemelerden laktik asit üretimi. biyokimya Müh. J.2007, 35, 251–263. [ÇaprazRef]
153. Liu, X.; Liu, F.; Liu, S.; Li, H.; Ling, P.; Zhu, X. Bacillus subtilis kaynaklı poli-gama-glutamat, tirozinaz aktivitesini ve melanogenezi inhibe eder. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 2013, 97, 9801–9809. [ÇaprazRef]
154. Mohorciˇc, M.; Friedrich, J.; Renimel, I.; André, P.; Mandin, D.; Chaumont, J.-P. Mantar kökenli melanin ağartma enziminin üretimi ve kozmetikte kullanımı. Biyoteknoloji Biyoproses. Müh. 2007, 12, 200–206. [ÇaprazRef]
155. Antonopoulou, I.; Varriale, S.; Topakas, E.; Rova, U.; Christakopoulos, P.; Faraco, V. Kozmetik uygulama için yüksek potansiyele sahip biyoaktif bileşiklerin enzimatik sentezi. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 2016, 100, 6519–6543. [ÇaprazRef]
156. Sugimoto, K.; Nomura, K.; Nishimura, T.; Kıso, T.; Sugimoto, K.; Kuriki, T. Alfa-arbutin-alfa-glikozitlerin sentezleri ve bunların insan tirozinazı üzerindeki inhibe edici etkileri. J. Biosci. Biyomüh. 2005, 99, 272–276. [ÇaprazRef]
157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Rhamnolipid biyosürfaktanlar-küresel pazarın geçmiş, şimdiki ve gelecekteki senaryosu. Ön. Mikrobiyol. 2014. [ÇaprazRef]
158. Marchant, R.; Banat, IM Biyoyüzey aktif maddeler: kimyasal yüzey aktif maddeler için sürdürülebilir bir ikame mi? Biyoteknoloji Letonya 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]
159. Lang, S.; Wullbrandt, D. Rhamnose lipitleri-biyosentezi, mikrobiyal üretim ve uygulama potansiyeli. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 1999, 51, 22–32. [ÇaprazRef]
160. Haba, E.; Pinazo, A.; Jauregui, O.; Espuny, MJ; İnfante, MR; Manresa, A. Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044 tarafından üretilen rhamnolipidlerin fizikokimyasal karakterizasyonu ve antimikrobiyal özellikleri. Biyomüh. 2003, 81, 316–322. [ÇaprazRef]
161. Piljac, G.; Piljac, T. Yara iyileşmesinde, yanık şokunun, aterosklerozun, organ nakillerinin, depresyonun, şizofreni ve kozmetiklerin tedavisinde rhamnolipidlerin kullanımı. US7262171B1 sayılı ABD Patenti. 2000.
162. Tuli, HS; Chaudhary, P.; Beniwal, V.; Sharma, AK Doğal renk kaynakları olarak mikrobiyal pigmentler: mevcut eğilimler ve gelecek perspektifleri. J. Gıda Bilimi teknoloji 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]
163. Karo, Y.; Venkatachalam, M.; Lebeau, J.; Fouillaud, M.; Dufossé, L. İplikli mantarlardan pigmentler ve renklendiriciler. Mantar Metab. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; Grigoletto, TL; Abreu, LM; Guimarães, Sol; Santos, C.; Galvao, LR; Cardoso, PG Filamentli mantarlarda pigmentlerin üretimi ve kimyasal karakterizasyonu. Mikrobiyoloji 2016, 162, 12–22.
165. Rao, N.; Prabhu, M.; Xiao, M.; Li, WJ Mantar ve bakteri pigmentleri: Geniş uygulamalara sahip ikincil metabolitler. Ön. Mikrobiyol. 2017. [CrossRef]
166. Kuddus, M.; Singh, P.; Thomas, G.; Al-Hazimi, A. C-phycocyanin'in üretimi ve biyoteknolojik uygulamalarındaki son gelişmeler. Biyomed. Res. uluslararası 2013. [CrossRef] [PubMed]
167. Nicoletti, M. Microalg Nutraceuticals. Yiyecekler 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]
168. Graverholt, OS; Eriksen, NT Galdieria sulphuraria'nın heterotrofik yüksek hücre yoğunluklu beslemeli kesikli ve sürekli arkadaş kültürleri ve fikosiyanin üretimi. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 2007, 77, 69–75. [ÇaprazRef]
169. Carroll, AL; Desai, SH; Atsumi, S. Koku ve tat bileşiklerinin mikrobiyal üretimi. Curr. görüş. kimya Biol. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]
170. Longo, MA; Sanromán, MA Gıda aroma bileşiklerinin üretimi: mikrobiyal ve enzimatik metodolojiler. Gıda Teknolojisi Biyoteknoloji 2006, 44, 335–353.
171. Kempf, B.; Bremer, E. Yüksek ozmolalite ortamlarına mikrobiyal stres tepkileri olarak uyumlu çözünen maddelerin alımı ve sentezi. Ark. Mikrobiyol. 1998, 170, 319–330. [ÇaprazRef]
172. Soccol, CR; Medeiros, AB; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL Mantarlar, mayalar ve bakteriler tarafından üretilen tat bileşikleri. Handb. Gıda Ürünleri Manuf. 2007, 1, 179–191.
173. Vandamme, EJ Mantarlar ve onların enzimleri yoluyla Bioflavours ve kokular. Mantar Dalgıçları. 2003, 13, 153–166.
174. Carrau, F.; Boido, E.; Dellacassa, E. Maya Çeşitliliği ve Lezzet Bileşikleri. Mantar Metabolitlerinde; Mérillon, JM, Ramawat, K., Eds.; Springer Uluslararası Yayıncılık: Cham, İsviçre, 2016; s. 1–29.
175. Priefert, H.; Rabenhorst, J.; Steinbüchel, A. Vanilinin biyoteknolojik üretimi. Uygulama Mikrobiyol. Biyoteknoloji 2001, 56, 296–314. [ÇaprazRef]
176. Kunjapur, AM; Tarasova, Y.; Prather, KLJ Tasarlanmış bir Escherichia coli suşunda aromatik aldehitlerin sentezi ve birikimi. J. Am. kimya Sos. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]
177. Alonso-Gutierrez, J.; Chan, R.; Banyo, TS; Adams, Polis; Keasling, JD; Petzold, CJ Limonen ve perilil alkol üretimi için Escherichia coli'nin metabolik mühendisliği. Metab. Müh. 2013, 19, 33–41. [ÇaprazRef]
178. Okino, T.; Qi, S.; Matsuda, H.; Murakami, M.; Yamaguchi, K. Nostopeptins A ve B, siyanobakteri Nostoc minutum'dan elastaz inhibitörleri. J. Nat. Üretim 1997, 60, 158–161. [ÇaprazRef]
179. Georgousaki, K.; DePedro, N.; Çinçilla, A.; Aliagyannis, N.; Vicente, F.; de Castro, P.; Fotinos, S.; Genilloud, O.; Fokialakis, N. Yeni kozmesötik ajanların keşfi için mikrobiyal biyoçeşitliliğin yüksek verimli taraması. Panta Med. 2015. [ÇaprazRef]
180. Georgousaki, K.; Safantakis, N.; Cheilari, A.; Gümeni, S.; Gonzalez, I.; Gonzalez, V.; Jose, RT; Genilloud, O.; Fotinos, S.; Trougakos, İ.; et al. İspanyol biyoçeşitliliğinin endofitik mikroorganizmalarından yeni kozmesötik ajanların keşfi. Bitki Med. 2017. [CrossRef]
181. Sykiotis, GP; Bohmann, D. Yaşlanma ve insan hastalığında stresle aktive olan cap'n'collar transkripsiyon faktörleri. bilim Sinyal. 2010. [CrossRef] [PubMed]
182. Wedel, S.; Manola, M.; Cavinato, M.; Trougakos, IP; Jansen-Durr, P. Sağlıklı yaşlanmayı teşvik etmek için doğal ürünlerle protein kalite kontrol mekanizmalarını hedefleme. Moleküller 2018, 23, 1219. [CrossRef]
183. Morimoto, RI; Cuervo, AM Proteostasis ve sağlık ve hastalıkta yaşlanan proteom. J. Gerontol. Biol. bilim Med. bilim 2014. [CrossRef] [PubMed]
184. Huang, L.; Chen, CH Proteazom düzenleyicileri: aktivatörler ve inhibitörler. Curr. Med. kimya 2009, 16, 931–939. [ÇaprazRef]
185. Peyrat, LA; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; Litaudon, M.; Stien, D. Betulinic asit, her iki Phomopsis türünden izole edilen ilk acı bakla tipi triterpenoid. ve ev sahibi bitki Diospyros carbonara Benoist. kimya Biyodalgıçlar. 2017. [CrossRef] [PubMed]
Daha fazla bilgi için: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501






